【摘 要】
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应用冷冻干燥法对猪精子进行冻干处理后，在光学显微镜和电子显微镜下观察其超微结构，并借助辅助生殖技术将其注入猪卵母细胞后，进一步观察受精卵的发育情况。结果表明：海藻糖组雄原核形成率（68.52％）、卵裂率（59.17%）和囊胚率（19.16%）优于EDTA组（64.59%、56.26%和15.62%）和对照组（35.36%、52.33%和8.60%）（P＜0.05）；海藻糖组的冷冻真空干燥猪精子分别
【机 构】
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上海农业科学院畜牧兽医研究所,上海 201106 上海农业遗传育种重点实验室动物遗传工程研究室,上海 201106 四川农业大学生命科学与理学院,雅安 625014
【出 处】
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上海市畜牧兽医学会2011年学术年会
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应用冷冻干燥法对猪精子进行冻干处理后，在光学显微镜和电子显微镜下观察其超微结构，并借助辅助生殖技术将其注入猪卵母细胞后，进一步观察受精卵的发育情况。结果表明：海藻糖组雄原核形成率（68.52％）、卵裂率（59.17%）和囊胚率（19.16%）优于EDTA组（64.59%、56.26%和15.62%）和对照组（35.36%、52.33%和8.60%）（P＜0.05）；海藻糖组的冷冻真空干燥猪精子分别在4℃下保存60，120，180 d，雄原核形成率、卵裂率和囊胚率均无显著差异（P＞0.05）；海藻糖组的冷冻真空干燥猪精子复水化后孵育1 h和2 h，卵裂率，卵裂率和囊胚率均差异显著（P＜0.05）；海藻糖处理组与EDTA处理组中的冷冻真空干燥猪精子分别在4 ℃和-20 ℃下保存后各处理组间精子形态差异不显著（P＞0.05）；海藻糖组中B级冷冻真空干燥精子百分数显著多于EDTA处理组（P＜0.05）。超微结构分析表明，冷冻真空干燥猪精子的损伤主要表现在顶体和颈部的肿胀与缺损、尾部断裂。
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