节杆菌黄嘌呤氧化酶生物合成调控与酶稳定性研究

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黄嘌呤氧化酶(Xanthine oxidase,EC1.17.3.2,XOD)属于黄素蛋白氧化酶类中较为复杂的多亚基蛋白,其底物催化机理复杂,除需辅因子FAD,还需钼蝶呤及铁硫簇辅因子。这三种辅因子以严格的比例及特定的顺序排布于XOD结构内部,联合最终电子受体(分子氧),共同催化嘌呤类物质的降解。相比于黄嘌呤脱氢酶(Xanthinedehydrogenase,EC1.17.1.4,XDH),XOD在医学诊断、食品检测、工业催化及环境保护中的应用价值更为广泛。本论文以一株拥有自主知识产权的XOD产生株—节杆菌(Arthrobacter)M3为研究对象,探讨发酵合成XOD的调控技术;合成筛选含特异性配体的亲和介质,创建简易亲和纯化XOD的方法,并分析酶热不稳定机理;探寻可有效提高XOD稳定性的技术;研究次黄嘌呤/黄嘌呤降解代谢产物与XOD合成的关系,利用等离子体诱变,半定向筛选代谢产物抑制得到衰减的突变株。主要研究结果如下:考察次黄嘌呤(诱导物)及辅因子添加对XOD合成的影响,发现,次黄嘌呤最佳诱导浓度为3.6g L-1,而添加辅因子前体核黄素(0.30mg L-1)及硫胺素(6.0mg L-1)可分别使XOD平均产率提高17.0%和16.3%。根据不同pH值控制下Arthrobacter M3的发酵过程曲线和动力学参数变化,提出了分段式pH调控技术,即在发酵前期以初始pH8.6进行自然发酵,待菌体密度至2.0g L-1时,控制发酵液pH值为7.6。该分段式pH调控技术的应用,使XOD平均产率(1229.7U g-1)比单独使用恒pH7.6发酵和自然pH发酵(初始pH8.6)时分别提高了86.3%和89.4%;酶活水平(7415.3U L-1)分别提高了75.0%和91.0%。以Logistic方程和Luedeking-Piret方程描述了分段式pH发酵过程中菌体生长、XOD积累以及基质(残糖)消耗的模型,模型相关系数(R2)均大于0.97。分别以鸟嘌呤(黄嘌呤结构类似物)及核黄素(FAD前体)为配体,合成了亲和介质(琼脂糖为载体)。吸附分析表明,琼脂糖-鸟嘌呤亲和介质对XOD的吸附能力较佳(2.0mg g-1介质),并利用液质联用技术证实了鸟嘌呤配体与琼脂糖载体的成功偶联。采用硫酸铵盐析、琼脂糖-鸟嘌呤亲和层析及DEAE-Sepharose CL-4B离子交换层析共3步法,简易地纯化了Arthrobacter M3XOD,比酶活为1033.2U mg-1,纯化倍数为120.1,回收率为36.1%。研究Arthrobacter M3XOD的酶学性质则表明:XOD为含有两个亚基(100kDa和35kDa)的异质二聚体蛋白,相对分子质量135kDa,与Arthrobacter sp. FB24XDH的匹配度较高(肽质量指纹图谱分析);最适反应温度为37℃,最适反应pH为7.5,且对不同金属离子(2.0mmol L-1)的耐受性具有差异,对黄嘌呤的动力学常数Km为0.67mmol L-1。对50℃保温不同时间的XOD酶液进行分析,发现XOD热不稳定机理主要为疏水基团暴露引起的蛋白集聚。以XOD的热不稳定机理为指导,针对性的添加了海藻糖和甜菜碱等保护剂。结果表明,添加1.0mol L-1海藻糖可使XOD半衰期(50℃)延长至6.9h(对照组仅为0.84h),凝胶过滤色谱分析表明海藻糖的加入有效抑制了蛋白集聚。分别选用阴离子交换树脂(201×4、D201及D354)离子吸附固定化、聚丙烯酰胺及海藻酸钠物理包埋固定化、疏水性载体(D840)及亲水性载体(含不同间隔臂长度的琼脂糖)共价偶联固定化处理XOD,不同程度提高了酶热稳定性。其中,以海藻酸钠物理包埋的固定化酶酶活回收率较高(17.3%);50℃保温2h,以琼脂糖-乙二胺载体共价偶联的固定化酶相对酶活保留率较高(90.9%)。将琼脂糖-乙二胺载体固定化的酶与游离酶比较,固定化酶于不同pH和温度下的耐受性均提高,半衰期延长至5.5h(50℃),重复使用8次后,相对酶活仍保留41.2%。研究次黄嘌呤/黄嘌呤降解代谢途径中关键代谢产物(自由基、尿酸、尿素及铵根离子)与XOD合成的关系,发现,在XOD发酵合成过程中,嘌呤代谢含氮终产物—铵根离子是抑制XOD合成的关键因子;积累的代谢中间产物尿素对XOD合成基本无影响,且积累浓度(1.10g L-1)远低于其抑制XOD合成的浓度(≥15.0g L-1)。为减弱次黄嘌呤/黄嘌呤降解代谢途径中尿素向铵根离子的降解,采用等离子体诱变,经三级筛选平板初筛,半定向选育了一株低产尿素降解酶的突变株Arthrobacter M605,与出发菌株Arthrobacter M3相比,其尿素降解酶平均产率降低了49.3%。补料分批发酵条件下,突变株Arthrobacter M605的XOD平均产率及酶活水平提高至1168.5U g-1和12970.6U L-1,分别比出发菌株Arthrobacter M3提高了38.6%和42.5%。
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