先天性巨细胞病毒感染致脑发育异常及其机制研究

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【研究背景】人巨细胞病毒(HCMV)是导致胎儿中枢神经系统(CNS)损害的首要病因,严重影响儿童生存质量,揭示其神经损伤机制,对防治策略的制定和全面提高人口素质具有重大社会和经济意义。但其发病机制研究成效甚微,原因在于:①巨细胞病毒(CMV)具严格种属特异性,不能建立HCMV感染的动物模型;②CMV是最大的DNA病毒和蛋白嵌合体,其基因动态表达,蛋白种类多、功能复杂;③CMV宫内感染致脑发育异常与发育阶段性密切相关,如何在动态发育的过程中抓住关键时空进行研究也是难点问题。小鼠巨细胞病毒(MCMV)与HCMV具相似生物学特性,其先天性感染的CNS病理表现亦与人相似,且不存在伦理问题,因而成为模拟研究HCMV宫内感染神经损害机制的有效工具。CMV感染所致CNS损伤主要见于胎儿期,既往认为胎儿免疫系统不成熟,不能保护脑组织免受感染是其主要原因。但近年研究发现,CMV对发育中的脑组织有特殊亲嗜性,这与细胞的内在原因有关。因此,CMV感染所致CNS损伤是一种与脑发育有关的疾病,必须在CNS动态发育过程中研究其发病机制。【目的】建立适合整体水平研究CMV先天感染的小鼠模型,观察病毒对不同发育阶段胎脑发育的影响及其CNS损伤的病理特点。进一步利用神经干细胞(NSCs)和胚胎干细胞(ES cells)向神经细胞分化的细胞模型,在体外模拟神经细胞发育过程,在细胞和分子水平上动态研究CMV对ES、NSCs及不同发育阶段神经细胞功能和发育的影响,并探讨其中可能涉及的分子机制,为阐明CMV感染致脑发育异常机制奠定实验和理论基础,为寻找有效防治措施提供新策略。【方法】1 MCMV先天感染小鼠模型建立与整体研究在BALB/c孕鼠孕8d(E8d,孕中期,神经管开始形成)和孕13.5d(E13.5d,孕中后期,神经元形成高峰期),采用宫内注射法接种含有Lac Z报告基因的MCMV重组毒株RM461(10~4PFU、10~3PFU和10~2PFU),并以同期注射DMEM细胞培养基的孕鼠作为对照。于E18.5d剖宫取出胎鼠,通过X-gal染色和组织切片分析,观察MCMV接种时妊娠阶段和病毒载量对妊娠结局、胎鼠CNS发育和病理损伤特点的影响。2 MCMV对神经干细胞分化发育细胞模型的影响从E13.5d胎鼠脑组织中分离、培养和鉴定NSCs,建立NSCs向神经细胞分化发育的细胞模型;在MCMV RM461感染后,用X-gal染色监测感染过程,透射电镜观察超微结构改变和病毒颗粒,PCR检测受染细胞和培养上清中病毒DNA,并结合观察培养上清接种到小鼠胚胎成纤维细胞(MEF)的细胞病变效应共同评估NSCs对MCMV的易感性和感染状态;采用细胞生长曲线和MTT实验,观察MCMV对NSCs增殖的影响;采用细胞免疫化学和流式细胞术分析Nestin、GFAP、NSE和NF-200表达,探讨MCMV对NSCs分化的影响;采用FITC-Annexin V+PI染色和流式细胞术分析病毒对NSCs凋亡的影响;采用Western blot联合RT-PCR法检测MCMV对NSCs分化相关基因Wnt-1和Ngn1表达的影响。3 MCMV对胚胎干细胞定向分化发育细胞模型的影响以小鼠ES细胞系D3为研究对象,在4-/4+方案诱导ES细胞定向生成神经元的基础上,利用ATRA联合星形胶质细胞高效诱导ES细胞定向生成神经干/前体细胞和神经元;通过形态学观察、畸胎瘤形成实验、碱性磷酸酶染色、RT-PCR检测胚胎干细胞标志Oct-4表达对ES细胞的全能性进行鉴定;用免疫组织化学结合流式细胞术检测ES细胞来源的NSCs的数量和纯度;用分化实验对所诱导的NSCs的分化潜能进行检测;最后利用ES细胞向神经细胞分化的细胞模型探讨MCMV对ES细胞及ES细胞向神经细胞分化的影响。【结果】1 MCMV先天感染模型建立与整体研究1)用宫内注射法成功建立MCMV先天感染小鼠模型:高病毒载量宫内感染极易导致死胎和吸收胎,仅少数胎鼠存活(5.9%);低病毒载量感染组存活率明显提高(47.1%),但脑组织病毒阳性率随之下降(12.5%)。10~3PFU为建立MCMV先天感染模型的合适剂量,其存活率和脑组织病毒阳性率分别为27.8%和80%。2)采用10~3PFU病毒载量,E8d宫内注射MCMV组胎鼠的存活率(26.9%)和体重显著低于同期DMEM对照组,而吸收胎率(55.8%)高于对照组;E13.5d宫内注射MCMV组胎鼠存活率(52.0%)低于同期DMEM对照组,而吸收胎率(14.0%)与对照组无明显差异。E8d与E13.5d病毒注射组相比,前者存活率低于后者,而吸收胎率高于后者,且发现小头畸形鼠3例。3) MCMV感染胎鼠的脑、心、肝、脾、肺、肾等组织X-gal染色呈阳性反应,并且均可分离到病毒,说明该模型是一种全身播散型感染。脑组织X-gal染色显示阳性细胞主要位于脑室管膜下区、海马区和大脑皮层的外周部分。2 MCMV对神经干细胞分化发育的影响1)体外培养的NSCs可在体外连续传代,仍保持球形生长的能力,nestin表达强阳性,可进一步分化NSE、NF-200阳性的神经元和GFAP阳性的星形胶质细胞。2) MCMV感染NSCs可形成产毒性感染:在感染48h后,细胞出现肿胀,体积增大,神经球边缘的细胞发生脱落和死亡,细胞形态改变随病毒感染复数(MOI)的增加而更加明显;X-gal染色显示,24h受染细胞即可出现阳性改变,48h达高峰;病毒感染72h时,受染细胞及培养上清中MCMV DNA呈阳性,培养上清接种到小鼠MEF细胞后可出现明显细胞病变;电镜下受染细胞胞浆中存在病毒颗粒,细胞器肿胀明显。3) MCMV可明显抑制NSCs的增殖,抑制作用随MOI增加而增强。4)MCMV可明显抑制NSCs的分化:流式细胞仪检测发现,NSCs分化培养2d时感染组和未感染组nestin阳性细胞分别为(62.2±1.8)%和(37.2±2.4)%,差异有极显著性(P<0.01);而GFAP阳性细胞比率分别为(37.4±1.6)%和(50.3±1.8)%,NSE阳性细胞比率分别为(8.9±0.8)%和(23.4±1.3)%,差异均有极显著性(P<0.01)。5)MCMV对NSCs细胞凋亡的影响:MCMV感染组与对照组的早期凋亡率和晚期凋亡率均无明显差异。但感染组细胞死亡率自感染48h始上升,明显高于对照组,至第5d可达(15.2±3.8)%,显著高于对照组的(5.1±0.3)%。6)MCMV感染可抑制Wnt-1和Ngn1的表达:RT-PCR检测发现,感染组Wnt-1基因表达量在12h,24h,48h时低于对照组(P<0.01),Ngn1基因表达量在12h,24h,48h,72h时均低于对照组(P<0.01);Western blot分析发现,感染组Wnt-1蛋白表达量在24h,48h时低于对照组(P<0.01)。3 MCMV对胚胎干细胞定向分化发育的影响1)体外培养的小鼠ES细胞-D3在胚胎成纤维饲养层细胞上连续传代培养,仍保持向三胚层分化的能力,在免疫缺陷鼠体内可形成畸胎瘤;ES细胞AKP染色和Oct-4表达阳性。2) ATRA可促进ES细胞向神经元方向分化:采用4-/4+方案诱导分化的NF-200阳性细胞为(27.3±1.2)%,而未加ATRA对照组(4-/4-)仅为(2.1±0.4)%(P<0.01)。3) 2-/2+ATRA联合星形胶质细胞(基质诱导细胞)可高效诱导ES细胞分化为神经前体细胞和神经元,最终可诱导形成纯度高达91.4%的nestin阳性细胞;nestin阳性细胞在含血清培养基中可进一步分化为神经元、星形神经胶质细胞和少突胶质细胞,联合诱导组NF-200和NSE阳性率为(42.7±2.6)%,而2-/2+/4-ATRA对照组阳性率仅为(11.2±1.8)%(P<0.01)。4) MCMV感染未分化的ES细胞不能形成产毒性感染,但分化的ES细胞可形成产毒性感染;MCMV感染不影响未分化ES细胞的增殖。5) MCMV感染可抑制ES细胞来源的神经元形成,感染组NF-200阳性细胞为(10.2±0.3)%,显著低于对照组的(29.3±0.8)%(P<0.01)。【结论】1.成功建立了先天性MCMV感染的小鼠模型与NSCs和ES细胞向神经细胞分化的细胞模型,为体内、外探讨CMV先天感染致脑发育机制提供了较为切实可行的、理想的细胞和整体研究模型。2.MCMV先天感染可导致明显的脑发育异常;MCMV对妊娠结局的影响与病毒载量、感染的妊娠阶段有关,小鼠妊娠中期对MCMV的敏感性要高于晚期。3.MCMV可感染体外培养的NSCs,并能形成产毒性感染;MCMV可明显抑制NSCs的增殖、分化并可导致NSCs死亡;MCMV可通过抑制Wnt-1和Ngn1基因表达而影响NSCs分化;MCMV抑制NSCs的增殖与分化可能与先天性CMV感染致脑发育异常有关。4.星形胶质细胞不仅可提高ES来源的NSCs数量,还可促进NSCs向神经元方向分化,利用星形胶质细胞可改善诱导ES生成NSCs的培养体系,此模型可进一步用于体外动态研究神经细胞分化发育机制。5.MCMV不能使未分化的ES细胞形成产毒性感染,未分化的ES细胞对MCMV有一定的抵抗力;ES细胞在分化过程中可获得形成产毒性感染的能力;MCMV感染可抑制ES细胞来源的神经元形成。
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