目的：观察糖尿病大鼠不同时期穹窿下器(SFO)的室管膜细胞的分泌情况和形态学变化以及NF-κB在SFO室管膜细胞中的表达情况。　　 方法：选择健康雄性Wistar大鼠60只，体重200g～220g，随机分为四组：①对照组(n=15)：不做任何处理；②用药2周组(n=15)；③用药4周组(n=15)；④用药8周组(n=15)。　　 1.糖尿病动物模型的制作Wistar大鼠腹腔注射链脲佐菌素(Streptozotocin，STZ)，建立Ⅰ型糖尿病模型。　　 2.光镜标本制备：常规经心灌注、固定、取脑，冠状方向去除视交叉以前和漏斗柄以后部分，取中间脑块，常规石蜡包埋，连续石蜡切片，片厚5um。常规HE染色、NF-κB免疫组化染色、封片。显微镜观察、照相。　　 3.电镜标本制备：麻醉、灌注同光镜标本制备，但灌注液为含2％多聚甲醛和2.5％戊二醛的混合磷酸缓冲液。取包含SFO的脑块用PBS冲洗，梯度酒精脱水，叔丁醇置换，真空干燥、喷金，日立S-3500N观察、照相。透射电镜样品制备与扫描电镜样品制备相同，取下SFO，放入4％戊二醛固定，1％饿酸后固定，树脂包埋，切片，T-S7500透射电镜观察、照相。　　 4.统计学处理：NF-κB阳性细胞采用麦克奥迪数码医学图像分析系统(Motic Med6.0)测定光密度。数据用均数加减标准差((-χ)±s)表示。应用SNK-q检验，进行两两比较，以P＜0.05为有显著性差异。　　 结果：　　 1.模型制备:实验动物给予链脲佐菌素(STZ)腹腔注射后随机血糖值大于16.7mmol/L，并伴有“三多一少”症状，糖尿病动物模型制备成功。　　 2. HE染色结果观察：　　 2.1 正常对照组：SFO室管膜细胞为单层排列，胞核大小不一，多呈梭形或椭圆形。　　 2.2 模型组：在用药2周组，SFO室管膜细胞呈双层排列，排列紧密，胞核大小不一，大胞核较少，多呈圆形；小胞核较多，多呈梭形或三角形。室管膜下细胞较多，胞体较小。在用药4周组，SFO背内侧区、室管膜及室管膜下细胞分布密集，胞核较大而且染色深：中央区细胞分布较稀疏，胞核淡染，血管扩张明显。在用药8周组，SFO两侧大血管处室管膜细胞呈双层或多层排列，中央部室管膜细胞单层排列，排列紧密，室管膜下细胞稀疏。　　 3. NF-κB免疫组织化学染色结果观察　　 3.1 正常对照组：SFO内NF-κB免疫阳性细胞稀少，胞核呈浅棕黄色，弱阳性。散在分布于两侧大血管的周围，平均光密度为156.42±7.25。　　 3.2 模型组：在用药2周组，NF-κB免疫阳性细胞在SFO内均匀分布，核呈棕褐色，强阳性，平均光密度为183.72±8.35。在用药4周组，NF-κB免疫阳性细胞在SFO中央部细胞核轮廓不清，而周边部细胞核较清晰，室管膜细胞呈棕褐色，平均光密度为169.55±5.84。在用药8周组，免疫阳性细胞稀少，胞核呈棕黄色，弱阳性，主要分布于两侧部大血管周围，平均光密度为158.32±8.72。在用药2周组、用药4周组与对照组光密度测定结果比较均有显著性差异(P＜0.05)、用药8周组与正常对照组无显著性差异(P＞0.05)。　　 4.扫描电镜观察结果：　　 4.1 正常对照组：对照组：SFO为一尖朝向嘴侧，底朝向尾侧的三角形无纤毛区域。室管膜表面凹凸不平，与周围分界清楚。　　 4.2 模型组：在用药2周组，室管膜细胞边界清晰，有些细胞饱满、有些细胞扁平，细胞表面可见到圆形小破孔；有的细胞排列松散，界限清楚，细胞表面有茂密的微绒毛。在用药4周组，室管膜细胞表面凹凸不平，出现皱褶，细胞膜可见大小不一的多个小破孔，并可见细胞膜缺失、细胞器裸露的细胞；有些细胞表面光滑，可见大量密集大小不等的分泌颗粒，多呈乳头状。在用药8周组，有的室管膜细胞表面褶皱明显，可见球形分泌颗粒；有的室管膜细胞呈菜花状，在微绒毛的表面出现密集带蒂的分泌颗粒。　　 5.透射电镜观察结果：　　 5.1 对照组：SFO室管膜细胞脑室面完整，有少量的微绒毛和乳头状微突起，室管膜细胞之间可见紧密连接，室管膜细胞呈柱状，排列规则。　　 5.2 模型组：室管膜细胞之间可见缝隙连接，缝隙宽窄不等，呈锯齿状，胞核内异染色质较多，“边集”现象明显，室管膜面可见较多分泌颗粒。　　 结论：①首次在电镜下观察到SFO在糖尿病时室管膜细胞的超微结构发生变化，主要表现为分泌颗粒明显增多。②糖尿病时SFO的NF-KB免疫阳性细胞的分布有明显区域差异，免疫阳性细胞的光密度测定结果为：2周组光密度＞4周组光密度＞8周组光密度。③成功制备了糖尿病大鼠动物模型。