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我国是猕猴桃的起源和分布中心，资源极其非富。猕猴桃果实风味独特，富含维生素C、糖、多种人体必需氨基酸及其他营养成分，有“果中之王”的美称。植物的生长发育总是处于环境胁迫之中，它们严重影响着作物的产量。研究表明，提高植物体内Mn-SOD活性是增强植物抗逆性的有效途径之一。本试验通过根癌农杆菌介导将Mn-SOD基因导入美味猕猴桃，获得转化完整植株，选育具有高抗逆性的猕猴桃新品种。以美味猕猴桃优良品种海沃德和秦美组培苗为试材，以基本培养基、碳源、6-BA和生长素为试验因子，通过L9(34)正交试验，筛选出秦美离体叶片再生的理想培养基，即MS+6-BA4.0mg/L+NAA1.0mg/L+蔗糖30g/L。通过比较TDZ、ZT、6-BA和IBA对海沃德叶片再生的影响，获得海沃德最适培养基为MS+TDZ1.0mg/L+ IBA0.15mg/L，再生频率为82.2%，再生芽数为4.75。同时，研究了接种方式、AgNO3等因素对离体叶片再生效率的影响，进一步优化了叶片再生体系，从而建立了稳定高效的猕猴桃叶片再生体系。另外，以叶片再生不定芽为试材，进行了基本培养基和不同激素组合对猕猴桃增殖和生根的研究。在建立美味猕猴桃叶片再生体系的基础上，研究了Mn-SOD基因转化中影响叶片转化效率的多种因素，包括叶片预培养、Kan浓度、抑菌素浓度、浸染菌液以及Vir基因诱导因子等，从而确立了美味猕猴桃遗传转化体系。选取幼嫩叶平铺在分化培养基中预培养20d，然后剪成0.5cm2大小的叶块作为转化受体，用携带目的基因的农杆菌EHA105浸染10min，置于分化培养基上共培养3d，冲洗干净后，转接到选择分化培养基中。培养6~7周后，分化出抗性不定芽，及时将产生抗性芽的愈伤组织转接至抗性增殖培养基中，待抗性苗伸长到2cm后，从基部切下转接于抗性生根培养基中，3~4周后可获得转化完整植株。经GUS检测和PCR扩增，初步确认Mn-SOD基因已整合到猕猴桃植株基因组中。