Bacillus sp.602-1的α-环糊精糖基转移酶基因的高效异源表达及其产物专一性改造

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α-环糊精糖基转移酶(α-cyclodextringlycosyltransferase,简称CGT酶)属于糖苷水解酶家族13中的一员,通过环化反应催化淀粉生成环糊精,环糊精是由n(n≥6)个葡萄糖残基组成的内疏水外亲水的中空圆筒状结构。由于其特殊的空间结构,可以与多种化合物形成包合复合体,因此,在食品、化妆品、医药、纺织、环境保护等方面具有广泛的应用。α-CGT酶已经越来越引起人们的重视。   α-CGT酶催化淀粉生成环糊精,多以α-、β-、γ-CD三种混合物的形式存在。该酶的产物专一性较差,对α-CD的产率和后提取工艺皆造成不利影响。另外,α-CGT酶基因在异源表达过程中往往形成包涵体。针对上述两个问题,本论文通过将来源于Bacillussp.602-1的α-CGT酶基因构建工程菌,并探索促进重组α-CGT酶胞外酶活释放的条件、优化自诱导表达条件等途径,实现酶蛋白的高效活性表达;同时,利用Error-PCR技术对α-CGT酶基因进行分子改造,进一步提高α-CGT转化生产α-CD的专一性。主要研究结果如下:   1、将来源于野生菌Bacillussp.602-1的α-CGT酶基因分别插入到表达载体pET22(b+)、PQE30中,构建重组质粒pET22(b+)/cgt、PQE30/cgt,分别转化到表达菌株EcoliBL21(DE3)、E.coliM15中,得到工程菌E.coliBL21(DE3)(pET22(b+)/cgt)、E.coliM15(PQE30/cgt)。   2、将E.coliBL21(DE3)(pET22(b+)/cgt)菌株发酵培养,确定了重组酶胞外酶活释放的两种最佳条件:一是发酵培养基为TB,IPTG浓度为0.01mmol/L,甘氨酸浓度为150mmol/L,甘露醇浓度为0.25mol/L,此时,酶外活力为11702U/mL,与不加IPTG(1963U/mL)相比,胞外酶活提高了5倍;二是优化的自诱导表达培养条件:葡萄糖浓度为1.2g/L,乳糖浓度为1g/L,胞外酶活力为10092U/mL。   3、对E.coliM15(PQE30/cgt)菌株发酵培养,确定重组酶胞内表达的最佳条件:在发酵培养基为TB,IPTG浓度为0.01mmol/L时,胞内酶活为5209U/mL;在发酵培养24h后,向培养基中添加甘氨酸和甘露醇,发现有部分α-CGT酶释放到胞外;在自诱导培养基中葡萄糖和乳糖的浓度分别为1.2g/L、3g/L,胞内酶活为8635U/mL。   4、将重组表达载体pET22(b+)/cgt转化到表达宿主菌E.coliOrigamiB(DE3)中,经SDS-PAGE电泳发现,在该宿主菌内生成的包涵体较少,但是胞外酶活表达量低于E.coliBL21(DE3)(pET22(b+)/cgt),因此,后续实验仍将E.coliBL21(DE3)作为表达宿主菌。   5、利用HPLC对重组α-CGT酶催化可溶性淀粉的产物情况进行分析发现,重组α-CGT酶催化生成3种产物的比例分别是74%,21.7%,4.3%。相对于野生酶催化淀粉转化后的α∶β峰面积比为2.4,重组酶催化生成的α-CD所占的比例较高(α∶β峰面积比为3.4);   6、重组α-CGT酶催化生淀粉的产物情况进行分析发现,用异淀粉酶液化质量分数为6%(w/v)玉米淀粉后,按400U/g酶活单位加入α-CGT酶反应24h后,生成的α∶β之间的比值为2.3,因此,为该酶在淀粉工业上的应用提供一定支持。   7、利用易错PCR技术构建突变文库,库容量约为70,000株。经过平板初筛,挑取153株菌株分别进行液体培养诱导表达,酶促催化产物经HPLC分析,成功筛选到一株产物专一性显著提高的菌株,编号为95号,产物中α∶β为7.3(而重组α-CGT酶转化生成α∶β的比值约为3.3)。测序发现,有两个氨基酸发生突变,分别为Y167H、A536V。   8、对95号H167Y位点回复突变后酶蛋白专一性分析发现,α∶β降低变为2.8;将V536A回复突变后酶蛋白专一性分析发现,α∶β为6.7;由此可见第167位点为组氨酸时对高α-CD的生成有重要作用。而第536位缬氨酸对高α-CD的生成无显著影响。第167位残基位于-6区域内,该位点对产物专一性可能有一定的影响。   9、第167位点进行饱和突变分析,从74株单菌落中筛出15种氨基酸,有非极性、极性中性、酸性及碱性氨基酸。通过HPLC分析发现,目前组氨酸为最优氨基酸。   10、将突变α-CGT酶发酵培养后,利用Ni2+-NTA一步纯化,比活力提高至54230.7U/mg,纯化倍数为7.3倍。将纯化后突变α-CGT酶学性质分析得出:最适温度为50℃,最适pH为7.4,酶活力为11705U/mL,Cu2+、Fe2+、Zn2+离子严重抑制了酶的活力,K+、Na+离子对酶活力的影响不大,另外Ba2+、Ca2+并未像文献报道的一样,对突变α-CGT酶有一定的激活效应。
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