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本论文旨在研究基因工程菌Escherichia coli JM109（pGEX-AZR）的生长特性及其对偶氮染料的脱色性能。为了降低基因工程菌应用可能带来的生态风险，将E．coli JM109（pGEX-AZR）与膜生物反应器结合，将微生物有效的截留在反应器之内，以防止其向环境中释放。另外将E．coli JM109（pGEX-AZR）作为高效菌制剂投加到活性污泥体系中进行强化脱色研究，借助现代分子生物技术，研究了其在污泥体系中的生长特性及对污泥群落结构的影响。本研究为基因工程菌在废水处理中的应用提供了一定的理论及技术支持。在以葡萄糖为限制性基质的分批培养中，E．coli JM109（pGEX-AZR）的最佳培养条件为：5g·L-1葡萄糖，0.3 g·L-1 NH4Cl：无机盐培养基(组成为：KH2PO4 2.0 g·L-1，Na2HPO4 1.3 g·L-1，MgSO4 2.0 g·L-1，CaCl2 0.0364 g·L-1，FeCl3 0.00025 g·L-1)；初始pH=7.5；接种量10 mL·L-1；培养温度35℃。IPTG诱导偶氮还原酶表达的最佳条件为：IPTG的投加时机为E．coli JM109（pGEX-AZR）的对数生长后期，即OD660为1.7～1.8，最大IPTG的添加浓度以1 mmol L-1，诱导的持续时间为8 h。可利用乳糖代替IPTG作为偶氮还原酶表达的诱导剂，乳糖的最佳投加浓度为40 mmol·L-1，乳糖诱导的蛋白含量和偶氮还原酶活性为IPTG诱导时的93.6％和85.7％。E．coli JM109（pGEX-AZR）对酸性大红GR的共代谢脱色动力学包括生长基质的利用动力学、染料的脱色动力学、生物的生长动力学。E．coli JM109（pGEX-AZR）对生长基质-葡萄糖的利用符合Monod方程，其中μmax g为0.07657 g·g-1·h-1，Kg为0.3324 g·L-1；当有酸性大红GR存在时，对葡萄糖的降解存在非竞争性抑制，抑制系数Kig为0.213g·L-1。酸性大红GR的脱色动力学符合底物抑制模型Andrews，当存在生长基质时，μmax c为42.45 mg·g-1·h-1，Kc为584.93 mg·L-1，Kic为556.89 mg·L-1。E．coli JM109（pGEX-AZR）的产率系数Ym为0.1 g·g-1；生物转化能力Tm为121.2 mg·g-1；内源衰减系数b为0.0378d-1。E．coli JM109（pGEX-AZR）对多种偶氮染料有较好的脱色效果。供氧条件对偶氮染料脱色的影响很大，厌氧条件有利于酸性大红GR的脱色：脱色最佳的pH值为中性或弱碱性；在25～40℃范围内，随着温度的提高，脱色速率有所提高。当废水中存在浓度为1～5％的NaCl、NaSO4时，E．coli JM109（pGEX-AZR）对酸性大红GR保持较高的脱色性能，而NaNO3的存在对酸性大红GR的脱色具有很大影响，随着NaNO3浓度的增加，脱色率明显降低。用海藻酸钠及聚亚胺酯大孔泡沫对E．coli JM109（pGEX-AZR）进行固定化，固定化细胞对酸性大红GR的脱色都符合底物抑制模型Andrews。比较不同存在形态的E．coliJM109（pGEX-AZR）对酸性大红GR的脱色动力学可知，海藻酸钠固定的E．coli JM109（pGEX-AZR）的最大比脱色速率及半饱和系数都比游离态有所降低，说明由于海藻酸钠固定，底物的传递受到影响，使速率下降；而抑制系数有所增加，说明固定后对细菌有所保护，菌体耐受环境变化的能力提高。而聚亚胺酯大孔泡沫固定菌体的动力学参数全部比游离态的有所提高，说明聚亚胺酯大孔泡沫适合用来固定该菌，实现对酸性大红GR的脱色。将E．coli JM109（pGEX-AZR）投加到浸没式厌氧膜生物反应器（SAnMBR）中，在SAnMBR连续运行过程中，对酸性大红GR具有88％～93％的脱色率。通过膜过滤作用后，出水酸性大红GR的脱色率可以维持在96％左右。膜生物反应器对CODCr，的去除率范围为56％～72％。在反应过程中，菌体浓度由初始浓度1.97 g·L-1升高到2.12 g·L-1，后逐渐降低，最终维持在1.60 g·L-1～1.80 g·L-1之间。将各种不同存在形态的E．coli JM109（pGEX-AZR）投加到厌氧序批式生物反应器（AnSBR）中，考察其对生物脱色过程的强化作用，投加游离态和大孔泡沫固定菌体的系统表现出类似的强化性能，脱色能力及抗浓度负荷冲击的能力都高于投加海藻酸钠包埋菌体的强化系统和对照系统。在运行过程中取污泥总DNA进行指纹分析的结果表明，E．coli JM109（pGEX-AZR）能够在强化系统维持较高的丰度，不同形式E．coli JM109（pGEX-AZR）的投加丰富了污泥群落的多样性。