阿托伐他汀改善骨髓间充质干细胞治疗急性心肌梗死疗效的机制研究

来源 :北京协和医学院 | 被引量 : 0次 | 上传用户:bigjohn6120
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目的:骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)具有多向分化潜能,是急性心肌梗死(acute myocardial infarction, AMI)后干细胞移植治疗的理想供体。MSCs移植能够改善AMI后心功能,但心梗后局部恶劣的微环境不利于移植细胞的存活,严重影响了其疗效。既往的研究表明他汀类药物能够抑制体外缺氧/无血清(hypoxia/serum deprivation, H/SD)及体内缺血导致的MSCs凋亡,提高干细胞移植疗效,但具体机制不清。自噬是细胞“自我吞噬”的复杂过程,可能在他汀对细胞存活和凋亡的调节中起到了重要的作用,但自噬是否参与H/SD条件下他汀对MSCs凋亡的保护尚未明确。单磷酸腺苷活化蛋白激酶(AMP-activated protein kinase, AMPK)途径是调控细胞能量代谢的关键信号通路,可以通过间接抑制它主要的下游效应分子,哺乳动物雷帕霉素靶蛋白(mammalian target of rapamycin, mTOR)的活化而激活白噬。因此本实验旨在通过H/SD模拟体内缺氧缺血环境,探讨白噬在H/SD诱导的MSCs凋亡中的作用;并假设临床上最常用的他汀类药物,阿托伐他汀(atrovastatin, ATV)能够通过AMPK/mTOR通路激活自噬而发挥其对MSCs凋亡的保护作用。方法:分离并培养Sprague-Dawley大鼠MSCs,将第三代细胞随机分为正常组(normal)、对照组(H/SD)、不同浓度梯度阿托伐他汀组(ATV0.001μM-10μM)、自噬抑制剂3-methyladenine组(3-MA,5mM)、自噬促进剂雷帕霉素组(rapamycin,10nM)、AMPK通路抑制剂Compound C组(10μM)。流式细胞仪检测MSCs自噬及凋亡比例;蛋白免疫印迹法(Western bolt, WB)检测自噬相关蛋白LC3、beclinl水平,凋亡相关蛋白bax、bcl-2、细胞色素C水平及AMPK、mTOR,总蛋白及其磷酸化的水平,透射电镜观察自噬体的形成,荧光显微镜观察AVO阳性细胞。结果:H/SD条件下ATV可以升高自噬细胞比例、增加LC3-Ⅱ的表达并促进自噬体的形成。自噬抑制剂3-MA在抵消ATV自噬促进作用的同时也增加了ATV组MSCs的凋亡率和促凋亡蛋白bax和细胞色素C的表达。与H/SD对照组相比,ATV各组AMPK的磷酸化水平显著升高而mTOR磷酸化水平显著下降。与ATV组相比,AMPK抑制剂Compound C组的AMPK磷酸化水平下降,mTOR磷酸化水平升高,并且MSCs自噬水平显著被抑制。结论:ATV可以抑制H/SD诱导的大鼠MSCs凋亡,这种保护机制主要与AMPK/mTOR通路介导的自噬激活有关。目的:骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)被广泛用于心肌再生医学研究。已有的证据表明急性心肌梗死(acute myocardial infarction, AMI)后移植MSCs可以改善心功能,但由于AMI后缺血缺氧等恶劣的微环境导致大部分移植MSCs死亡而使其疗效受限。他汀类药物具有抗炎、抗氧化等多效性,能够提高移植疗效,但具体机制不清。因此,本实验在体外建立H9C2心肌细胞系缺氧/无血清(hypoxia/serum deprivation, H/SD)模型,并通过性别错配法在心梗大鼠体内移植异体骨髓MSCs,观察阿托伐他汀(atorvastatin, ATV)对移植MSCs存活及疗效的影响,并进行相关信号通路的分析和机制探讨。方法:体外实验分为浓度梯度实验与机制探讨两部分。其中浓度梯度部分设为正常组(normal组)、缺氧/无血清对照组(H/SD组)、阿托伐他汀各浓度组(ATV0.001μM、ATV0.01μM、ATV0.1μM、ATV1μM、ATV10μM)共7组;机制探讨部分设为normal组、H/SD组、最适ATV浓度组、焦磷酸牦牛儿基牦牛儿酯组(geranyl geranyl pyrophosphate, GGPP10μM)、ATV+GGPP组共5组。分别以Western Blot及ELISA方法检测相关因子及信号通路的水平变化。体内试验将140只雌性SD(Sprague-Dawley)大鼠(6-8周龄)随机分为7组(每组20只):假手术组(Sham)、AMI对照组(AMI)、单纯阿托伐他汀组(ATV),单纯MSCs移植组(MSCs),联合ATV+MSCs移植组(ATV+MSCs),联合ROCK抑制剂法舒地尔组(Fasudil), Fasudil+MSCs移植组(Fasudil+MSCs)。通过开胸结扎冠状动脉左前降支模拟AMI,30分钟后给予心肌内注射MSCs60μL(5×106细胞)。术后一周检测基线心功能。术后4周为实验终点,检测心功能,移植MSCs存活,分析相关信号通路蛋白。结果:体外实验表明,与H/SD组相比,ATV组白细胞介素6(interleukin-6,IL-6)、肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor-α, TNF-α)及结缔组织生长因子(connective tissue growth factor, CTGF)的表达和分泌均显著降低;而与ATV组相比,ATV+GGPP组IL-6、TNF-α及CTGF的表达和分泌显著升高(P<0.001)。相关信号通路研究发现尽管各组Rho激酶(Rho associated coiled-coil forming protein kinase, ROCK)、肌球蛋白磷酸酶靶标亚基(myosin phosphatase target subunit, MYPT)和胞外信号调节激酶(extracellular signal-regulated kinases, ERK)的总蛋白水平无明显变化(P>0.05),但ATV组的MYPT、ERK磷酸化水平较H/SD组明显降低(P<0.001),且GGPP可以抵消ATV的这种作用(P<0.05)。动物实验表明,MSCs移植后4周,与AMI对照组相比,心脏超声显示的左室舒张末期内径(left ventricular end diastolic diameter, LVEDd)、左室收缩末期内径(left ventricular end systotic diameter, LVESd)、左室射血分数(left ventricular ejection fraction, LVEF)和左室短轴缩短率(left ventricular fractional shortening, LVFS)以及左心导管检测左室舒张末期压力(left ventricular end diastolic pressure, LVEDP)、等容收缩期左心室内压力上升的最大速率(dp/dt)和等容舒张期左心室压力下降的最大速率(-dp/dt)等在MSCs组均无显著差异(P均>0.05),而LVEDd、 LVESd、LVEDP和-dp/dt在其余各组均显著减小(P<0.001),LVEF、LVFS和dp/dt仅在ATV+MSCs组和Fasudil+MSCs组显著升高(P<0.001)。组织化学分析显示,与AMI对照组相比,其余各组均可见炎症细胞浸润减少,梗死周边血管增多,但仅ATV+MSCs组和Fasudil+MSCs组的左室纤维化面积减小和存活心肌比例增多具有显著差异。荧光原位杂交和RT-PCR显示ATV+MSCs组和Fasudil+MSCs组的MSCs存活率明显高于MSCs组。Western Blot分析显示,阿托伐他汀抑制心肌IL-6、TNF-α及CTGF的表达,降低MYPT和ERK的磷酸化水平(<0.001)。结论:ATV可以促进移植MSCs的存活,改善MSCs移植治疗AMI的疗效,并且ATV的这种保护作用可能与其抑制RhoA/ROCK/ERK信号通路抑制了AMI后心肌炎症和纤维化有关。
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