醛酮还原酶家族1成员B10(Aldo-keto Reductase family 1, member B10, AKR1B10),也叫醛糖还原酶相似蛋白1 (Aldo-keto Reductase Like-Protein, ARL-1)主要表达于正常人的结肠和小肠组织,而在肝、胸腺、前列腺、睾丸和骨骼肌等组织中表达低。AKR1B1O一方面还原醛酮类羰基化合物为相应的醇类,保护DNA免于羰基毒性损伤和细胞免于癌变；另一方面AKR1B10稳定乙酰辅酶A羧化酶α(Acetyl-CoA Carboxylase, ACCα),阻止ACCα降解,从而调节脂质合成,促进肿瘤细胞生长增值。因此,AKR1B10与肿瘤的发生发展密切相关。AKR1B10在肝癌、肺癌、子宫颈癌等多种肿瘤细胞中高表达,是吸烟导致的非小细胞型肺癌的病理学诊断标记物。在本课题中,利用自行开发的ELISA检测法(.已申请专利保护：US13/017,618),我们发现AKR1B10可从肿瘤细胞内分泌到细胞外。这种分泌现象不但发生在肠癌细胞株HCT-8、HT29,肺癌细胞株H460、A549,乳腺癌细胞株MDA-MB-468, BT-20,肝癌细胞株HepG2等表达内源性AKR1B0的肿瘤细胞株和转染外源性AKR1B10基因的MCF-7乳腺癌细胞株。血清可刺激细胞分泌AKR1B10,而且与透析过的血清相比,平台期的高度无明显变化,但达到平台期的时间更短；这提示血清小分子(离子)决定了分泌的速度,而血清大分子决定了分泌的峰值。AKR1B10的分泌量与细胞数目正相关,但单位细胞分泌量与细胞密度负相关。分泌的AKR1B10仍然保留着与等量纯蛋白酶同样的活性。本课题还深入研究了AKRlB10分泌的机制。通过信号肽分析软件,我们发现AKR1B10的氨基酸序列缺少分泌信号肽,所以推测AKR1B10并不能通过经典的内质网-高尔基(ER-to-Golgi)分泌途径分泌到细胞外的。AKR1B10的分泌不受蛋白翻译抑制剂Cycloheximide(CHX)和ER-to-Golgi分泌途径抑制剂Brefeldin A的影响,说明分泌的AKR1B10是已经合成的,而与正在翻译合成的AKRlB10无关,也与ER到Golgi体之间的转运无关。因此,AKR1B10的分泌途径是非ER-to-Golgi依赖的非经典途径。溶酶体介导的分泌途径是常见的非经典分泌途径。为了论证AKR1B10是否也是通过溶酶体途径分泌的,我们分离了HCT-8细胞的溶酶体,发现AKR1B10存在溶酶体中；用荧光蛋白保护分析法发现,细胞被打孔剂Digitonin和胰蛋白酶(Trypsin)处理后,胞浆内绝大部分带绿色荧光(EGFP)标记的游离AKR1B10被消化掉了,而剩下的点状EGFP-AKR1B10可与溶酶体共定位。这说明AKR1B10存在于溶酶体。为了进一步论证AKR1B10的分泌与分泌型溶酶体出胞的关系,我们用影响溶酶体出胞的因素如温度、ATP、钙离子(Ca2+)等处理HCT-8细胞,发现温度越高,AKR1B10分泌越多,温度越低,分泌越少,4℃时,分泌几乎停止；提供能量的ATP能促进AKR1B10分泌；增加培养基中Ca2+浓度也可促进AKR1B10的分泌,Ca2+跨膜转运体Ionomycin则显著地促进了AKR1B10的释放。趋溶酶体药氯化氨(NH4C1)一方面可促进溶酶体出胞,另一方面可阻止蛋白进入溶酶体；因此,用N-H4C1预处理HCT-8细胞后,AKR1B10分泌减少了；而未预处理组,NH4Cl促进了AKR1B10的分泌。同时,我们发现AKR1B10的释放与溶酶体标记物Cathepsin D的释放规律是一致的,这提示AKR1B10是通过溶酶体介导的非经典途径分泌的。分泌性溶酶体的出胞受调节细胞内Ca2+浓度的信号通路所调节。AKR1B10的分泌受到这些通路中关键信号分子ADP核糖基化因子(ADP-ribosylation factor, ARF)抑制剂Exo-1、磷脂酶C(phospholipase C, PLC)抑制剂U73122的抑制,受G蛋白激动剂GTPγS、G蛋白偶联受体配体fMLP的刺激。进一步证明了AKR1B10的分泌是通过分泌性溶酶体的出胞介导的。本课题接着探讨了AKR1B10进入溶酶体的机制。我们用ATP结合盒超家族转运蛋白(ATP-Binding cassette, ABC)的抑制剂4,4’-diisothiocyanatostilbene-2,2’-disulfonic acid (DIDS)和Glibenclamide(Glib)处理HCT-8细胞后,发现溶酶体内AKR1B10含量显著减少,分泌到细胞外的AKR1B10也相应减少。提示溶酶体膜上ABC转运体是转运AKR1B10进入溶酶体的主要通道。本课题还证实了AKR1B10在体内也是分泌蛋白。因为AKR1B10主要表达于肠道上皮,因此我们收集了11例正常人的回肠液,检测了其中AKR1B10浓度,发现AKR1B10特异性表达于成熟的肠道上皮细胞,并分泌到肠腔,浓度为188.6～535.7ng/ml (average=298.1ng/ml, n=11)。本课题进一步探讨了主要分布于胞浆的AKR1B10转运到溶酶体的机制。用免疫共沉淀(CoIP)和Pulldown法发现热休克蛋白90a(Heat Shock Protein 90 alpha, HSP90a)可与AKR1B10相互作用。HSP90α抑制剂Geldanamycin (GA)显著地抑制了HCT-8细胞AKR1B10的分泌,降低了HSP90α与AKR1B1O的结合,减少了AKRlB10在溶酶体内的聚集。非经典分泌蛋白通常包含一个与分泌相关的功能域。因此,我们研究了不同AKR1B10肽段的分泌效率,以及它们与HSP90α的结合情况。通过构建AKR1B10全长和不同肽段(N端的N1-39、N1-83、N1-142、N1-231以及C端的C204-261、C204-316)的表达载体GST/pGEX,并将它们分别转染到293T细胞中；与全长AKR1B10的分泌效率相比,N端肽段(N1-231)不具有分泌功能；而C端肽段C204-261、C204-316的相对分泌效率可达74.2±3.0%和81.54±5.5%。这提示介导AKR1B10分泌的功能域可能存在于C端肽段C204-261。接着,我们将螺旋10(氨基酸残基233到240)上氨基酸残基233K、236E和240K三个位点进行了单点或联合突变；与野生型AKR1B10相比,233K/A、236E/A和240K/A单点突变型AKR1B10的分泌效率分别下降到59.2±2.1%、63.3±1.1%和46.9±3.1%；而两点联合突变型AKR1B10的分泌效率减少到了43.15±1.5%(K233A和E236A联合突变)、33.30±1%(K233A和K240A联合突变)和33.52±3.1%(E236A和K240A联合突变)；三点突变型AKR1B10的分泌效率只有野生型的18.24±3.2%。免疫共沉淀实验显示,三点突变性AKR1B10丧失了结合HSP90α的能力；western blot分析表明,突变性AKR1B10在溶酶体内的聚集显著减少了。这些结果提示,螺旋10(aa233-240)通过与HSP90α结合从而介导了AKR1B10的分泌；该螺旋中氨基酸位点233K、236E和240K是结合HSP90α的关键位点。最近,我们研究发现,AKR1B10在乳腺癌组织中过表达,可增加乳腺癌细胞的脂质合成,促进生长增值,抑制醛酮类羰基化合物诱导的凋亡；AKR1B10高表达与乳腺癌的生长、淋巴结转移和存活率相关,提示AKR1B10是一个新的乳腺癌预测指标。因此,本课题探讨了开发AKR1B10为诊断乳腺癌的血清学指标的可行性。通过对乳腺癌组织芯片进行免疫染色发现,正常乳腺小叶和乳腺管低表达或不表达AKR1B10；而在28例原位乳腺管癌中,有20例(71.4%)AKR1B10高表达；在220例乳腺浸润癌中有184(83.6%)AKR1B10高表达；在32例术后复发乳腺癌中有28例AKR1B10高表达。此外,我们检测了50例乳腺癌患者肿瘤组织中AKR1B10的表达和血液中AKR1B10的含量,发现48例乳腺癌组织中的AKR1B10表达水平要显著高于癌旁正常组织的；血清中AKR1B10的平均浓度为20.72ng/ml,显著高于正常人群的5.19ng/ml；乳腺癌患者血清AKR1B10的浓度与肿瘤组织中AKR1B10的表达水平呈正相关。提示AKR1B10可作为诊断乳腺癌的血清分子标记物。总之,AKR1B10可通过HSP90α介导的溶酶体途径分泌到细胞外；AKR1B10可开发为诊断乳腺癌的血清学标记物。