核糖核酸酶A(Ribonuclease A，EC3.1.27.5，RNaseA)在DNA的制备、抑制病毒复制及作为基础研究中的模型蛋白等方面具有广泛的用途和需求，但商品化的RNaseA都是从动物的胰脏中分离提纯得到，这不仅限制了其大量获取，而且造成流程复杂，生产成本高。因此利用基因工程手段大量获取具有生物活性的RNase A已成为研究的热点。目前文献报道中RNase A的表达多通过可溶的形式表达，表达量少，这限制了其工业化生产和应用。　　 基于此，本研究利用PCR技术从牛胰脏的基因组中扩增出RNase A的编码序列，将其插入到带组氨酸标签的高效表达质粒pET28a中，然后利用E.coliBL21(DE3)以包含体的形式高效表达，之后利用稀释法和金属螯合色谱法(IMAC)对包含体进行了复性，为其工业化应用提供理论基础和实验依据。　　 研究结果表明，利用PCR技术从牛胰脏的基因组中扩增出RNase A编码基因，测序结果表明其与组织DNA的同源性为100％；将此目标基因插入到载体pET28a中后，转入E.coliBL21(DE3)宿主菌中，得到pET28a-RNaseA基因工程表达菌；RNase A基因的插入没有影响基因工程菌的生长规律，经过诱导，发现目标蛋白主要以包含体的形式表达；目标蛋白最优的表达条件为：培养菌的OD600为0.4时(约需培养2 h，此时菌体处于对数生长前期)开始诱导表达，IPTG浓度为1 mM，诱导3 h，此条件下RNase A包含体的表达量为60 mg/L培养液；包含体经过脲、表面活性剂和PE缓冲液的洗涤，最终目标蛋白的纯度达到83％。　　 RNase A包含体存在最佳的变性时间(1 h)；稀释复性仅可以使低浓度的蛋白(≤0.1 mg/mL)获得较好的复性效果(复性24 h，活性收率为52％)；IMAC法可使蛋白质终浓度为0.5 mg/mL的RNaseA复性24 h后达到80％的活性收率，同时实现了RNaseA包含体的纯化(复性产物的纯度为97％)。与稀释复性相比，在相同的蛋白终浓度(0.5 mg/mL)下，IMAC法复性收率较稀释复性提高了近60个百分点，产物纯度也提高了14个百分点。　　 此外，通过圆二色光谱对复性产物进行的分析结果表明。复性的RNase A与天然RNase A具有类似的高级结构。