燃料乙醇作为一种替代性的可再生的清洁型能源越来越受到重视。淀粉是除纤维素外来源最广泛的乙醇发酵原料之一。然而在淀粉乙醇发酵过程中由于原料预处理不彻底，导致原料转化率低，最终使乙醇生产成本增高。　　本文基于淀粉酒精发酵中存在的问题，应用酵母表面展示技术，将淀粉预处理的关键酶——α-淀粉酶和糖化酶的编码基因，分别融合在Pir4锚定蛋白的编码基因的两端，导入毕赤酵母细胞，从而使α-淀粉酶和糖化酶分别与Pir蛋白以融合蛋白的形式展示在酵母细胞表面，以获得高活性和高稳定性的α-淀粉酶和糖化酶催化体系。本论文得到以下结果:　　1、获得了分别表面展示α-淀粉酶和糖化酶的酵母重组菌株:首次利用Pir细胞壁蛋白，分别构建了α-淀粉酶和糖化酶的毕赤酵母表面展示载体ppic9k/Pir-Amy和ppic9k/Gla-Pir，采用淀粉平板的酶活性监测、G418抗性筛选多拷贝、免疫荧光检测、Western Blot等技术研究融合蛋白在细胞壁表面的锚定情况，获得高表达的阳性酵母重组菌株，命名为GS115/Pir-Amy和GS115/Gla-Pir。　　2、确定了两株重组菌的培养条件、产酶曲线以及制备全细胞催化剂的最佳培养时间。　　3、对制备的表面展示α-淀粉酶和糖化酶的酶学性质进行分析的结果表明:GS115/Pir-Amy和GS115/Gla-Pir的酶活性分别为3560.133 U/g（干细胞）和223.819U/g(干细胞);酶的最适反应温度分别为50℃-70℃和40℃，温度适应范扩大;最适反应pH分别为7.4和4.6;酶的耐热性优于游离酶(酶活力约保留70％和80％)。　　4、构建的α-淀粉酶和糖化酶表面展示菌株表现出良好的遗传稳定性:GS115/Pir-Amy的第33代菌株的α-淀粉酶活性仍为原菌株的98.97％，GS115/Gla-Pir的第20代菌株的糖化酶活力仍为原代菌株的97.02％。　　5、将构建的重组菌株与酿酒酵母共培养，研究了两种表面展示酶和游离酶水解淀粉的效率，以及共发酵的淀粉酒精转化率。