基于简化氨基酸的肌激酶表达、纯化、结晶与初步功能研究

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蛋白质的起源机制是生命起源研究最有挑战性的问题之一。基于小分子配体的保守性,我们实验室提出蛋白质起源的小分子诱导、选择模型,认为最早产生的蛋白质是ATP等小分子诱导和选择的结果。为了对该模型进行实验验证,采用“自上而下(Top-Down)”的策略,设计完全由存在于原始环境中的简化氨基酸组成的蛋白序列,并对理论设计的蛋白序列进行表达、纯化、结晶。我们选取大肠杆菌肌激酶的序列为模板,前期已完成氨基酸的简化,并得到了新的序列,本文针对这一理论设计的蛋白进行了表达、纯化、结晶和初步的功能研究,主要结果如下:  (1)利用分子克隆技术,构建融合表达载体。将设计的氨基酸序列转化为核苷酸序列,添加Nde I/Xho I为酶切位点,优化密码子后人工合成全长的基因375bp,并将这段基因克隆到载体pET28b上,构建表达载体pET28b-cAK,导入大肠杆菌BL21(DE3)菌株中。  (2)目的蛋白表达和纯化。对构建成功的表达载体,从诱导温度、IPTG浓度、诱导时间等方面进行了条件优化,而且进行了高效自诱导表达。结果表明:目的蛋白(命名为 cAK)可以进行可溶性表达,而且表达量很高,自诱导表达的目标蛋白质的量是普通诱导表达的8-10倍。对融合蛋白进行了两步IMAC纯化,Thrombin酶切,获得了高纯度的cAK蛋白。  (3)cAK结晶条件的筛选。我们对cAK自由态以及与小分子形成的复合态分别进行了结晶条件的初步筛选,获得了三个结晶条件,为后续结构研究奠定了基础。  (4)初步探讨了小分子与cAK之间的相互作用。通过CD测定,我们发现小分子的加入使蛋白质构象发生了明显变化。另外发现ADP的加入增强了cAK自身的稳定性,使其在室温的降解速率显著变慢。
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