利用动物细胞培养技术大规模开发高产的单克隆抗体药物，已经成为当今生物制药的主流，具有强劲的市场竞争力。但抗体类药物开发成本高，周期长，远不能满足日益增长的市场要求。为此建立高效的细胞培养过程，降低抗体类药物成本显得尤为重要。　　本文选取抗体高产(HP)和低产(LP)两个细胞培养过程，进行研究发现两过程中脂类代谢差异明显。首先，随着抗体产量的增加，脂类干重和细胞干重持续增加，特别是在HP细胞培养过程中，脂类干重远大于LP过程，且其增速也较快。HP中最大脂类干重达到83.70±0.04×10-9 mg/cell，是LP的2.35倍，最终抗体产量是LP的3倍，活细胞密度对时间的积分(IVCC)是LP的1.52倍。进一步通过细胞磷脂尼罗红荧光染色检测细胞磷脂发现，HP和LP细胞培养过程中细胞磷脂差异显著。随后对三种重要磷脂，磷脂酰胆碱(PC)，磷脂酰乙醇胺(PE)，磷脂酰丝氨酸(PS)的合成前体A，B，C，D四种因子，通过实验设计进行分析，发现组分A对细胞生长和抗体表达影响显著（P＜0.05），而组分B、C、D，均无显著影响。　　其次，在流加培养基中设计阳性对照（添加一定浓度的组分A）和阴性对照（不添加组分A）实验，通过反应器流加培养，验证组分A对细胞生长和抗体表达的影响。发现组分A的确能够提高细胞细胞活率，增加IVCC，促进抗体表达。最高细胞密度是阴性对照的1.09倍，抗体产量是阴性对照的2.39倍。　　最后通过在基础培养基和流加培养基中分别设计4个浓度梯度，考察了组分A对细胞生长和抗体表达的影响，以期搜寻出基础培养基和流加培养基中组分A的最适浓度。结果表明，随着组分A浓度的增加，细胞IVCC增加，抗体产量增加;但当组分A浓度过高时抗体表达受到抑制。通过考察培养环境中组分A总添加浓度对细胞生长和抗体表达的影响，得出基础培养基中组分A最优浓度为95.33 mg/L，流加培养基中最优浓度为189 mg/L。通过在2L反应器中对组分A最优浓度进行验证，最终IVCC达到79.16×109 cells·day/L，增加了74.29％，抗体产量为2.04 g/L，提高了1.83倍，抗体比生成速率为34.07 mg/(109cells·day)，增加了18.71％。　　通过本文的研究，明确了作为脂类前体的组分A对CHO细胞生长和抗体表达的影响，并优化了培养基中组分A的添加浓度。基于脂类代谢分析，建立了高效经济的细胞培养过程，并为培养基的优化提供了依据，为后续大规模单克隆抗体工业化生产奠定基础。