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目的:2型糖尿病(type2diabetes mellitus,T2DM)患者血清能通过氧化应激损伤内皮细胞并与β‐淀粉样肽(amyloid-β,Aβ)40、Aβ42有关。但是T2DM患者Aβ水平升高的原因尚不清楚,单纯的血糖升高能否通过影响Aβ40、Aβ42的水平而损伤内皮有待进一步的研究。因此,利用高糖及波动性高糖对人脐静脉内皮细胞株(Human Umbilical Vein Endothelial Cells,HUVECs)进行干预,探讨高糖及波动性高糖对内皮细胞的损伤,及损伤是否与Aβ40及Aβ42相关。方法:1.取对数生长期的HUVECs接种于培养皿并同步化后,分别用含有糖浓度为5.5mmol/L(Normal glucose group,NG组)、11mmol/L(High glucose group1,HG1组)、20mmol/L(High glucose group2,HG2组),甘露醇浓度为14.5mmol/L(Mannitolgroup,MG组)的1640培养液干预30min、3h以及3d,用含5.5/20mmol/L葡萄糖(先用葡萄糖浓度为5.5mmol/L的培养液干预24h,然后换用葡萄糖浓度为20mmol/L的培养液干预24h,最后再换用葡萄糖浓度为5.5mmol/L的培养液干预24h,Intermittent glucose group1,IG1组)或含20/5.5mmol/L葡萄糖(先用葡萄糖浓度为20mmol/L的培养液干预24h,然后换用葡萄糖浓度为5.5mmol/L的培养液干预24h,最后再换用葡萄糖浓度为20mmol/L的培养液干预24h,Intermittentglucose group2,IG2组)的培养液干预3d。2.倒置显微镜观察细胞形态学变化。干预30min、3h、3d后分别取各组细胞上清液,黄嘌呤氧化酶法测定超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)活力,评定细胞抗氧化能力;硫代巴比妥酸法测定丙二醛(maleic dialdehyde,MDA)含量,评定脂质过氧化情况;硝酸还原酶法测定一氧化氮(nitric oxide,NO)浓度,了解内皮功能;化学比色法测定乳酸脱氢酶(lactate dehydrogenase,LDH)活性,了解细胞或细胞膜损伤程度;ELISA法检测Aβ40及Aβ42的含量,了解高糖及波动性高糖对Aβ40和Aβ42的影响。结果:1.细胞形态学变化NG、HG1、HG2、MG组在倒置显微镜下观察,30min及3h各组细胞形态无明显变化。3d时,NG、HG1、MG组细胞轮廓清晰,多呈梭形,大小均匀,呈鹅卵石状紧密排列,HG2组细胞轮廓不清楚,细胞变圆、皱缩,胞体碎裂,IG1、IG2组细胞变化更加明显,且细胞变小及数量减少。2. HUVECs培养上清中MDA的变化在同一时间段,干预30min时各组MDA含量无显著差异(P>0.05);干预3h时,与NG组比较,HG1、MG组无显著性差异(P>0.05),HG2组MDA含量显著增高(P=0.000),与HG1组比较,HG2、MG组无显著差异(P>0.05),与HG2组比较,MG组MDA含量显著减少(P=0.000);干预3d时,与NG组比较,HG1、HG2、IG1、IG2组MDA含量显著增高(P值均为0.000),MG组无显著差异(P>0.05),与HG1组比较,HG2、IG1、IG2组MDA含量显著增高(P值分别为0.000,0.001,0.000),MG组MDA含量显著减少(P=0.000),与HG2组比较,IG1、IG2组含量显著增加(P值分别为0.000,0.003),MG组含量显著减少(P=0.002)。IG1与IG2组间无显著差异(P>0.05)。不同时间段进行组内比较,NG组30min、3h、3d时MDA含量无显著差别(P>0.05);在HG1组内,与30min比较,3hMDA含量无显著差异(P>0.05),3d含量增加显著(P值为0.000),与3h比较,3d时MDA含量增加显著(P=0.001);在HG2组内,与30min比较,3h、3d时MDA含量显著增高(P值分别为0.001,0.000),与3h比较,3d含量增高显著(P=0.000); MG组各时间段无显著差异(P>0.05)。3. HUVECs培养上清中SOD的变化在同一时间段,干预30min时各组SOD活力无显著差异(P>0.05);干预3h时,与NG组比较,HG1、MG组无显著差异(P>0.05),HG2组SOD活力显著减少(P=0.000),与HG1组比较,HG2、MG组无显著差异(P>0.05),与HG2组比较,MG组SOD活力显著增多(P=0.000);干预3d时,与NG组比较,HG1、HG2、IG1、IG2组SOD活力显著减少(P值均为0.000),MG组无显著差异(P>0.05),与HG1组比较,HG2、IG1、IG2组SOD活力显著减少(P值均为0.000),MG组SOD活力显著增加(P=0.000),与HG2组比较,IG1、IG2组SOD活力显著减少(P值分别为0.002,0.005),MG组活力显著增加(P=0.001)。IG1与IG2组间无显著差异(P>0.05)。不同时间段进行组内比较,NG组30min、3h、3d时SOD活力无显著差别(P>0.05);在HG1组内,与30min比较,3h的SOD活力无显著差异(P>0.05),3d活力减少显著(P=0.000),与3h比较,3d时SOD活力减少显著(P=0.001);在HG2组内,与30min比较,3h、3d时SOD活力减少显著(P值分别为0.001,0.000),与3h比较,3d的SOD活力减少显著(P=0.000); MG组各时间段无显著差异(P>0.05)。4.HUVECs培养上清中NO的变化在同一时间段,干预30min、3h时各组NO含量无显著差异(P>0.05);干预3d时,与NG组比较,HG1、HG2、IG1、IG2组NO含量显著减少(P值均为0.000),MG组无显著差异(P>0.05),与HG1组比较,HG2、IG1、IG2组NO含量显著减少(P值均为0.000),MG组NO含量显著增加(P=0.000),与HG2组比较,IG1,IG2组NO含量显著减少(P值均为0.000),MG组含量显著增高(P=0.004)。IG1与IG2组间无显著差异(P>0.05)。不同时间段进行组内比较,NG组与30min比较,3h、3d时NO含量显著增加(P值分别为0.002,0.000),与3h比较,3d时NO含量显著增加(P=0.003);在HG1组内,与30min比较,3h、3d时NO含量显著减少(P分别为0.001,0.000),与3h比较,3d时NO含量减少显著(P=0.001);在HG2组内,与30min比较,3h、3d时NO含量显著减少(P值分别为0.001,0.000),与3h比较,3d含量减少显著(P=0.04); MG组内与30min比较,3h的NO含量显著增高(P=0.002),3d的NO含量显著增高(P=0.003),与3h比较,3d的NO含量显著增加(P=0.008)。5. HUVECs培养上清中LDH的变化在同一时间段,干预30min时,与NG组比较,HG1、MG组LDH活性无显著差异(P>0.05),HG2组LDH活性显著增高(P=0.000)与HG1组比较,HG2组活性显著增高(P=0.005)与HG2组比较,MG组活性显著降低(P=0.003);干预3h时,与NG组比较,MG组无显著差异(P>0.05),HG1、HG2组LDH活性显著增高(P值均为0.000),与HG1组比较,HG2组活性显著增高(P=0.000),MG组活性显著降低(P=0.005),与HG2组比较,MG组LDH活性显著减少(P=0.009);干预3d时,与NG组比较,HG1、HG2、IG1、IG2组LDH活性显著增高(P值均为0.000),MG组无显著差异(P>0.05),与HG1组比较,HG2、IG1、IG2组LDH活性显著增高(P值分别为0.000,0.001,0.000),MG组LDH活性显著减少(P=0.000),与HG2组比较,IG1、IG2组LDH活性显著增加(P值分别为0.000,0.003),MG组LDH活性显著减少(P=0.002)。IG1与IG2组间无显著差异(P>0.05)。不同时间段进行组内比较,NG组30min、3h、3d时LDH活性无显著差别(P>0.05);在HG1组内,与30min比较,3h、3d的LDH活性增加显著(P值均为0.000),与3h比较,3d时LDH活性增加显著(P=0.001);在HG2组内,与30min比较,3h、3d时LDH活性显著增高(P值分别为0.018,0.000),与3h比较,3d含量增高显著(P=0.000); MG组各时间段无显著差异(P>0.05)。6. HUVECs培养上清中Aβ40和Aβ42的变化同一时间段内各组Aβ40和Aβ42的浓度均无显著差异(P>0.05),组内在不同时间段进行比较,Aβ40和Aβ42浓度也无显著差异(P>0.05)。结论:1.恒定高糖及波动高糖均可以增加血管内皮MDA的生成、降低SOD的活力、增加LDH活性和减少NO的产生,具有一定的时间依赖性和浓度依赖性,同时波动高糖使其变化更加显著。表明糖浓度增加能够损伤内皮细胞,且波动高糖损伤更大,与临床DM血管并发症具有一致性。因此,控制DM患者高血糖,保持血糖平稳,有助于减少血管内皮损伤,延缓DM血管并发症的发生。2.恒定高糖及波动高糖坏境下,内皮细胞Aβ40、Aβ42的水平无明显变化,提示单纯高糖及波动性高糖对内皮的损伤与Aβ40、Aβ42无关。Aβ40、Aβ42的变化可能与其他因素或高糖与其他因素的共同作用有关。