【摘 要】
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为探讨活性肽CC34酵母培养物对断奶羔羊小肠发育、抗氧化能力和对肠道菌群以及营养调控的作用,本试验采用单因素完全随机试验设计,选取状况良好、体重相近（9.64±0.84 kg）的24只24日龄左右的雄性羔羊（小尾寒羊×东北细毛羊）,随机分为3组,每组为8个重复,单栏饲养。对照组（Control group,CON）羔羊饲喂基础饲粮,酵母培养物组（Pichia yeast culture group
【基金项目】
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国家自然科学基金面上项目（32072759）； 黑龙江省肉羊协同创新与推广体系专项；
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为探讨活性肽CC34酵母培养物对断奶羔羊小肠发育、抗氧化能力和对肠道菌群以及营养调控的作用,本试验采用单因素完全随机试验设计,选取状况良好、体重相近（9.64±0.84 kg）的24只24日龄左右的雄性羔羊（小尾寒羊×东北细毛羊）,随机分为3组,每组为8个重复,单栏饲养。对照组（Control group,CON）羔羊饲喂基础饲粮,酵母培养物组（Pichia yeast culture group,PY）在基础饲粮中添加2 g/kg不含活性肽CC34基因的酵母工程菌（活菌数1×10~9CFU/g）,活性肽CC34组（Active peptide group,CC34）在基础饲粮中添加2 g/kg活性肽CC34酵母培养物（活菌数1×10~9CFU/g）,预试期8天,正式期28天。分别于试验正式期的14天和28天在各组间随机选取3只羔羊进行屠宰并收集样品,通过对羔羊的空肠和回肠组织形态学分析、血液抗氧化、肝脏抗氧化、空肠抗氧化指标、氨基酸转运载体相关基因表达量以及对空肠食糜和回肠食糜中菌群结构测定并进行分析,探究活性肽CC34酵母培养物对断奶羔羊的影响,对活性肽CC34酵母培养物功能特性做出数据支撑和理论基础,为不久的将来开发活性肽作为人类和动物的功能性添加剂提供一定的理论参考价值。研究结果表明:（1）活性肽CC34的添加可显著增加整个试验期空肠的绒毛高度、绒毛宽度和绒毛表面积（P＜0.05）,显著提高回肠的绒毛宽度和降低隐窝深度（P＜0.05）。试验期第14天时,活性肽CC34酵母培养物组的羔羊空肠上皮组织中ZO-1基因的相对表达水平高于PY组和CON组（P＜0.05）;活性肽CC34组Claudin-1基因相对表达低于PY组同时又高于CON组（P＜0.05）;活性肽CC34组Claudin-1基因相对表达显著高于CON组（P＜0.05）。（2）活性肽CC34的添加可显著提高羔羊血清中SOD、T-AOC、GSH-Px和MPO的含量（P＜0.05）。显著降低MDA、NO和i NOS的含量（P＜0.05）。显著提高羔羊肝脏中T-AOC、GSH-Px和MPO含量（P＜0.05）,显著降低MDA、NO和i NOS的含量（P＜0.05）。显著提高羔羊空肠中T-AOC的含量（P＜0.05）,显著降低MDA和i NOS的含量（P＜0.05）。（3）活性肽CC34的添加对羔羊空肠和回肠微生物Alpha多样性无显著影响（P＞0.05）。但可提高试验期14天时空肠厚壁菌门相对含量（P＜0.05）,降低放线菌门相对含量（P＜0.05）。降低试验期28天时回肠放线菌门、变形菌门和螺旋菌门相对含量（P＜0.05）。可显著降低试验期14天时空肠Olsenella属相对含量（P＜0.05）。显著提高试验期28天时回肠Acetitomaculum属相对含量（P＜0.05）。（4）活性肽CC34的添加可提高试验期第14天时SMAP-29和SBD-1基因相对表达量（P＜0.05）;显著降低试验期14天时TLR4基因相对表达量（P＜0.05）,试验期28天时,PY组TLR4基因相对表达量显著高于活性肽CC34组和CON组（P＜0.05）。（5）活性肽CC34的添加可显著提高整个试验SLC3A2基因相对表达量（P＜0.05）;显著提高试验期14天时SLC7A11基因相对表达量（P＜0.05）;显著提高试验期28天时SLC7A7基因相对表达量（P＜0.05）。显著提高试验期28天时SLC7A9基因相对表达量（P＜0.05）。显著降低试验期14天SLC3A1基因相对表达量（P＜0.05）。综合以上结果,饲粮添加活性肽CC34酵母培养物对断奶羔羊小肠发育有促进作用,可增加断奶羔羊的抗氧化能力并对空肠和回肠细菌在门和属水平上的多样性做出一定改善。
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