低剂量HBCDs的肝细胞毒性及其分子机制的研究

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六溴环十二烷(Hexabromocyclododecanes,HBCDs)作为一种添加型阻燃剂,由于其良好的阻燃性能,被广泛地应用于聚苯乙烯泡沫、室内装潢纺织品、电缆线、橡胶粘合剂和电子产品等领域,是目前国际上生产和使用量最大的三类溴代阻燃剂(TBBPA、PBDEs和HBCDs)之一。HBCDs的使用量大、残留期长、在环境中的检出率高,具有一定的生物毒性,并且逐渐显露出持久性、生物蓄积性、长距离迁移性等持久性有机污染物(POPs)特点。目前已在多种环境介质(如空气、水、土壤以及底泥)、动物体(鱼类、鸟类、哺乳类)及人体样本(母乳、血液及脂肪组织)中检测到HBCDs的存在,其含量有逐渐增加的趋势,对环境及人体健康逐渐构成了威胁。目前的研究数据显示,HBCDs的急性毒性较低,商品级的HBCDs在低于水溶解度的条件下,不会对动物(尤其是高等哺乳动物)产生急性毒性。较长时间的HBCDs暴露会对机体的神经系统、内分泌系统、生殖发育系统等造成不同程度的慢性危害。用放射性同位素14C标记的HBCDs饲喂大鼠,结果显示肝脏是HBCDs最主要的靶器官。以往的毒理学研究所采用的HBCDs浓度一般是人类实际接触浓度的数百、数千甚至数万倍,不能真实地评价其环境暴露水平的生物学效应。本论文采用体外实验,控制HBCDs暴露浓度接近环境浓度范围,研究HBCDs对正常人胚肝细胞(L02)的毒性效应及其潜在的分子机制,明确低剂量HBCDs暴露对人体所产生的生物学效应,并进一步分析探讨HBCDs与肝癌发生、发展之间的关系。首先,我们将L02细胞暴露于不同剂量的HBCDs(10-14M-100μM)中,分别通过CCK-8检测、TUNEL检测、氧化应激检测、彗星实验、线粒体膜电位检测、Ca2+特异性荧光探针的方法,系统地研究HBCDs在全剂量范围内对细胞生长、细胞凋亡、胞内ROS水平、DNA损伤、线粒体损伤、胞内Ca2+浓度等生物效应的影响,并通过免疫印迹检测增殖相关基因PCNA和凋亡相关基因Apaf-1的蛋白表达水平,进一步明确低剂量HBCDs对L02细胞增殖与细胞凋亡的影响,确定剂量效应及时间效应关系,初步确定无毒性效应剂量范围。然后在确定的剂量范围内,以细胞生长与氧化应激为切入点,以PI3K/Akt通路与Nrf2-ARE通路为主线,通过免疫印迹检测关键信号分子的表达及磷酸化水平,辅佐以免疫荧光与EMSA实验对Nrf2的核转位及其转录活性进行检测,并进一步利用RNA干扰与PI3K抑制剂研究低剂量HBCDs对细胞增殖及氧化应激的调控机制。实验结果显示,高剂量HBCDs暴露(≥20μM)对L02细胞存在急性毒性效应,主要表现在抑制细胞生长,诱导细胞凋亡和DNA损伤的发生。另外,高剂量HBCDs诱导的超负荷的胞内ROS以及Ca2+水平的增加都可以归因于Apaf-1所介导的线粒体凋亡。然而,HBCDs在低剂量下(<10nM)不会诱导细胞死亡、细胞凋亡、DNA损伤及线粒体损伤的发生,但可以刺激L02细胞的生长,诱导细胞中活性氧自由基(ROS)水平的升高,同时促进细胞增殖核抗原(PCNA)高表达。因此,我们首先确定低剂量HBCDs(10-13-10-9M)为无毒性效应剂量区间。在专注于环境相关剂量(低剂量)HBCDs暴露水平的生物效应及其潜在的分子机制上,我们研究发现,低剂量HBCDs可以通过PI3K靶基因Akt蛋白上Ser473位点的磷酸化作用激活PI3K/Akt信号通路,调控Nrf2-ARE抗氧化通路的激活,主要表现在Nrf2表达升高并促进核转位,进而诱导ARE介导的下游抗氧化蛋白HO-1的表达,在此过程中,ROS作为第二信使起着重要的调控作用。另外,我们的结果还表明,细胞经低剂量HBCDs(≤1nM)预染毒之后可以明显减缓后期高剂量HBCDs(≥20μM)诱导的细胞死亡、氧化应激效应与DNA损伤。因此,低剂量HBCDs很可能通过激活PI3K/Akt信号通路与核转录因子Nrf2启动L02细胞的抗氧化保护作用,从而维持胞内氧化还原自稳态以保证自身的生长及增殖。然而,另一方面,已有研究证实PI3K/Akt通路在许多肿瘤细胞中均呈现持续激活状态,可以促进肿瘤的恶性转化、侵袭、转移。Nrf2的细胞抗氧化解毒功能亦会引起体细胞的突变,介导肿瘤的形成。因此,HBCDs慢性低剂量暴露很可能会通过氧化应激效应介导PI3K/Akt与Nrf2-ARE通路的持续的、微弱的上调,使正常肝细胞诱发突变,从而导致/促进肿瘤的发生与发展。
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