目的：未折叠或错误折叠蛋白质在内质网腔蓄积及细胞内稳态的破坏将导致内质网应激。适宜的应激有利于细胞内环境的恢复，然而严重而持久的内质网应激反应将导致内质网功能受损，诱导细胞凋亡。Β细胞具有高度发达的内质网，是对内质网应激最敏感的细胞之一，内质网应激介导的β细胞凋亡参与了糖尿病的发生与发展。糖调节蛋白78(GRP78)是热休克蛋白70家族的成员之一，作为一种分子伴侣在蛋白质的折叠和转运过程及内质网应激反应中发挥重要作用，也被称为内质网应激标志蛋白。本实验研究GRP78在链脲佐菌素(STZ)损伤糖尿病小鼠胰岛β细胞不同时期表达变化，揭示其与胰岛β细胞内质网应激的关联；研究GRP78对胰岛β细胞的保护作用，及对STZ诱导I型糖尿病发生发展的影响。　　 方法：　　 1.STZ诱导NIT-1细胞与糖尿病小鼠胰岛GRP78表达的检测　　 Balb/c小鼠20只,雄性,随机分为模型组15只和对照组5只。体内采用STZ一次大剂量腹腔注射制备I型糖尿病模型，分为第1、7、14天三个实验组，取其胰岛备用；体外用STZ处理NIT-1细胞株(来源于非肥胖型糖尿病小鼠(NOD)胰岛瘤细胞株)，分别在处理后2、6、24h收集细胞，柠檬酸缓冲液处理NIT-1细胞作为对照。应用实时定量聚合酶链反应(real-time PCR)方法检测GRP78 mRNA和CHOPmRNA表达变化，应用免疫斑点(western blot)方法检测其蛋白表达，流式细胞术(FCM)及荧光显微镜检测凋亡。比较STZ处理后未发生糖尿病小鼠与对照组小鼠的GRP78蛋白水平。　　 2.GRP78转染NIT-1细胞及其凋亡的检测　　 用含 GRP78基因的质粒转染NIT-1，命名为NIT-GRP78，作为细胞模型研究GRP78保护胰岛β细胞抵抗STZ,细胞因子(IL-1β+IFN-γ)和细胞毒性T细胞(CTL)诱导的损伤作用。FCM检测凋亡，real-time PCR检测CHOPmRNA的表达，比色法检测NO浓度和SOD活性。　　 　　 3.CTL与细胞因子的检测　　 转染或未转染GRP78基因的NIT-1细胞免疫Balb/c小鼠，取其脾细胞体外再次刺激后作为效应细胞，以NIT-GRP78和NIT-GFP细胞为靶细胞，CFSE与PI双染色FCM检测效应细胞对靶细胞的杀伤作用，ELISA检测效应细胞分泌IL-4和IFN-γ水平，并且将转染和未转染基因的NIT-1细胞移植入STZ诱导的糖尿病小鼠，观察移植前后的血糖、体重、糖刺激的胰岛素释放及生存时间。　　 结果：　　 1.STZ诱导NIT-1细胞与糖尿病小鼠胰岛GRP78表达　　 在受侵袭的胰岛β细胞GRP78表达早期增高，但晚期显著下降。随着GRP78的下降和CHOP表达增高，细胞凋亡逐渐增加。特别有意义的是STZ处理后未发生糖尿病小鼠的GRP78蛋白水平与对照组相比稳定增高，提示GRP78蛋白的表达可能对应激细胞具有一定程度的保护作用。　　 2.GRP78对损伤因子诱导NIT-1细胞凋亡的抵抗作用及其机制　　 在经过STZ和细胞因子处理后，与对照组相比，转染GRP78基因细胞培养上清中NO(P<0.05)水平降低，而SOD活性增高(P<0.05)，细胞内CHOPmRNA水平亦较低(P<0.05)，细胞凋亡率显著下降(P<0.01)。与对照组相比，转染GRP78基因的细胞对CTL的抵抗力显著增强。　　 3.GRP78对STZ诱导I型糖尿病小鼠发生发展的影响　　 通过转染或未转染GRP78基因的NIT-1体内外联合刺激获得的脾淋巴细胞，分别与不同靶细胞体外共培养后，CFSE与PI双染色FCM检测结果表明，NIT-GFP细胞诱导的脾淋巴细胞介导NIT-GRP78靶细胞中度坏死，而介导NIT-GFP细胞有重度坏死；NIT-GRP78细胞诱导的脾淋巴细胞介导NIT-GRP78靶细胞轻度坏死，而介导NIT-GFP细胞有中度坏死；ELISA检测结果表明，与NIT-GFP免疫获得的淋巴细胞相比，NIT-GRP78细胞免疫获得的淋巴细胞分泌IL-4水平显著增高(P<0.01)；将转染和未转染基因的NIT-1细胞移植入STZ诱导的糖尿病小鼠，观察移植前后的血糖、体重、糖刺激的胰岛素释放及生存时间，结果表明，转染了NIT-GRP78细胞的糖尿病小鼠的体重及血糖逐渐恢复正常，生存时间延长且在移植后7天检测糖刺激的胰岛素释放量也显著增高。　　 结论：以上结果表明，GRP78与胰岛β细胞内质网应激有密切关联；GRP78可以保护胰岛β细胞抵抗免疫损伤诱导的凋亡；且可诱导对Th1细胞具有负性调节作用的IL-4的分泌，有可能在胰岛细胞移植促进重建胰岛细胞功能中发挥重要作用。