目的:本实验利用肿瘤坏死因子-α（TNF-α）激活大鼠Tenon’s囊成纤维细胞中的核转录因子-κB(NF-κB)，检测成纤维细胞的增殖情况与NF-κB、RNA结合蛋白Lin28B的表达变化，以研究NF-κB及Lin28B在成纤维细胞增殖中的作用机制。
　　方法：原代培养大鼠的Tenon’s囊成纤维细胞，利用免疫组化法进行鉴定。取传至第四代的细胞消化成为2×104/ml悬液种入96孔板，分别加入终浓度为10ng/ml、50ng/ml和100ng/ml的TNF-α溶液，并于作用3h、6h、12h、18h及24h后，借助CCK-8法检测鼠的Tenon’s囊成纤维细胞的生长状况。取传至第四代的细胞以2×104/ml消化悬液种入12孔板，随机分为三组：A组为正常对照组，加入不含药物的正常培养基，B组加入等量含TNF-α的终浓度为50ng/ml的培养基，C组在加入100μmol/L的PDTC干预细胞0.5h后加入等量TNF-α终浓度为50ng/ml的培养基，培养12h后检测细胞生长状况，并行免疫组化及Real-timePCR法检测各组NF-κBmRNA及Lin28BmRNA表达量的变化。
　　结果：
　　1．原代培养的大鼠Tenon’s囊成纤维细胞多呈长梭形，胞体周边可见细长状突起，细胞核为圆形，位于细胞中央。行免疫组化染色鉴定，示细胞波形蛋白抗体染色呈阳性，角蛋白染色呈阴性，证实所培养的细胞为成纤维细胞。
　　2.CCK-8法检测结果示，TNF-α激活NF-κB的最佳作用浓度为50ng/ml，最佳作用时间为12h。
　　3.三组成纤维细胞的OD值差异有统计学意义（F=97.216，P=0.000），B组细胞的OD值较A组明显增加（P=0.012），C组细胞的OD值较B组显著降低（P=0.017），但与A组相比较差异无统计学意义（P=0.175）。
　　4.三组成纤维细胞中的NF-κBmRNA表达差异有统计学意义（F=496.996，P=0.000），A组成纤维细胞的胞质中表达少量的NF-κB；而B组细胞中的NF-κB则大量表达于细胞核中，且NF-κBmRNA的表达量较A组明显提高（P=0.000）；C组细胞的胞质与胞核中均表达少量NF-κB，而C组的NF-κBmRNA与B组相比表达量降低（P=0.000），与A组比差异无统计学意义（P=0.401）。
　　5.三组成纤维细胞的Lin28B主要在胞质中表达，且Lin28BmRNA表达量差异有显著统计学意义（F=552.956，P=0.000）。A组成纤维细胞表达极少量Lin28BmRNA；B组细胞中Lin28BmRNA的表达量则较A组有明显升高(P=0.000)；C组细胞中的Lin28BmRNA表达量较B组明显降低（P=0.000），与A组相比则差异无统计学意义（P=0.661）。结论：
　　1.TNF-α可以激活Tenon’s囊成纤维细胞中的NF-κB，进一步激活Lin28B的转录和表达，导致了成纤维细胞的增殖；
　　2．PDTC可以阻断细胞中NF-κB的活化，进而下调Lin28B的表达，从而抑制Tenon’s囊成纤维细胞的增殖。