嗜水气单胞菌的分离与16SrDNA鉴定

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  摘要 [目的]分离并鉴定鱼嗜水气单胞菌,并构建系统发育分析。[方法]从云南某鱼场采集发病鱼的病变组织进行细菌分离与培养,并对分离菌株进行初步鉴定、16S rDNA鉴定和系统发育分析。[结果]分离培养到1株细菌,命名为Ah1305。经表型鉴定、生化试验及16S rDNA系统发育分析,鉴定为嗜水气单胞菌。[结论]该研究可为快捷、准确检测鱼嗜水气单胞引起的疾病提供参考。
  关键词 嗜水气单胞菌;分离鉴定;16S rDNA
  中图分类号 S182;Q93-331 文献标识码 A 文章编号 0517-6611(2014)13-03907-04
  Abstract [Objective] The aim was to isolate and identify Aeromonas hydrophila and establish the phylogeny. [Method] Lesion tissue of fish was collected from a certain farm in Yunnan Province, and then the isolated strain was identified by preliminary identification, 16S rDNA identification and phylogenetic analysis. [Result] The bacteria were isolated and named as Ah1305. Through the morphological identification, biochemical test and 16S rDNA phylogeny analysis, it was identified as Aeromonas hydrophila. [Conclusion] The study can provide reference for quick and accurately test the disease caused by Aeromonas hydrophila.
  Key words Aeromonas hydrophila; Isolation and identification; 16S rDNA
  致病性嗜水气单胞菌(Aeromonas hydrophila)属于气单胞菌科(Aermonadaceae)气单胞菌属(Aeromonas),是革兰氏阴性短杆菌,两端钝圆,直或略弯,单个或成双排列,有极端单鞭毛,固体培养基上有周鞭毛,无荚膜,不形成芽孢,最适生长温度为28 ℃。嗜水气单胞菌普遍存在于淡水、海水、污泥、淤泥以及土壤中,是一种人畜共患病的病原。患病鱼出现烂尾、鳍充血,导致出血性败血症和流行性溃疡综合症(EUS)等症状[1-2],近些年来有大量的报道表明嗜水气单胞菌还可以引发人类的腹泻、中毒病、外伤性感染以及败血症等病症[3],其致病作用已引起公众的关注,该菌在国外被作为腹泻病原菌进行检测[4-5]。致病菌株除感染鱼及人类以外,还可以感染多种动物(如两栖类、爬行类、鸟类[6]等),给养殖业和公共卫生带来了巨大损失。
  笔者从云南某发病鱼场送检病料中分离到1株细菌,并对其进行表型鉴定及16S rDNA鉴定,以期为鱼场该病的检测与防治提供科学依据[7-11]。
  1 材料与方法
  1.1 材料
  1.1.1
  病料。采集云南省某鱼场发病鱼。将发病症状明显的鱼无菌解剖,取病变明显的肝脏、脾脏及肌肉,4 ℃下保存。
  1.1.2
  培养基。TSA培养基,购自北京路桥技术有限责任公司。糖类发酵等生化管,购自杭州天和微生物试剂有限公司。血液琼脂培养基。
  1.1.3
  主要试剂及仪器。细菌基因组DNA提取试剂盒(DP2001)、多功能DNA纯化回收试剂盒(DP1501),购自BIOTEKE公司。TaKaRa rTaq DNA酶、DL2000 Marker,购自宝生物工程(大连)有限公司。凝胶成像仪、PCR扩增仪,购自BIO-RAD公司,电泳仪购自北京六一仪器厂。
  1.2 方法
  1.2.1
  分离培养。将病鱼体表消毒,无菌取病变组织,剪碎研磨。用无菌生理盐水对病料进行10倍稀释,分别接种于TSA培养基和血液琼脂培养基,置于28 ℃培养24 h。观察菌落形态,挑取灰白色发生溶血的可疑单菌落进行革兰氏染色。将染色中有阴性短杆菌的菌落在TSA培养基和血液琼脂培养基上分离与纯化。
  1.2.2
  形态观察。将分离纯化后的细菌按照常规方法进行革兰氏染色并镜检。
  1.2.3
  生理生化试验。将纯培养的分离菌接种于生化培养基,进行各种糖发酵试验、精氨酸双水解酶试验、硫化氢试验、明胶液化试验、硝酸盐还原试验,28 ℃下培养24~48 h,记录培养结果。
  1.2.4
  分子生物学鉴定。
  (1)引物设计。参照GenBank已发表的16S rDNA序列设计1对引物,上游引物:27F(5’AGAGTTTGATCCTGGCTCAG3’),下游引物:1492R(5’GGTTACCTTGTTACGACTT3’)。引物由上海生工生物技术工程有限公司合成。
  (2)制备模板:将分离菌株用TSA液体培养基培养至对数生长期,按照细菌DNA提取试剂盒说明书步骤操作,提取细菌总DNA。
  (3)PCR反应体系:TaKaRa rTaq(5 U/μl) 0.5 μl、10×PCR Buffer 3 μl、2.5 mmol/L dNTP Mixture 2.5 μl、上游引物0.5 μl(10 pmol/L)、下游引物0.5 μl(10 pmol/L)、模板DNA 2 μl(50 ng)、灭菌双蒸水21 μl、共30 μl。   PCR反应条件为:95 ℃预变性5 min;95 ℃变性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,35个循环;72 ℃ 8 min,4 ℃保存,通过1%琼脂糖凝胶电泳检测PCR扩增结果。
  按照DNA纯化(胶回收)试剂盒说明书操作步骤对PCR产物进行纯化,并送交华大基因测序。
  1.2.5
  系统发育树的构建。用BLAST将分离株的16S rDNA测序结果与GenBank中登录的序列进行比对,并选取19株作为参比序列。将分离株序列与参比序列使用软件DNAMAN进行同源性分析,计算同源性数值。使用MEGA 5.0软件构建系统发育树,分析分离株与参比株的亲缘关系,鉴定分离株的种属。参比序列的名称、登录号、登录时间、分离来源及分离地区见表1。
  2 结果与分析
  2.1 培养特性
  通过细菌分离,得到1株细菌,命名为Ah1305。在TSA固体培养基上,形成半透明、圆形、中央凸起、边缘光滑的小菌落,直径在1 mm左右。在血液琼脂培养基上形成灰白色的菌落,产生β型溶血圈(图1)。
  2.2 细菌形态
  3 讨论
  在临床上鱼类的细菌病中,很多具有共同的症状(如体表充血、发红、溃烂、腹部膨大、腹水等),只依靠临床症状来判断及治疗有很大盲目性,需要通过实验室诊断才能确诊[12]。实验室鉴定鱼类细菌性疾病病原的方法有很多,主要包括生理生化特性鉴定技术(如用ATB细菌鉴定仪)[13-14] 、免疫学诊断技术(如间接ELISA)[15-16]、分子生物学方法[17-20](如LAMP)[21-22]等。PCR检测方法简便快捷,已被较多应用于嗜水气单胞菌的快速检测。检测的目的基因也有多种,如溶血素基因[23-24]、气溶素基因[25]、丝氨酸蛋白酶基因[26]、16S rDNA[27-28]等。
  以16S rDNA为目的基因的PCR鉴定方法最为成熟,也取得了较显著的成果。与表形鉴定、生理生化鉴定等传统的细菌鉴定方法相比,该方法操作简便,省时,且避免了传统生化试验的不稳定性。与针对其他基因的PCR鉴定方法相比,16S rDNA基因具有高度保守性的特点,稳定性好,可靠性高。对于混合感染的病例,可做到一次检测多种病原菌。该方法方便快捷,成本较低,准确性高,对于症状相似的疾病能够做到准确、快速鉴定病原菌,从而指导临床治疗,避免因误诊而造成的损失。
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