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摘 要：以嫩芽、茎尖为外植体，研究巨尾桉DH3229的组织培养及育苗技术。实验证明，不同的激素组合对巨尾桉DH3229外植体的诱导、生根有不同的影响。最适合诱导的增殖培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.2mg/L，其诱导出来的植株生长最快速，分枝最多，植株最高；最适合的生根培养基为MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L，生根率达94%，主根粗壮，平均长3根根须。但是移植到基质为黄土的培养杯中育苗时，成活率最高的培养基是MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，成活率达93%。
关键词：巨尾桉；组培；生根；移栽
中图分类号 文献标识码 A 文章编号 1007-7731（2013）15-26-03
Study on Tissue Culture and Genetic Improvement of Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla DH3229
Lu Juan et al.
（Yulin Forestry Research Institute of Guangxi，Yulin 537501，China）
Abstract：The tender buds were used as explants to study the tissue culture and genetic improvement of Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla DH3229 in the experiment.The results were as follws： The optimal subculture medium was MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.2mg/L，in which the plants grew expeditiously and strongly.The optimal rooting medium for test-tube plants was MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L，in which the rooting rate reached 94% and per plant could produce 3 roots.But the best optimum medium for plant transplantation was MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，in which the transplanting survival rate of the plants reached 93%.
Key words：Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla；Tissue culture；Rooting；Transplant
桉树（Eucalyptus）为桃金娘科桉树属植物的总称，共有945个种和变种，原产地为澳大利亚和印度尼西亚及其附近的岛屿[1]。桉树是世界三大速生树种之一，也是经济林和防护林的理想树种，而且具有速生丰产、适应性广、抗性强、繁殖容易等特点而被全球广泛引种[1-3]。巨尾桉（Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla）优株是以巨桉（E·grandis）为母本、尾叶桉（E·urophylla）为父本的杂交种[4]。巨尾桉具有生长迅速、树干圆满通直、轮伐期短的特点，是发展工业原料林的优良阔叶树种，其木材用途广，是造纸、造船和胶合板等的主要原料，木材畅销[5]。
笔者利用不同生长调节剂对巨尾桉DH3229外植体组织培养及育苗方面进行研究，研究结果为解决巨尾桉快速繁殖大量优质种苗具有一定的指导意义，并且为实现规模化育苗提供理论基础，对于建立高效、优质的桉树外植体组织培养系统等研究也有重要参考价值。
1 材料与方法
1.1 材料 在广西玉林市林业科学研究所孤木冲的优良巨尾桉DH3229品系中，选择树干笔直、树冠高大、生长良好的植株作为母本，在根部距离地面约20～30cm处进行环割，约100d后，取长出的嫩芽嫩茎作为外植体。
1.2 方法
1.2.1 外植体的选取和消毒
1.2.1.1 外植体的选取 用剪刀把生长良好的巨尾桉DH3229的嫩芽、茎尖剪取下来，用干净的塑料袋装好，密封。然后用流动的自来水冲洗干净，随后放到装有饱和洗衣粉液的三角瓶中，振荡5～10min，再用流动的自来水冲洗干净，约冲洗2h，置于超净工作台备用。
1.2.1.2 外植体的消毒 在超净工作台上，用灭过菌的剪刀把预处理的外植体（嫩芽、茎尖）剪成0.5～1.0cm的长度，用75%酒精消毒30s，然后放到装有0.1%氯化汞的玻璃瓶中，消毒10min，期间不断振动，以便外植体灭菌彻底。之后，用无菌水清洗5次，最后用无菌的滤纸吸干水分，待用。
把消毒过的外植体接种于初代培养基中。该培养基以MS培养基为基础培养基，附加3.5g/L的琼脂、蔗糖浓度为25g/L，然后用1mol HCl和1mol NaOH把培养基的pH调至5.8～6.2，随后把培养基分装到150mL的广口瓶中，121℃灭菌25min。
接种后培养条件为温度（28±2）℃，光照时间超过10h/d，培养7d，每天观察记录不同消毒处理的外植体污染率的情况。
1.2.2 不同激素配比对外植体诱导培养的影响 把灭菌后无污染的茎尖、嫩芽转接种于表1中的诱导培养基中，每种处理接种10瓶，每瓶20株，每7d观察记录其诱导情况。
表1 诱导培养基（mg/L）
[处理＼&基础培养基＼&6-BA＼&NAA＼&A（ck）＼&MS＼&0＼&0＼&B＼&MS＼&0.5＼&0＼&C＼&MS＼&0.5＼&0.2＼&D＼&MS＼&1＼&0＼&E＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&F＼&1/2 MS＼&0.5＼&0.2＼&G＼&1/2 MS＼&1＼&0＼&] 1.2.3 不同激素配比对外植体生根培养的影响 把相同条件下得到的生长大小等较一致的增殖苗，于无菌环境中，用灭过菌的剪刀剪取0.5cm长度的茎尖，直立向上接种到表2中的生根培养基中，每种处理接种10瓶，每瓶20株，每7d观察记录其生长情况及统计生根率情况。
表2 生根培养基（mg/L）
[处理＼&基础培养基＼&NAA＼&6-BA＼&IAA＼&A（ck）＼&MS＼&0＼&0＼&0＼&B＼&MS＼&0.5＼&0＼&0＼&C＼&MS＼&0.5＼&0.2＼&0＼&D＼&MS＼&1＼&0.2＼&0＼&E＼&MS＼&0＼&0＼&0.5＼&F＼&MS＼&0.5＼&0＼&0.5＼&G＼&MS＼&0.5＼&0＼&1＼&H＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&0＼&I＼&1/2 MS＼&0.5＼&0.2＼&0＼&J＼&1/2 MS＼&1＼&0.2＼&0＼&K＼&1/2 MS＼&0＼&0＼&0.5＼&L＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&0.5＼&M＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&1＼&]
1.2.4 培育条件 除了另外说明外，实验所用的MS、1/2MS培养基均按常规方法配制，在培养基中附加3.5g/L的琼脂、蔗糖浓度为25g/L，然后用1mol HCl和1mol NaOH把培养基的pH调至5.8～6.2，随后把培养基分装到150mL的广口瓶中，121℃灭菌25min。自然冷却后备用。接种后，培养温度为（28±2）℃，先黑暗培养7d，然后在光强度为2 000～2 500lx下每天光照12～14h，培养30d。
1.2.5 炼苗与移栽 将生根植株置于自然条件下炼苗7d，用清水洗干净根部的培养基，然后用1%高锰酸钾浸泡7～10min后，移植到基质为黄心土的塑料营养杯里，移植后立即浇水，然后遮荫。3d后用72%的农用链霉菌清液喷洒一次，待小苗长出新叶就开始施肥，30d记录生长情况。
2 结果与分析
2.1 不同激素配比对外植体诱导培养的影响 从表3中可以看出，不同的激素对巨尾桉DH3229外植体的诱导有不同的影响。当6-BA为0.5mg/L、NAA为0.2mg/L时（即处理C），巨尾桉DH3229外植体生长最快速，而且分枝多，植株最高，但是茎部较细小，与其他处理比较，仍适合用来做增殖培养（图1）。6-BA浓度过高，会让外植体生长过快，使得叶子出现黄色；在诱导培养基中缺少NAA则会使得外植体生长不稳定，表现出植株的高度不均一。在相同的激素条件下，巨尾桉DH3229的外植体在1/2 MS培养基上的生长情况没有在MS培养基上的好。
表3 不同激素配比对外植体诱导培养的影响
[处理＼&30d的生长情况＼&A（ck）＼&外植体生长缓慢，分枝较少，植株矮小，茎部较细小，叶子青色 ＼&B＼&外植体生长较快，分枝较多，植株高度不均一，茎部较粗，叶子青色 ＼&C＼&外植体生长最快速，分枝最多，植株最高，茎部却细小，叶子浅绿色＼&D＼&外植体生长快速，分枝较多，植株矮小，茎部粗，叶子出现黄色＼&E＼&外植体生长较为快速，分枝较多，植株较高，茎部粗，叶子浅绿色＼&F＼&外植体生长较快，分枝较少，茎部细小，叶子较大，呈青色＼&G＼&外植体生长快速，分枝较多，茎部较粗，叶子细小，出现白色的愈伤组织＼&]
图1 不同激素配比对外植体诱导培养的影响
2.2 不同激素配比对外植体生根培养的影响 从表4中可以看出处理D，即MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L对巨尾桉DH3229的生根最为有利。植株生长快速，茎部粗壮，主根粗大，其根须也较多（图2）。同时表4也说明，不同的激素对巨尾桉DH3229外植体生根有不同的影响。NAA与6-BA配比对巨尾桉DH3229生根的作用比较明显，而且主根比较粗壮，而NAA与IAA的配比对巨尾桉DH3229的生根影响则相对没那么显著。其根系总体比较细小。在相同激素配比下，MS培养基比1/2 MS培养基的生根作用更好。
表4 不同激素配比对外植体生根培养的影响
[处理＼&培养数量
（株）＼&生根数量
（株）＼&生根率
（%）＼&生根情况＼&A（ck）＼&200＼&87＼&43.5＼&植株生长缓慢，植株最矮小，茎部较细小，生根率低，根系不发达，长的根须纤细，1株只有1个主根＼&B＼&200＼&156＼&78.0＼&植株生长较快，植株较高，茎部较粗，生根率高，主根较大，平均有2条根须 ＼&C＼&200＼&165＼&82.5＼&植株生长较慢，植株矮小，茎部较粗，主根纤细，绝大部分植株有2条根须， 长3条根须的极少＼&D＼&200＼&188＼&94.0＼&植株生长最快速，茎部最粗，主根粗大，平均有3条根须＼&E＼&200＼&149＼&74.5＼&植株生长快速，茎部较粗，主根短而大，平均有2条根须＼&F＼&200＼&171＼&85.5＼&植株生长快速，茎部较粗，主根短小，平均有2条根须＼&G＼&200＼&120＼&60.0＼&植株生长缓慢，茎部较细，主根短而极小，只有1条根须＼&H＼&200＼&167＼&83.5＼&植株生长较快速，茎部细，主根长而粗小，长有3条根须＼&I＼&200＼&108＼&54.0＼&植株生长缓慢，植株中等，茎部细小，主根极短而粗，平均有2条根须＼&J＼&200＼&146＼&73.0＼&植株生长较快，茎部较粗，主根短而粗，平均有1条根须＼&K＼&200＼&170＼&85.0＼&植株生长较快，茎部细小，主根较小，平均有2条根须＼&L＼&200＼&136＼&68.0＼&植株生长缓慢，茎部细小，主根细小，平均有1条根须＼&M＼&200＼&164＼&82.0＼&植株生长缓慢，茎部细小，主根较小，平均有3条根须＼&]
图2 不同激素配比对外植体生根培养的影响
2.3 生根苗移植成活率及生长情况 待生根苗长到一定程度，先在自然条件下驯化7d，然后移植到营养杯中，其成活率及生长情况如表5所示。
表5 生根苗移植的生长情况
[处理＼&培育数量（株）＼&成活数量（株）＼&成活率（%）＼&A（ck）＼&85＼&12＼&14.12＼&B＼&156＼&59＼&37.82＼&C＼&165＼&152＼&93.00＼&D＼&187＼&139＼&74.33＼&E＼&148＼&108＼&72.97＼&F＼&169＼&135＼&79.88＼&G＼&120＼&58＼&48.33＼&H＼&165＼&61＼&36.97＼&I＼&104＼&89＼&85.58＼&J＼&140＼&96＼&68.57＼&K＼&170＼&92＼&54.12＼&L＼&131＼&102＼&77.86＼&M＼&163＼&78＼&47.85＼&]
从表4、5可以看出，移栽后的成活率与生根率没有明显的正比关系。处理D，即培养基为MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L时，其生根率最高，主根粗，茎部粗壮，但是移植后的成活率没有预期中高。处理C，即MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，其成活率达93%。
3 小结与讨论
（1）最适合诱导巨尾桉DH3229外植体的增殖培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.2mg/L，其诱导出来的植株生长最快速，分枝最多，植株最高，茎部却较为细小。（2）最适合的生根培养基为MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L，生根率达94%，主根粗壮，其上平均长有3根根须。（3）移植到基质为黄土的培养杯中育苗时，成活率最高的培养基是MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，成活率达93%。这可能与巨尾桉DH3229的根质量有关。有研究表明，桉树的木质化程度与根的质量呈正比关系[6]。因此，巨尾桉DH3229的木质化与移栽成活之间的关系还有待进一步的研究。
参考文献
[1]Eldridge K，Davidson J，Harwood C，et al.Eucalypt domestication and breeding[M].New York：Oxford University Press，1993.
[2]Williams J E，Brooker M I H.Eucalypts：an introduction[A]//Williams J E，Woinarski J C Z，Eucalypt E cology：Individuals to Ecosystemal[C].Cambridge：Cambridge University Press，1997：1-15.
[3]谢耀坚.中国桉树人工林可持续经营战略初探[J].世界林业研究，2003，16（5）：59-64.
[4]吴幼媚，王以红，蔡玲，等.巨尾桉优株芽器官的组培技术体系研究[J].西部林业科学，2009（3）：28-32.
[5]苏建华.巨尾桉组培苗嫩梢扦插育苗技术探讨[J].林业勘察设计，2011（1）：159-161.
[6]石大兴，王米力，石铁松，等.巨尾桉芽器官离体培养与快繁体系建立的研究[J].林业科学，2003，19（1）：69-75.
（责编：徐世红）
关键词：巨尾桉；组培；生根；移栽
中图分类号 文献标识码 A 文章编号 1007-7731（2013）15-26-03
Study on Tissue Culture and Genetic Improvement of Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla DH3229
Lu Juan et al.
（Yulin Forestry Research Institute of Guangxi，Yulin 537501，China）
Abstract：The tender buds were used as explants to study the tissue culture and genetic improvement of Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla DH3229 in the experiment.The results were as follws： The optimal subculture medium was MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.2mg/L，in which the plants grew expeditiously and strongly.The optimal rooting medium for test-tube plants was MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L，in which the rooting rate reached 94% and per plant could produce 3 roots.But the best optimum medium for plant transplantation was MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，in which the transplanting survival rate of the plants reached 93%.
Key words：Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla；Tissue culture；Rooting；Transplant
桉树（Eucalyptus）为桃金娘科桉树属植物的总称，共有945个种和变种，原产地为澳大利亚和印度尼西亚及其附近的岛屿[1]。桉树是世界三大速生树种之一，也是经济林和防护林的理想树种，而且具有速生丰产、适应性广、抗性强、繁殖容易等特点而被全球广泛引种[1-3]。巨尾桉（Eucalyptus grandis×Eucalyptus urophylla）优株是以巨桉（E·grandis）为母本、尾叶桉（E·urophylla）为父本的杂交种[4]。巨尾桉具有生长迅速、树干圆满通直、轮伐期短的特点，是发展工业原料林的优良阔叶树种，其木材用途广，是造纸、造船和胶合板等的主要原料，木材畅销[5]。
笔者利用不同生长调节剂对巨尾桉DH3229外植体组织培养及育苗方面进行研究，研究结果为解决巨尾桉快速繁殖大量优质种苗具有一定的指导意义，并且为实现规模化育苗提供理论基础，对于建立高效、优质的桉树外植体组织培养系统等研究也有重要参考价值。
1 材料与方法
1.1 材料 在广西玉林市林业科学研究所孤木冲的优良巨尾桉DH3229品系中，选择树干笔直、树冠高大、生长良好的植株作为母本，在根部距离地面约20～30cm处进行环割，约100d后，取长出的嫩芽嫩茎作为外植体。
1.2 方法
1.2.1 外植体的选取和消毒
1.2.1.1 外植体的选取 用剪刀把生长良好的巨尾桉DH3229的嫩芽、茎尖剪取下来，用干净的塑料袋装好，密封。然后用流动的自来水冲洗干净，随后放到装有饱和洗衣粉液的三角瓶中，振荡5～10min，再用流动的自来水冲洗干净，约冲洗2h，置于超净工作台备用。
1.2.1.2 外植体的消毒 在超净工作台上，用灭过菌的剪刀把预处理的外植体（嫩芽、茎尖）剪成0.5～1.0cm的长度，用75%酒精消毒30s，然后放到装有0.1%氯化汞的玻璃瓶中，消毒10min，期间不断振动，以便外植体灭菌彻底。之后，用无菌水清洗5次，最后用无菌的滤纸吸干水分，待用。
把消毒过的外植体接种于初代培养基中。该培养基以MS培养基为基础培养基，附加3.5g/L的琼脂、蔗糖浓度为25g/L，然后用1mol HCl和1mol NaOH把培养基的pH调至5.8～6.2，随后把培养基分装到150mL的广口瓶中，121℃灭菌25min。
接种后培养条件为温度（28±2）℃，光照时间超过10h/d，培养7d，每天观察记录不同消毒处理的外植体污染率的情况。
1.2.2 不同激素配比对外植体诱导培养的影响 把灭菌后无污染的茎尖、嫩芽转接种于表1中的诱导培养基中，每种处理接种10瓶，每瓶20株，每7d观察记录其诱导情况。
表1 诱导培养基（mg/L）
[处理＼&基础培养基＼&6-BA＼&NAA＼&A（ck）＼&MS＼&0＼&0＼&B＼&MS＼&0.5＼&0＼&C＼&MS＼&0.5＼&0.2＼&D＼&MS＼&1＼&0＼&E＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&F＼&1/2 MS＼&0.5＼&0.2＼&G＼&1/2 MS＼&1＼&0＼&] 1.2.3 不同激素配比对外植体生根培养的影响 把相同条件下得到的生长大小等较一致的增殖苗，于无菌环境中，用灭过菌的剪刀剪取0.5cm长度的茎尖，直立向上接种到表2中的生根培养基中，每种处理接种10瓶，每瓶20株，每7d观察记录其生长情况及统计生根率情况。
表2 生根培养基（mg/L）
[处理＼&基础培养基＼&NAA＼&6-BA＼&IAA＼&A（ck）＼&MS＼&0＼&0＼&0＼&B＼&MS＼&0.5＼&0＼&0＼&C＼&MS＼&0.5＼&0.2＼&0＼&D＼&MS＼&1＼&0.2＼&0＼&E＼&MS＼&0＼&0＼&0.5＼&F＼&MS＼&0.5＼&0＼&0.5＼&G＼&MS＼&0.5＼&0＼&1＼&H＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&0＼&I＼&1/2 MS＼&0.5＼&0.2＼&0＼&J＼&1/2 MS＼&1＼&0.2＼&0＼&K＼&1/2 MS＼&0＼&0＼&0.5＼&L＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&0.5＼&M＼&1/2 MS＼&0.5＼&0＼&1＼&]
1.2.4 培育条件 除了另外说明外，实验所用的MS、1/2MS培养基均按常规方法配制，在培养基中附加3.5g/L的琼脂、蔗糖浓度为25g/L，然后用1mol HCl和1mol NaOH把培养基的pH调至5.8～6.2，随后把培养基分装到150mL的广口瓶中，121℃灭菌25min。自然冷却后备用。接种后，培养温度为（28±2）℃，先黑暗培养7d，然后在光强度为2 000～2 500lx下每天光照12～14h，培养30d。
1.2.5 炼苗与移栽 将生根植株置于自然条件下炼苗7d，用清水洗干净根部的培养基，然后用1%高锰酸钾浸泡7～10min后，移植到基质为黄心土的塑料营养杯里，移植后立即浇水，然后遮荫。3d后用72%的农用链霉菌清液喷洒一次，待小苗长出新叶就开始施肥，30d记录生长情况。
2 结果与分析
2.1 不同激素配比对外植体诱导培养的影响 从表3中可以看出，不同的激素对巨尾桉DH3229外植体的诱导有不同的影响。当6-BA为0.5mg/L、NAA为0.2mg/L时（即处理C），巨尾桉DH3229外植体生长最快速，而且分枝多，植株最高，但是茎部较细小，与其他处理比较，仍适合用来做增殖培养（图1）。6-BA浓度过高，会让外植体生长过快，使得叶子出现黄色；在诱导培养基中缺少NAA则会使得外植体生长不稳定，表现出植株的高度不均一。在相同的激素条件下，巨尾桉DH3229的外植体在1/2 MS培养基上的生长情况没有在MS培养基上的好。
表3 不同激素配比对外植体诱导培养的影响
[处理＼&30d的生长情况＼&A（ck）＼&外植体生长缓慢，分枝较少，植株矮小，茎部较细小，叶子青色 ＼&B＼&外植体生长较快，分枝较多，植株高度不均一，茎部较粗，叶子青色 ＼&C＼&外植体生长最快速，分枝最多，植株最高，茎部却细小，叶子浅绿色＼&D＼&外植体生长快速，分枝较多，植株矮小，茎部粗，叶子出现黄色＼&E＼&外植体生长较为快速，分枝较多，植株较高，茎部粗，叶子浅绿色＼&F＼&外植体生长较快，分枝较少，茎部细小，叶子较大，呈青色＼&G＼&外植体生长快速，分枝较多，茎部较粗，叶子细小，出现白色的愈伤组织＼&]
图1 不同激素配比对外植体诱导培养的影响
2.2 不同激素配比对外植体生根培养的影响 从表4中可以看出处理D，即MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L对巨尾桉DH3229的生根最为有利。植株生长快速，茎部粗壮，主根粗大，其根须也较多（图2）。同时表4也说明，不同的激素对巨尾桉DH3229外植体生根有不同的影响。NAA与6-BA配比对巨尾桉DH3229生根的作用比较明显，而且主根比较粗壮，而NAA与IAA的配比对巨尾桉DH3229的生根影响则相对没那么显著。其根系总体比较细小。在相同激素配比下，MS培养基比1/2 MS培养基的生根作用更好。
表4 不同激素配比对外植体生根培养的影响
[处理＼&培养数量
（株）＼&生根数量
（株）＼&生根率
（%）＼&生根情况＼&A（ck）＼&200＼&87＼&43.5＼&植株生长缓慢，植株最矮小，茎部较细小，生根率低，根系不发达，长的根须纤细，1株只有1个主根＼&B＼&200＼&156＼&78.0＼&植株生长较快，植株较高，茎部较粗，生根率高，主根较大，平均有2条根须 ＼&C＼&200＼&165＼&82.5＼&植株生长较慢，植株矮小，茎部较粗，主根纤细，绝大部分植株有2条根须， 长3条根须的极少＼&D＼&200＼&188＼&94.0＼&植株生长最快速，茎部最粗，主根粗大，平均有3条根须＼&E＼&200＼&149＼&74.5＼&植株生长快速，茎部较粗，主根短而大，平均有2条根须＼&F＼&200＼&171＼&85.5＼&植株生长快速，茎部较粗，主根短小，平均有2条根须＼&G＼&200＼&120＼&60.0＼&植株生长缓慢，茎部较细，主根短而极小，只有1条根须＼&H＼&200＼&167＼&83.5＼&植株生长较快速，茎部细，主根长而粗小，长有3条根须＼&I＼&200＼&108＼&54.0＼&植株生长缓慢，植株中等，茎部细小，主根极短而粗，平均有2条根须＼&J＼&200＼&146＼&73.0＼&植株生长较快，茎部较粗，主根短而粗，平均有1条根须＼&K＼&200＼&170＼&85.0＼&植株生长较快，茎部细小，主根较小，平均有2条根须＼&L＼&200＼&136＼&68.0＼&植株生长缓慢，茎部细小，主根细小，平均有1条根须＼&M＼&200＼&164＼&82.0＼&植株生长缓慢，茎部细小，主根较小，平均有3条根须＼&]
图2 不同激素配比对外植体生根培养的影响
2.3 生根苗移植成活率及生长情况 待生根苗长到一定程度，先在自然条件下驯化7d，然后移植到营养杯中，其成活率及生长情况如表5所示。
表5 生根苗移植的生长情况
[处理＼&培育数量（株）＼&成活数量（株）＼&成活率（%）＼&A（ck）＼&85＼&12＼&14.12＼&B＼&156＼&59＼&37.82＼&C＼&165＼&152＼&93.00＼&D＼&187＼&139＼&74.33＼&E＼&148＼&108＼&72.97＼&F＼&169＼&135＼&79.88＼&G＼&120＼&58＼&48.33＼&H＼&165＼&61＼&36.97＼&I＼&104＼&89＼&85.58＼&J＼&140＼&96＼&68.57＼&K＼&170＼&92＼&54.12＼&L＼&131＼&102＼&77.86＼&M＼&163＼&78＼&47.85＼&]
从表4、5可以看出，移栽后的成活率与生根率没有明显的正比关系。处理D，即培养基为MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L时，其生根率最高，主根粗，茎部粗壮，但是移植后的成活率没有预期中高。处理C，即MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，其成活率达93%。
3 小结与讨论
（1）最适合诱导巨尾桉DH3229外植体的增殖培养基为MS+6-BA 0.5mg/L+NAA 0.2mg/L，其诱导出来的植株生长最快速，分枝最多，植株最高，茎部却较为细小。（2）最适合的生根培养基为MS+NAA 1mg/L+6-BA 0.2mg/L，生根率达94%，主根粗壮，其上平均长有3根根须。（3）移植到基质为黄土的培养杯中育苗时，成活率最高的培养基是MS+NAA 0.5mg/L+6-BA 0.2mg/L，成活率达93%。这可能与巨尾桉DH3229的根质量有关。有研究表明，桉树的木质化程度与根的质量呈正比关系[6]。因此，巨尾桉DH3229的木质化与移栽成活之间的关系还有待进一步的研究。
参考文献
[1]Eldridge K，Davidson J，Harwood C，et al.Eucalypt domestication and breeding[M].New York：Oxford University Press，1993.
[2]Williams J E，Brooker M I H.Eucalypts：an introduction[A]//Williams J E，Woinarski J C Z，Eucalypt E cology：Individuals to Ecosystemal[C].Cambridge：Cambridge University Press，1997：1-15.
[3]谢耀坚.中国桉树人工林可持续经营战略初探[J].世界林业研究，2003，16（5）：59-64.
[4]吴幼媚，王以红，蔡玲，等.巨尾桉优株芽器官的组培技术体系研究[J].西部林业科学，2009（3）：28-32.
[5]苏建华.巨尾桉组培苗嫩梢扦插育苗技术探讨[J].林业勘察设计，2011（1）：159-161.
[6]石大兴，王米力，石铁松，等.巨尾桉芽器官离体培养与快繁体系建立的研究[J].林业科学，2003，19（1）：69-75.
（责编：徐世红）