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目的前期研究已证实EFEMP1能促进宫颈癌微血管增生,本研究旨在进一步探讨EFEMP1促进宫颈癌微血管生成的分子机制。方法利用Pierce CO-IP试剂盒检测宫颈癌细胞中EFEMP1蛋白和表皮生长因子受体(epidermal growth factor receptor,EGFR)的相互作用,蛋白质印迹法检测蛋白表达。利用MTT实验检测内皮细胞增殖活力,Transwell小室法检测内皮细胞迁移能力,Matrigel胶管腔形成能力实验检测内皮管腔形成能力。构建慢病毒干扰颗粒干扰宫颈癌细胞Jagged1表达。利用免疫组化MaxVisonTM法检测组织蛋白表达,内皮CD34组化标记结合Weinner计数法检测组织中微血管密度(microvsacular density,MVD)。皮下接种Hela-EFEMP1+细胞构建高表达EFEMP1的裸鼠荷瘤模型。结果 p-EGFR和p-MAPK在EFEMP1处理组Hela细胞的表达水平(2.35±0.41和2.56±0.44)分别高于对照组(0.20±0.001,P=0.001;0.64±0.020,P=0.001)和PD153035与EFEMP1联合处理组(1.25±0.33,P=0.004;1.46±0.24,P=0.001)。CO-IP结果显示,Hela细胞中EFEMP1与EGFR相互作用。处理组内皮细胞24h活力(1.78±0.048)、迁移能力(71.7±4.91)和管腔形成能力(19.7±1.75)分别高于对照组(1.38±0.046,P=0.001;30±3.46,P=0.002 3;8.7±1.84,P=0.001 8)和联合处理组(1.51±0.072,P=0.004;37.6±4.98,P=0.008 3;12.6±1.48,P=0.009 3)。处理组癌细胞中p-MAPK、血管内皮生长因子(vascular endothelia growth factor,VEGF)和Jagged1的表达水平(0.96±0.05,1.25±0.031,0.82±0.036)分别高于对照组(0.16±0.006,P=0.028;0.54±0.047,P=0.013;0.42±0.017,P=0.026)和U0126与EFEMP1联合处理组(0.56±0.022,P=0.042;0.29±0.016,P=0.008;0.38±0.037,P=0.024)。EFEMP1处理Hela-Jagged1siRNA细胞后上清液作用下的内皮管腔形成能力(14±1.58,P=0.006)和γ-SI与处理组正常癌细胞上清液联合作用的内皮细胞管腔形成能力(12.6±1.33,P=0.008),分别低于处理组癌细胞上清液作用下的内皮细胞(19.7±0.89)。宫颈癌组织中,EFEMP1表达分别与p-MAPK和Jagged1表达正相关,p-MAPK表达与Jagged1表达正相关,且p-MAPK和Jagged1的表达分别与宫颈癌MVD呈正相关。动物实验结果显示,LV-JAG1-RNAi慢病毒处理组肿瘤平均体积和质量〔(0.160±0.007)cm3;(0.43±0.043)g〕分别明显小于对照组〔(0.25±0.015)cm3,P=0.001;(0.65±0.027)g,P=0.002〕。此外,处理组平均MVD(5.0±1.23)也低于对照组(8.7±1.15,P=0.014)。结论 EFEMP1促进宫颈癌微血管生成的分子机制是通过与EGFR相互作用,激活MAPK-VEGF/Jagged1信号通路,上调宫颈癌VEGF和Jagged1的表达而旁分泌促进内皮血管生成。