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目的:克隆小鼠Nanog基因并构建带绿色荧光蛋白的真核表达载体p G-Nanog,观察其对人宫颈癌上皮细胞(Hela 细胞)中的表达,旨在为进一步观察其对成体细胞的表型变化及细胞增殖奠定前期实验学基础.方法:实验于2006-03/09在西北农林科技大学陕西省干细胞研究中心完成.Nanog基因的克隆参照庄淑珍的方法.Nanog基因真核表达载体的构建参照GeneBank中的小鼠Nanog基因序列,以pNA992为模板扩增Nanog基因,PCR产物以BglⅡ和SacⅡ双酶切,同时将pEGFP-C1用BglⅡ和SacⅡ鉴定,将该质粒命名为pG-Nanog.Hela细胞用含10%新生牛血清的Dulbecco's改良培养基(Dulbecco's Modified Eagle Medium,DMEM)培养,转染Hela细胞.转染前1 d,在6孔板的每个孔中接种1.2×105个细胞,待细胞生长至60%～70%汇合时,取pG-Nanog与空载体各4 μg分别加入500 μL无血清无抗生素的DMEM培养液中,同时将6 μL稀释于500 μL无血清无抗生素的DMEM(干粉)培养液中,将两者混合,室温静置20 min,将复合物加入到细胞中,置37 ℃,体积分数0.05的CO2培养箱中转染24 h后吸出复合物加入完全培养基,48 h后观察荧光.合成内源对照β-actin,收集转染4 d后的细胞提取RNA,反转录为cDNA,然后分别扩增Nanog基因和β-actin基因.采用RT-PCR的方法检测Hela细胞中Nanog基因的表达.结果:①pEGFP-C1载体经双酶切后获得约1 kbp的Nanog基因真核表达载体片段,同预期结果相一致,测序结果同GeneBank中的序列同源性达到99.7%.②将转染48 h后的Hela细胞置于荧光显微镜下观察,可见明显的荧光,转染pG-Nanog的细胞绿色荧光蛋白集中于细胞核,将转染4 d后Hela细胞的总RNA进行RT-PCR检测,产物经琼脂糖电泳分析,只有转染pG-Nanog的细胞中才能够检测到Nanog基因的相应条带.③转染48 h后,对细胞进行抗增殖细胞核抗原免疫组化染色,未转染细胞和转染空质粒细胞及转染pG-Nanog细胞染色结果均呈阳性,转染了pG-Nanog的Hela细胞与正常细胞和转染空载体的细胞相比细胞形态发生了一定的改变,细胞表面形成了许多突起.结论:小鼠Nanog基因的克隆、真核表达载体的构建及在Hela细胞中的表达均获得成功,并观察到Hela细胞发生了形态的改变.