目的 探讨外源性一氧化碳释放分子2（CORM-2）对大肠杆菌ATCC 25922菌株活力及毒力的作用及可能机制。方法 （1）体外实验1。将菌株按照随机数字表法分为细菌组、细菌＋1.2 mmol/L CORM-2组、细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组、细菌＋1.2 mmol/L无活性CORM-2（iCORM-2）组、细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组,每组样本数为6。细菌组不添加任何物质，其余4组添加相应浓度的CORM-2或iCORM-2。于培养0、3、5、8、10、12、16、20、24、27、30、48 h，测定各组菌液的增殖活性，结果以吸光度值（波长为600 nm）表示；同时进行菌落计数。（2）体外实验2。另取菌株，将其分为细菌组和细菌＋0.8 mmol/L CORM-2组，采用基因芯片筛查出大肠杆菌的4个相关基因fliA、dnaK、marA和waaQ进行实时定量PCR（qRT-PCR），检测各基因表达量。（3）在体研究。另取菌株同体外实验1分组及处理，培养至细菌组菌液的吸光度值（波长600 nm）为0.4时，各组收集0.5 mL菌液。将72只C57BL/6小鼠按照随机数字表法分为空白对照组、细菌组、细菌＋1.2 mmol/L CORM-2组、细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组、细菌＋1.2 mmol/L iCORM-2组、细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组，每组12只。空白对照组小鼠不行任何处理，其余5组小鼠取对应有或无添加物的0.5 mL菌液进行腹腔注射。注射后对后5组小鼠进行大体观察。注射后6、12 h检测后5组小鼠血清中TNF-α、IL-6水平，注射后12 h收集小鼠肝、肺组织标本检测髓过氧化物酶（MPO）活性。空白对照组小鼠行相同检测。对数据进行重复测量设计方差分析、析因设计方差分析、单因素方差分析和t检验。结果 （1）体外实验1。与细菌组和细菌＋1.2 mmol/L iCORM-2组比较，细菌＋1.2 mmol/L CORM-2组多数时相点细菌增殖活性明显受抑，菌落明显数量减少（F值分别为1170.80、217.52，P值均小于0.01）；与细菌组和细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组比较，细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组多数时相点细菌增殖活性亦明显受抑，菌落数量亦明显减少（F值分别为7948.34、14 432.85，P值均小于0.01）。（2）体外实验2。qRT-PCR检测结果显示：与细菌组比较，细菌＋0.8 mmol/L CORM-2组fliA基因表达下调，dnaK、marA和waaQ基因表达上调（t值分别为30.28、-165.54、-168.88、-187.28，P值均小于0.01）。（3）在体研究。细菌组和细菌＋1.2 mmol/L iCORM-2组、细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组小鼠出现诸如精神萎靡、呼吸急促等症状，细菌＋1.2 mmol/L CORM-2组、细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组小鼠上述症状轻微或不明显。注射后6 h，细菌组、细菌＋1.2 mmol/L iCORM-2组小鼠血清TNF-α、IL-6水平分别为（647.3±3.8）pg/mL、（3.44±0.22）ng/mL以及（639.3±0.8）pg/mL、（2.47±0.32）ng/mL，明显高于细菌＋1.2 mmol/L CORM-2组［（124.6±10.7）pg/mL、（1.03±0.16）ng/mL，t值为15.22~84.03，P值均小于0.01］。与细菌组和细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组比较，注射后6、12 h细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组小鼠血清TNF-α、IL-6水平亦均明显降低（t值为19.27~245.34，P值均小于0.01）。注射后12 h，细菌＋1-2 mmol/L CORM-2组小鼠肝、肺组织中MPO活性明显低于细菌组、细菌＋1.2 mmol/L iCORM-2组，细菌＋1.6 mmol/L CORM-2组小鼠肝、肺组织中MPO活性亦明显低于细菌组、细菌＋1.6 mmol/L iCORM-2组（t值分别为17.36~18.92、2.35~3.61，P值均小于0.01）。结论 CORM-2能够明显抑制大肠杆菌的活力和毒力，其抑制作用可能与其调节大肠杆菌部分重要的靶基因（fliA、dnaK、marA和waaQ）有关。