蜡样芽孢杆菌启动子片段克隆及转录活性分析

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  摘要:为研究蜡样芽孢杆菌基因的转录调控特征,通过鸟枪法和蓝白斑筛选,获得57个蜡样芽孢杆菌启动子片段,并以β-半乳糖苷酶为报告基因,比较了这些启动子片段在大肠埃希菌中的转录活性。对转录活性较高的4个启动子克隆片断进行测序、序列比对、特征分析,发现这4个克隆序列具有启动子元件、核糖体结合序列特征,其中2个克隆序列在枯草芽孢杆菌也表现出活性,表明兼有蜡样芽孢杆菌、大肠埃希菌、枯草芽孢杆菌RNA聚合酶σ因子序列识别特征。
  关键词:启动子;随机克隆;蜡样芽孢杆菌;枯草芽孢杆菌
  中图分类号: Q933 文献标志码: A 文章编号:1002-1302(2014)04-0025-03
  收稿日期:2013-11-01
  基金项目:国家自然科学基金(编号:31272416);石河子大学高层次人才科研启动专项(编号:RCZX201137);石河子大学优秀青年项目(编号:2012ZRKXYQ13)。
  作者简介:张婷婷(1984—),女,新疆石河子人,硕士,讲师,主要从事微生物生态研究。E-mail:120978935@qq.com。
  通信作者:马磊,博士,副教授,主要从事生物信息学与分子遗传研究。E-mail:mlei@shzu.edu.cn。蜡样芽孢杆菌属兼性厌氧微生物,可产生毒素引发呕吐、腹泻等肠胃疾病,严重威胁食品业[1]和饲养业。然而,蜡样芽孢杆菌也可分泌抗菌物质,抑制有害微生物生长,降解土壤中的营养成分,改良生态环境,其产生的细菌蛋白酶也可被用于麻脱胶、明胶液化、牛奶胨化、还原硝酸盐、水解淀粉等用途。虽然蜡样芽孢杆菌典型菌株(ATCC14579)基因组已完成测序[2],但目前对蜡样芽孢杆菌基因表达调控系统的研究较少,其内在丰富的遗传资源有待开发。本研究利用蜡样芽孢杆菌(ATCC14579)基因组文库资源分离、筛选了多个蜡样芽孢杆菌启动子序列,分析了其在大肠埃希菌和枯草芽孢杆菌中的转录活性及序列特征,旨在为构建高效表达系统奠定基础,也为多宿主比较研究提供途径。
  1材料与方法
  1.1材料
  菌株Bacillus cereus ATCC14579、B.subtilis DB104、Escherichia coli DH5α购自中国典型培养物保藏中心 (CCTCC);质粒pE(来自pUC18,携带E.coli 质粒复制区起始,E.coli rep)、pGDV1(携带B.subtilis 质粒复制区起始,B.subtilis rep)、pDL(携带β-半乳糖苷酶基因,bgaB)为石河子大学生命科学学院实验室保存;质粒pEB(E.coli-B.subtilis穿梭载体)、pEB-bgaB 为本研究构建。限制性核酸内切酶、碱性磷酸酶、T4 DNA连接酶购自Promage公司,Taq DNA聚合酶、LA Taq DNA聚合酶购自宝生物工程(大连)有限公司,质粒提取、DNA回收试剂盒购自杭州维特洁生化技术有限公司。引物见表1。
  1.2方法
  1.2.1启动子探测载体的构建质粒pGDV1携带1段枯草杆菌质粒复制起始区(B.subtilis rep),通过PCR技术得到该序列(5′端设置BglⅡ位点,3′端设置SacⅠ位点)。在质粒pE基础上,在BglⅡ、SacⅠ之间插入枯草杆菌质粒复制起始区(B.subtilis rep),构建大肠埃希菌-枯草杆菌穿梭载体pEB,酶切鉴定。
  5),与枯草杆菌σA(σ43)识别序列-35区、-10区有较高同源性,因此其在枯草杆菌中可能由σA起始转录。虽然C1、C2、C5可能具有同源性较高的-10区,但-35区不太典型。
  3结论与讨论
  本研究构建了以β-半乳糖苷酶(bgaB)[5]为报告基因,在大肠埃希菌、枯草杆菌中均能稳定复制的启动子探测载体(图1)。该载体所携带的bgaB基因不含启动子和核糖体结合序列,且在其起始密码子(ATG)上游具有多个酶切位点(NotⅠ、BamHⅠ、PstⅠ),有利于启动子序列的克隆操作。以往研究中启动子克隆载体多以抗生素和绿色荧光蛋白(GFP)为报告基因,但是利用抗生素作为启动子筛选和检测指标,会因宿主菌产生的耐药性引起假阳性,检测数据高于真实值;利用绿色荧光蛋白对设备的要求比较高。bgaB对宿主细胞生长影响较小,可特异性分解X-gal生成蓝色菌落,便于筛选。
  本研究应用启动子随机克隆、蓝白斑筛选、β-半乳糖苷酶酶活检测,成功获得了4个在E.coli中具有较高转录、表达活性的蜡样芽孢杆菌启动子序列,而且其中2个还能在枯草杆菌中转录和表达,因此它们具有多宿主RNA聚合酶σ因子序列识别特征。
  参考文献:
  [1]Monika E S,Martina F,Siegfried S,et al. Bacilus cereus,the causative agent of an emetic type of food-borne illness[J]. Molecular Nutrition & Food Research,2004,48(7):479-487.
  [2]Ivanova N,Sorokin A,Anderson I,et al. Genome sequence of Bacillus cereus and comparative analysis with Bacillus anthracis[J]. Nature,2003,423(6935):87-91.
  [3]Yuan G,Wong S L. Regulation of groE expression in Bacillus subtilis:the involvement of the sigma A-like promoter and the roles of the inverted repeat sequence (CIRCE)[J]. Journal of Bacteriology,1995,177(19):5427-5433.
  [4]Cutting S,Vander H. Genetic analysis,in C. R. harwood and S. M. cutting (ed.),molecular biological methods for Bacillus[M]. Chichester:John Wiley,1990:24-27.
  [5]Hirata H,Fukazawa T,Negoro S,et al. Structure of a beta-galactosidase gene of Bacillus stearothermophilus[J]. Journal of Bacteriology,1986,166(3):722-727.
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