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摘要 [目的] 了解羊寄生虫的感染情况，并为羊场寄生虫病的防控提供科学依据。[方法]在A、B山羊场采集新鲜粪便，采用饱和食盐水漂浮法、水洗沉淀法、卢戈氏碘液染色—镜检法进行山羊粪便寄生虫虫卵的检查和鉴定，并通过虫卵计数测定感染强度。[结果] A羊场检测到球虫、线虫、绦虫，B场检测到球虫、线虫、绦虫和吸虫，其中B羊场的感染强度要大于A羊场。[结论]2个羊场都感染了寄生虫，其中B场需要进行全群投药。
关键词 山羊；寄生虫卵；检测；感染强度
中图分类号 S826 文献标识码 A 文章编号 0517-6611（2014）27-09368-02
Detection of Parasite Eggs in the Dung of Goats
HOU Hongyan1， HUI Weiqiao1， ZHAO Ruihong1， ZHANG Danjun* et al
（Institute of Animal Husbandry and Veterinary Science， Anhui Academy of Agricultural Science， Hefei， Anhui 230031）
Abstract [Objective] The research aimed to study the infection situations of parasite in goats and provide scientific basis for the prevention and control of verminosis in goat farm. [Method] Fresh dung was collected from A and B goat farms. The parasite eggs in the dung of goats were examined and identified by using saturated brine floating method， washing sediment method and Lugol’s iodine stainingmicroscopic method. And the infection intensity was determined by egg counting method. [Result] Coccidia， nematodes and tapeworms were detected in A farm， and coccidia， nematodes， tapeworms and trematodes were detected in B farm. The infection intensity of parasite in B farm was greater than that in A farm. [Conclusion] The infection of parasite was found in two goat farms. All the goats in B farm should be administrated with drugs.
Key words Goat； Parasite eggs； Detection；Infection intensity
羊寄生虫病在羊场内广泛存在，且种类很多，综合国内文献可知，山羊感染的肠道寄生虫主要有胃肠道线虫、球虫、莫尼茨绦虫、肝片吸虫、前后盘吸虫、矛形双腔吸虫、隐孢子虫、贾第虫、阿米巴原虫等[1-3]。
由于寄生虫长期消耗羊的营养、对羊造成损伤从而降低饲料报酬，影响羊的增重速度，还会造成羊免疫力下降，容易继发感染其他疾病，甚至造成死亡[4]。由于国内不同地区气候、植被、地形、饲养方式和药物使用等不同，感染山羊的消化道虫种有一定差异，在某一地区温度和湿度均较适宜的夏秋季节感染性幼虫数量最多，此时为羊胃肠道寄生虫的主要感染阶段[5]。基于此，2014年4月，笔者选取安徽省某地区存栏在500头左右的山羊场2个，进行粪便寄生虫虫卵的检查和鉴定，了解羊寄生虫感染的情况，并为羊场寄生虫病防控提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 羊场概况
安徽某地A、B 2个波杂山羊场各存栏有500头左右，饲养方式为以放牧为主，舍饲与放牧结合，A场、B场每季度使用1次阿苯达唑+伊维菌素，2个羊场羊群状况良好，粪便正常。
1.2 样品采集
对A、B羊场分别采集新鲜粪便20份，每份15 g，装入干净的一次性手套内分别标记清楚，置于4 ℃冰盒内保存，带回实验室待检。
1.3 试剂配制
①饱和食盐水：称取400 g食盐，加入1 000 ml沸水，搅拌充分溶解后，静置冷却，有少量盐析出，即为饱和盐水，取上清液备用。
②卢戈氏碘液：先在容量瓶中加入少量蒸馏水，加入10 g碘化钾并用搅拌棒使之溶解，再加入5g碘搅拌并使之完全溶解，最后加入蒸馏水至100 ml搅拌混匀。
1.4 检查方法
1.4.1 直接涂片法。
在洁净无油污的载玻片上滴加1～2滴清水，用火柴棒醮取少量粪便放入其中，涂匀，剔去粗渣，盖上盖玻片，置于显微镜下检查。
1.4.2 饱和食盐水漂浮法。
取10 g粪便置于干净的100 ml烧杯内，先加入8 ml饱和食盐溶液，用玻棒捣碎混匀，再加入50 ml饱和食盐溶液，以60目铜筛进行过滤，静置30 min后，用直径5～10 mm的铁丝圈，与液面平行接触醮取表面液膜，抖落于载玻片上并覆盖盖玻片，在低倍显微镜下检查，同时用麦克马斯特虫卵计数器测定EPG1值。 1.4.3 水洗沉淀法。
取5 g粪便，放在200 ml容量的烧杯内，加入少量清水，用小棒将粪球捣碎，再加5倍量的清水调制成糊状，用60目铜筛过滤，静置15 min，弃去上清液，保留沉渣。再加满清水，静置15 min，弃去上清液，保留沉渣。如此反复3～4次，最后将沉渣涂于载玻片上，在低倍显微镜下检查，同时用麦克马斯特虫卵计数器测定EPG2值。
1.4.4 卢戈氏碘液染色—镜检法。
在洁净无油污的载玻片上滴加1～2滴卢戈氏碘液，用火柴棒醮取少量“1.4.2”中的粪便液膜或“1.4.3”中的沉渣放入其中，在载玻片上涂匀，盖上盖玻片，在低倍显微镜下检查。
1.4.5 虫卵鉴定。
对虫卵的鉴定主要是依据试验过程中拍摄的虫卵的大小、形状、颜色、卵壳和内容物的典型特征，参照寄生虫学图谱和相关的文献资料对虫卵进行鉴定。
2 结果与分析
2.1 A、B羊场粪便虫卵的检测情况
A羊场的20份粪便样品中，20份检测到寄生虫感染，感染率为100%；B羊场的20份粪便样品中，同样20份发现寄生虫感染，感染率也为100%；EPG1和EPG2相加为每只羊感染的EPG，A羊场的EPG的平均值为2 400，B羊场的EPG的平均值为5 400。这说明A羊场和B羊场都感染了寄生虫病，且B羊场相对A羊场感染严重，需要进行全群投药。
2.2 A、B羊场粪便虫卵的种类
从图1～2可以看出，A羊场粪便中检测到球虫、线虫和绦虫，B羊场检测到球虫、线虫、绦虫和吸虫，说明A羊场在防寄生虫病时要用驱球虫、线虫、绦虫的药物，B羊场要用驱球虫、线虫、绦虫和吸虫的药物。部分虫卵的图片见图3～6。
3 讨论
寄生虫病在放牧羊中为多发病，病原种类多，体内线虫、绦虫、吸虫、球虫和体外虱、蜱螨的混合感染比较普遍，直接影响了羊增重、产肉、产毛等生产性能和幼年羊的成活率。目前，应用药物定期驱虫仍是防控羊寄生虫病最为有效的手段，如何根据羊场寄生虫感染情况选用高效、光谱、低毒的抗寄生虫药物是关键。该试验中A、B 2个羊场都感染有线虫、球虫和绦虫，B羊场还检测到吸虫，药物选择就要2～3种或3～4种同时使用，并且要注意药物的更换使用，以避免虫体产生抗药性。
笔者检测发现粪便中线虫和球虫EPG较大，这可导致2个羊场感染线虫和球虫的机会增多。临床试验发现，在羊体质好、免疫力正常的情况下，可以抵抗寄生虫的感染，而免疫力下降时则抵抗力也下降，对断奶前后的羊要尤为注意，当小羊腿发软、消瘦时可能已感染寄生虫病。在对羊驱虫的同时，同时应做到饲料营养全面，粪便及时清理，定期消毒，疫苗及时接种等，才能避免形成驱虫—感染—再驱虫—再感染
的恶性循环，才能将由寄生虫病带来的损失降到最低。今后，还需要从遗传和分子机制上开展研究工作，深入研究宿
主—寄生虫相互作用，控制和减少感染寄生虫的数量。杨晓野等[6-7]运用生物学防治方法进行捕食线虫性真菌的分离鉴定和捕食特性的研究，尝试运用生物学的方法将寄生虫种群密度降低到不发病程度或在经济阈值以下，从而减少化学药物的使用，减少羊感染寄生虫病的发生率，将更有现实意义。
参考文献
[1] 孔繁瑶.家畜寄生虫学（修订版）[M].2版.北京：中国农业大学出版社，2010.
[2] 王春仁，马桂芬，赵金萍，等.黑龙江西部羊寄生虫的调查及控制技术的建立[J].黑龙江八一农垦大学学报，2005，17（4）：53-57.
[3] 许开云，王权，王文元，等.甘肃省武威市古浪县羊寄生虫感染情况调查[J].畜牧与兽医，2010，42（11）：77-79.
[4] 岳城.由英国家畜驱虫药抗药性的研究现状看在我国开展此项工作的重要性[J].中国兽医寄生虫病，2004，12（4）：59-60.
[5] 赵成全，李英，康明.青海共和县放牧操场牛羊寄生虫感染来源的动态观察[J].中国兽医杂志，2013（7）：35-37.
[6] 杨晓野，汪明，杨莲茹.捕食线虫性真菌对寄生虫性线虫的生物控制[J].中国兽医杂志，2004，40（5）：40-41.
[7] 杨晓野.捕食线虫性真菌少孢节从孢菌CMH1珠捕食特性研究[J].中国兽医寄生虫病，1999，7（2）：14-17.
关键词 山羊；寄生虫卵；检测；感染强度
中图分类号 S826 文献标识码 A 文章编号 0517-6611（2014）27-09368-02
Detection of Parasite Eggs in the Dung of Goats
HOU Hongyan1， HUI Weiqiao1， ZHAO Ruihong1， ZHANG Danjun* et al
（Institute of Animal Husbandry and Veterinary Science， Anhui Academy of Agricultural Science， Hefei， Anhui 230031）
Abstract [Objective] The research aimed to study the infection situations of parasite in goats and provide scientific basis for the prevention and control of verminosis in goat farm. [Method] Fresh dung was collected from A and B goat farms. The parasite eggs in the dung of goats were examined and identified by using saturated brine floating method， washing sediment method and Lugol’s iodine stainingmicroscopic method. And the infection intensity was determined by egg counting method. [Result] Coccidia， nematodes and tapeworms were detected in A farm， and coccidia， nematodes， tapeworms and trematodes were detected in B farm. The infection intensity of parasite in B farm was greater than that in A farm. [Conclusion] The infection of parasite was found in two goat farms. All the goats in B farm should be administrated with drugs.
Key words Goat； Parasite eggs； Detection；Infection intensity
羊寄生虫病在羊场内广泛存在，且种类很多，综合国内文献可知，山羊感染的肠道寄生虫主要有胃肠道线虫、球虫、莫尼茨绦虫、肝片吸虫、前后盘吸虫、矛形双腔吸虫、隐孢子虫、贾第虫、阿米巴原虫等[1-3]。
由于寄生虫长期消耗羊的营养、对羊造成损伤从而降低饲料报酬，影响羊的增重速度，还会造成羊免疫力下降，容易继发感染其他疾病，甚至造成死亡[4]。由于国内不同地区气候、植被、地形、饲养方式和药物使用等不同，感染山羊的消化道虫种有一定差异，在某一地区温度和湿度均较适宜的夏秋季节感染性幼虫数量最多，此时为羊胃肠道寄生虫的主要感染阶段[5]。基于此，2014年4月，笔者选取安徽省某地区存栏在500头左右的山羊场2个，进行粪便寄生虫虫卵的检查和鉴定，了解羊寄生虫感染的情况，并为羊场寄生虫病防控提供科学依据。
1 材料与方法
1.1 羊场概况
安徽某地A、B 2个波杂山羊场各存栏有500头左右，饲养方式为以放牧为主，舍饲与放牧结合，A场、B场每季度使用1次阿苯达唑+伊维菌素，2个羊场羊群状况良好，粪便正常。
1.2 样品采集
对A、B羊场分别采集新鲜粪便20份，每份15 g，装入干净的一次性手套内分别标记清楚，置于4 ℃冰盒内保存，带回实验室待检。
1.3 试剂配制
①饱和食盐水：称取400 g食盐，加入1 000 ml沸水，搅拌充分溶解后，静置冷却，有少量盐析出，即为饱和盐水，取上清液备用。
②卢戈氏碘液：先在容量瓶中加入少量蒸馏水，加入10 g碘化钾并用搅拌棒使之溶解，再加入5g碘搅拌并使之完全溶解，最后加入蒸馏水至100 ml搅拌混匀。
1.4 检查方法
1.4.1 直接涂片法。
在洁净无油污的载玻片上滴加1～2滴清水，用火柴棒醮取少量粪便放入其中，涂匀，剔去粗渣，盖上盖玻片，置于显微镜下检查。
1.4.2 饱和食盐水漂浮法。
取10 g粪便置于干净的100 ml烧杯内，先加入8 ml饱和食盐溶液，用玻棒捣碎混匀，再加入50 ml饱和食盐溶液，以60目铜筛进行过滤，静置30 min后，用直径5～10 mm的铁丝圈，与液面平行接触醮取表面液膜，抖落于载玻片上并覆盖盖玻片，在低倍显微镜下检查，同时用麦克马斯特虫卵计数器测定EPG1值。 1.4.3 水洗沉淀法。
取5 g粪便，放在200 ml容量的烧杯内，加入少量清水，用小棒将粪球捣碎，再加5倍量的清水调制成糊状，用60目铜筛过滤，静置15 min，弃去上清液，保留沉渣。再加满清水，静置15 min，弃去上清液，保留沉渣。如此反复3～4次，最后将沉渣涂于载玻片上，在低倍显微镜下检查，同时用麦克马斯特虫卵计数器测定EPG2值。
1.4.4 卢戈氏碘液染色—镜检法。
在洁净无油污的载玻片上滴加1～2滴卢戈氏碘液，用火柴棒醮取少量“1.4.2”中的粪便液膜或“1.4.3”中的沉渣放入其中，在载玻片上涂匀，盖上盖玻片，在低倍显微镜下检查。
1.4.5 虫卵鉴定。
对虫卵的鉴定主要是依据试验过程中拍摄的虫卵的大小、形状、颜色、卵壳和内容物的典型特征，参照寄生虫学图谱和相关的文献资料对虫卵进行鉴定。
2 结果与分析
2.1 A、B羊场粪便虫卵的检测情况
A羊场的20份粪便样品中，20份检测到寄生虫感染，感染率为100%；B羊场的20份粪便样品中，同样20份发现寄生虫感染，感染率也为100%；EPG1和EPG2相加为每只羊感染的EPG，A羊场的EPG的平均值为2 400，B羊场的EPG的平均值为5 400。这说明A羊场和B羊场都感染了寄生虫病，且B羊场相对A羊场感染严重，需要进行全群投药。
2.2 A、B羊场粪便虫卵的种类
从图1～2可以看出，A羊场粪便中检测到球虫、线虫和绦虫，B羊场检测到球虫、线虫、绦虫和吸虫，说明A羊场在防寄生虫病时要用驱球虫、线虫、绦虫的药物，B羊场要用驱球虫、线虫、绦虫和吸虫的药物。部分虫卵的图片见图3～6。
3 讨论
寄生虫病在放牧羊中为多发病，病原种类多，体内线虫、绦虫、吸虫、球虫和体外虱、蜱螨的混合感染比较普遍，直接影响了羊增重、产肉、产毛等生产性能和幼年羊的成活率。目前，应用药物定期驱虫仍是防控羊寄生虫病最为有效的手段，如何根据羊场寄生虫感染情况选用高效、光谱、低毒的抗寄生虫药物是关键。该试验中A、B 2个羊场都感染有线虫、球虫和绦虫，B羊场还检测到吸虫，药物选择就要2～3种或3～4种同时使用，并且要注意药物的更换使用，以避免虫体产生抗药性。
笔者检测发现粪便中线虫和球虫EPG较大，这可导致2个羊场感染线虫和球虫的机会增多。临床试验发现，在羊体质好、免疫力正常的情况下，可以抵抗寄生虫的感染，而免疫力下降时则抵抗力也下降，对断奶前后的羊要尤为注意，当小羊腿发软、消瘦时可能已感染寄生虫病。在对羊驱虫的同时，同时应做到饲料营养全面，粪便及时清理，定期消毒，疫苗及时接种等，才能避免形成驱虫—感染—再驱虫—再感染
的恶性循环，才能将由寄生虫病带来的损失降到最低。今后，还需要从遗传和分子机制上开展研究工作，深入研究宿
主—寄生虫相互作用，控制和减少感染寄生虫的数量。杨晓野等[6-7]运用生物学防治方法进行捕食线虫性真菌的分离鉴定和捕食特性的研究，尝试运用生物学的方法将寄生虫种群密度降低到不发病程度或在经济阈值以下，从而减少化学药物的使用，减少羊感染寄生虫病的发生率，将更有现实意义。
参考文献
[1] 孔繁瑶.家畜寄生虫学（修订版）[M].2版.北京：中国农业大学出版社，2010.
[2] 王春仁，马桂芬，赵金萍，等.黑龙江西部羊寄生虫的调查及控制技术的建立[J].黑龙江八一农垦大学学报，2005，17（4）：53-57.
[3] 许开云，王权，王文元，等.甘肃省武威市古浪县羊寄生虫感染情况调查[J].畜牧与兽医，2010，42（11）：77-79.
[4] 岳城.由英国家畜驱虫药抗药性的研究现状看在我国开展此项工作的重要性[J].中国兽医寄生虫病，2004，12（4）：59-60.
[5] 赵成全，李英，康明.青海共和县放牧操场牛羊寄生虫感染来源的动态观察[J].中国兽医杂志，2013（7）：35-37.
[6] 杨晓野，汪明，杨莲茹.捕食线虫性真菌对寄生虫性线虫的生物控制[J].中国兽医杂志，2004，40（5）：40-41.
[7] 杨晓野.捕食线虫性真菌少孢节从孢菌CMH1珠捕食特性研究[J].中国兽医寄生虫病，1999，7（2）：14-17.