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摘要[目的] 为了解IBA对其他内源激素的影响及其关系。[方法] 外加不同浓度的IBA溶液对百合切花进行瓶插处理，采用ELISA方法测定不同时间内源激素的含量。[结果] 处理组在第8 天明显提高IAA的含量，处理组（40 mg/L）与ABA在4～10 d表现出协同作用，处理组（60 mg/L）提前GA3峰值出现的时间，处理组（20、40、80 mg/L）在4～10 d抑制JA的生成。[结论]高浓度IBA对IAA、ABA的影响较大，对GA3、JA的影响较小。
关键词IBA；百合；内源激素；ELISA
中图分类号S682.2+9文献标识码A文章编号0517-6611（2014）04-00974-02
基金项目重庆市科技攻关项目（CSTC2012ggA8002）。
作者简介王露（1989-），女，重庆人，硕士研究生，研究方向：园林植物培育与遗传育种。*通讯作者，教授，硕士生导师，从事果树园艺和观赏园林的栽培生理方面的研究。
丁酸（indole3butanoic acid，IBA）是人工合成生长素的主要类型，也是植物体内天然存在的一种生长素。Blommajert最早发现IBA存在于马铃薯的皮中[1]。其后，在烟草、菜豆、豌豆、柏树和玉米等植物中都相繼发现天然IBA的存在[2]。
IBA作为市售生根剂的主要成分，常用于植物扦插、生根试验。叶向斌等[3]通过喷施叶面方式对植物进行处理，而采用瓶插方式处理植物的研究鲜见。笔者通过外加不同浓度的IBA溶液对百合切花进行瓶插处理，测定不同时间内源激素的变化，旨在了解IBA对其他内源激素的影响及其关系，探讨IBA对百合切花发育与衰老过程的生理机制，为IBA在切花上的运用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料试验材料为东方系百合品种‘西伯利亚’（Lilium hybrida Oriental.cv. Siberia）。种球购于云南玉溪明珠花卉有限责任公司。3月5日种植于重庆文理学院生物园。7月剪切大小一致、含有3个花蕾且第一花蕾为绿蕾（即将着色）的花枝，直接浸入去离子水中，及时运回实验室处理。
1.2方法在去离子水中，将花枝基部用枝剪刀斜切45°，花枝长度保留35 cm，叶保留顶部6片。每个处理3次重复，每个重复3枝花，插于含 500 ml处理液、容量为 500 ml的广口瓶中。用保鲜膜封住瓶口，以防水分蒸发。每2 d换1次处理液。在处理期间，实验室内温度为（28±2） ℃，相对湿度为75%。处理液中IBA质量浓度为20、40、60、80 mg/L，对照（CK）为去离子水。
每2 d在固定时间内取样。取样部位为百合第一花蕾的内外花被。每个处理3次重复取样。提取和测定采用酶联免疫吸附剂测定（ELISA）方法[4]。试剂盒由中国农业大学王保民博士提供，按照 ELISA 说明用酶联免疫检测仪进行测定。数据处理采用EXCEL和SPSS软件。
2结果与分析
2.1不同处理液对百合切花内源吲哚3乙酸（IAA）的影响由图1可知，在瓶插期间，不同浓度处理对花瓣中IAA均有影响，其中处理组（20、40、60 mg/L）在第8天表现与CK不一致，处理组（80 mg/L）则变化较大。CK和处理组中内源IAA含量在第6天差异不显著（P>0.05）。外源IBA在第8天明显提高内源IAA的含量。
3 讨论
该研究探讨了使用不同浓度外源IBA瓶插百合切花对花瓣中内源激素含量的影响以及内源激素相互之间的关系。试验结果表明，通过瓶插不同浓度IBA处理液的方式，检测花瓣中内源激素含量，处理液中IBA可在成熟的韧皮部中与其他代谢产物一起以集流的形式被动地快速非极性运输[5]，影响百合切花花被内其他内源激素。由于试验温度为（28±2） ℃，其主要动力可能来源于自身的蒸腾作用。
研究表明，处理组（80 mg/L）即高浓度IBA处理对内源激素IAA、ABA含量的变化趋势无影响，GA3、JA含量与CK变化趋势一致，说明高浓度IBA对内源激素IAA、ABA的影响较大，对GA3、JA的影响较小。在第4天时，GA3含量除处理组（60 mg/L）外差异较小，第6天IAA含量差异不显著，第8天JA含量差异不显著，处理组（20、60 mg/L）ABA含量间差异不显著，处理组（40、80 mg/L）和对照CK差异不显著，说明在特定的时间内，不同的内源激素有可能只与其自身的时间有关，而与其外部处理物质无关。
在处理浓度0～60 mg/L范围内，0～6 d处理组的内源IAA含量均比CK低且差异较小。其原因可能是IAA存在的形式有自由态和结合态2种，而外源添加的IBA会在植物体内迅速转变为结合态[1]，其植物体内的IBA自由态含量随之增加，迫使一部分IAA含量以结合态的形式存在于植物体中。在6～10 d期间，IAA含量表现出上升趋势。这与赵莉等[6-7]研究一致。
内源ABA出现第1峰值的原因可能是百合切花从植株上切下本身就是一种外在的胁迫。在这种情况下，通过激活ABA 的合成及抑制其降解途径而实现的[8]。同时，促进气孔的关闭，减少水分的蒸腾[9]，以维持切花的水分平衡。
在瓶插0～4 d期间，处理组（20、40、80 mg/L）对内源GA3含量的影响较小，在第4天达到最大值，在第6天内源IAA含量差异不显著，其原因可能是GA3抑制 IAA 氧化酶或过氧化物酶的活性，或GA3促进生长素的生物合成，或GA3使束缚型 IAA 释放为自由型 IAA [10]。在0～6 d期间，外源IBA对内源JA的影响较大。处理浓度60 mg/L对内源JA含量的影响与ABA一致。
参考文献
[1] 武维华.植物生理学[M].北京：科学出版社，2003.
[2] 江玲，周燮. 植物体中的吲哚丁酸（IBA）[J].生命科学，1999，11（3）：135-136，101.
[3] 叶向斌，张晚风，谭光营. NAA和IBA对菊花生长发育和花期的影响[J]. 北京农学院学报，1998，13（4）：24-29.
[4] CAROLYN E L，JANE E L，JOHN R L. Developmental changes in enzymes of flavonoid biosynthesis in the skins of red and green apple cultivators[J]. Sei Food Agric，1996，71：313.
[5] PETRASEK J，FRIML J.Auxin transport routes in plant development[J].Development，2009，136：2675-2688.
[6] 赵莉.6-BA、GA3和IBA对香水百合生长发育的影响[D].雅安：四川农业大学，2012.
[7] ARROM L，MNNEBOSCH S.Hormonal changes during fower development in floral tissues of Lilium[J].Planta，2012，236：343-354.
关键词IBA；百合；内源激素；ELISA
中图分类号S682.2+9文献标识码A文章编号0517-6611（2014）04-00974-02
基金项目重庆市科技攻关项目（CSTC2012ggA8002）。
作者简介王露（1989-），女，重庆人，硕士研究生，研究方向：园林植物培育与遗传育种。*通讯作者，教授，硕士生导师，从事果树园艺和观赏园林的栽培生理方面的研究。
丁酸（indole3butanoic acid，IBA）是人工合成生长素的主要类型，也是植物体内天然存在的一种生长素。Blommajert最早发现IBA存在于马铃薯的皮中[1]。其后，在烟草、菜豆、豌豆、柏树和玉米等植物中都相繼发现天然IBA的存在[2]。
IBA作为市售生根剂的主要成分，常用于植物扦插、生根试验。叶向斌等[3]通过喷施叶面方式对植物进行处理，而采用瓶插方式处理植物的研究鲜见。笔者通过外加不同浓度的IBA溶液对百合切花进行瓶插处理，测定不同时间内源激素的变化，旨在了解IBA对其他内源激素的影响及其关系，探讨IBA对百合切花发育与衰老过程的生理机制，为IBA在切花上的运用提供理论依据。
1 材料与方法
1.1 材料试验材料为东方系百合品种‘西伯利亚’（Lilium hybrida Oriental.cv. Siberia）。种球购于云南玉溪明珠花卉有限责任公司。3月5日种植于重庆文理学院生物园。7月剪切大小一致、含有3个花蕾且第一花蕾为绿蕾（即将着色）的花枝，直接浸入去离子水中，及时运回实验室处理。
1.2方法在去离子水中，将花枝基部用枝剪刀斜切45°，花枝长度保留35 cm，叶保留顶部6片。每个处理3次重复，每个重复3枝花，插于含 500 ml处理液、容量为 500 ml的广口瓶中。用保鲜膜封住瓶口，以防水分蒸发。每2 d换1次处理液。在处理期间，实验室内温度为（28±2） ℃，相对湿度为75%。处理液中IBA质量浓度为20、40、60、80 mg/L，对照（CK）为去离子水。
每2 d在固定时间内取样。取样部位为百合第一花蕾的内外花被。每个处理3次重复取样。提取和测定采用酶联免疫吸附剂测定（ELISA）方法[4]。试剂盒由中国农业大学王保民博士提供，按照 ELISA 说明用酶联免疫检测仪进行测定。数据处理采用EXCEL和SPSS软件。
2结果与分析
2.1不同处理液对百合切花内源吲哚3乙酸（IAA）的影响由图1可知，在瓶插期间，不同浓度处理对花瓣中IAA均有影响，其中处理组（20、40、60 mg/L）在第8天表现与CK不一致，处理组（80 mg/L）则变化较大。CK和处理组中内源IAA含量在第6天差异不显著（P>0.05）。外源IBA在第8天明显提高内源IAA的含量。
3 讨论
该研究探讨了使用不同浓度外源IBA瓶插百合切花对花瓣中内源激素含量的影响以及内源激素相互之间的关系。试验结果表明，通过瓶插不同浓度IBA处理液的方式，检测花瓣中内源激素含量，处理液中IBA可在成熟的韧皮部中与其他代谢产物一起以集流的形式被动地快速非极性运输[5]，影响百合切花花被内其他内源激素。由于试验温度为（28±2） ℃，其主要动力可能来源于自身的蒸腾作用。
研究表明，处理组（80 mg/L）即高浓度IBA处理对内源激素IAA、ABA含量的变化趋势无影响，GA3、JA含量与CK变化趋势一致，说明高浓度IBA对内源激素IAA、ABA的影响较大，对GA3、JA的影响较小。在第4天时，GA3含量除处理组（60 mg/L）外差异较小，第6天IAA含量差异不显著，第8天JA含量差异不显著，处理组（20、60 mg/L）ABA含量间差异不显著，处理组（40、80 mg/L）和对照CK差异不显著，说明在特定的时间内，不同的内源激素有可能只与其自身的时间有关，而与其外部处理物质无关。
在处理浓度0～60 mg/L范围内，0～6 d处理组的内源IAA含量均比CK低且差异较小。其原因可能是IAA存在的形式有自由态和结合态2种，而外源添加的IBA会在植物体内迅速转变为结合态[1]，其植物体内的IBA自由态含量随之增加，迫使一部分IAA含量以结合态的形式存在于植物体中。在6～10 d期间，IAA含量表现出上升趋势。这与赵莉等[6-7]研究一致。
内源ABA出现第1峰值的原因可能是百合切花从植株上切下本身就是一种外在的胁迫。在这种情况下，通过激活ABA 的合成及抑制其降解途径而实现的[8]。同时，促进气孔的关闭，减少水分的蒸腾[9]，以维持切花的水分平衡。
在瓶插0～4 d期间，处理组（20、40、80 mg/L）对内源GA3含量的影响较小，在第4天达到最大值，在第6天内源IAA含量差异不显著，其原因可能是GA3抑制 IAA 氧化酶或过氧化物酶的活性，或GA3促进生长素的生物合成，或GA3使束缚型 IAA 释放为自由型 IAA [10]。在0～6 d期间，外源IBA对内源JA的影响较大。处理浓度60 mg/L对内源JA含量的影响与ABA一致。
参考文献
[1] 武维华.植物生理学[M].北京：科学出版社，2003.
[2] 江玲，周燮. 植物体中的吲哚丁酸（IBA）[J].生命科学，1999，11（3）：135-136，101.
[3] 叶向斌，张晚风，谭光营. NAA和IBA对菊花生长发育和花期的影响[J]. 北京农学院学报，1998，13（4）：24-29.
[4] CAROLYN E L，JANE E L，JOHN R L. Developmental changes in enzymes of flavonoid biosynthesis in the skins of red and green apple cultivators[J]. Sei Food Agric，1996，71：313.
[5] PETRASEK J，FRIML J.Auxin transport routes in plant development[J].Development，2009，136：2675-2688.
[6] 赵莉.6-BA、GA3和IBA对香水百合生长发育的影响[D].雅安：四川农业大学，2012.
[7] ARROM L，MNNEBOSCH S.Hormonal changes during fower development in floral tissues of Lilium[J].Planta，2012，236：343-354.