寡聚荷正电氨基酸修饰的基因递送纳米脂质载体的构建和初步评价

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目的:脂质体已经成为生物医药技术领域里,最主要的药物、基因、影像剂的重要载体,是一种非病毒载体类载体,在基因传递中具有显著优势。但仍然存在生物大分子负载率低、摄取效率低、胞内释放性能欠佳、内涵体逃逸障碍等问题。因此,本文重在设计一种多能高效的生物大分子输送载体。本文合成了能高效提高转染效率的DC-Chol,以及赋予脂质体pH敏感性能的CHEMS,对其化学结构进行表征。将DSPE-PEG(2000)与CPP共轭连接,得到导向性脂材DSPE-PEG-CPP,以提高脂质体对细胞的摄取能力。构建了一种能使siRNA冲破内涵体逃逸障碍,避免被溶酶体灭活的CPP修饰载压缩物脂质体CL2,和一种CPP修饰的非载压缩脂质体CL1,并对其进行表征和初步的评价。方法:1胆固醇氯甲酸酯和过量N,N-二甲基乙二胺分别溶于无醇氯仿中,0-4℃冰水浴条件下反应。TLC监测反应进程,待胆固醇氯甲酸酯反应完全后终止反应(约2h),旋蒸挥干溶剂,干燥后用热绝对乙醇重结晶两次纯化并真空干燥。2胆固醇与过量的丁二酸酐溶于20mL甲苯, DMAP作为催化剂,加热回流反应3h。旋转蒸发挥干溶剂,干燥后重结晶两次,得到灰色产品。3Mal-PEG-DSPE用氯仿-甲醇(3:1)溶解,旋转成膜,HBS(pH6.5)溶液3.0mL水化,和CPP肽溶液(5mg溶于HBS(pH6.5)2.0mL)混合,搅拌反应48h,加入半胱氨酸适量继续搅拌4h,透析2d,冷冻干燥。4空白脂质体单因素考察,通过固定膜材总量;DOPE:CHEMS比例的筛选;添加Chol对制剂的影响;水化液选择;超声时间的选择,最终确定空白脂质体制备方法。5构建非压缩载药脂质体(NL1/CL1)和载压缩物脂质体(NL2和CL2),并进粒径、电位和电镜表征。制备方法如下:分别以DSPE-PEG、DSPE-PEG(CPP)成膜,DEPC水溶液水化,超声得胶束M1、M2。非压缩载药脂质体(NL1/CL1):以SPC/Chol/DC-Chol为脂材成膜,含siRNA的DEPC溶液水化脱膜,水浴超声10-15min,得到普通载药脂质体。通过后插入法分别与胶束M1和M2孵育4h,得NL1和CL1。载压缩物脂质体(NL2和CL2):以DOPE/CHEMS/Chol为脂材成膜,DEPC水化液脱膜,超声得空白脂质体,与siRNA压缩物混合孵育后,冰浴条件调至pH7.4-7.8,再通过后插入法制备NL2和CL2。6以流式细胞术分析包载siRNA的NL1&CL1和包载压缩siRNA的NL2&CL2处理的MCF-7细胞,以阳性细胞百分数和胞内平均荧光强度(MFI)为考察指标,评价细胞摄取效率。结果:1合成DC-Chol:白色固体粉末1.621g,产率达到60.3%;熔点:107-108℃;TLC(氯仿-甲醇=65:35(v/v),10%H2SO4显色), Rf=0.56,显示为纯品;质谱图中m/z501.6,与DC-Chol的理论计算值501.80(M+H+)相符;1HNMR:δ,2.301(s,6H);δ,2.495(t,2H); δ,3.305,3.296(q,2H);δ,5.365(s,1H)。证明产物结构正确。2合成CHEMS:将无水乙醇重结晶干燥后,得到浅灰色固体粉末0.49g,产率78%;熔点:173-176℃;TLC测定(氯仿:甲醇(10:1,v/v),新生成斑点Rf=0.10,显示为纯品;质谱图中有离子峰m/z485.5,与CHEMS的理论计算值为485.5(M-H+)相符。证明产物结构正确。3合成DSPE-PEG-CPP:得到白色絮状物;通过Ellman试剂测得CPP反应率为84.4%;MS+检测,分子离子峰m/z4469.17,与设计肽平理论计算值相对应。证明产物为目标化合物为DSPE-PEG-CPP。4通过单因素考察,确定脂质体制备工艺:精密量取DOPE、CHEMS、Chol按5:2:2(mol/mol/mol)成膜,加入37℃DEPC水溶液2.0mL水化,超声10-15min,得到带有淡蓝色乳光的半透明体系,测粒径。5构建了非压缩载药脂质体(NL1/CL1)和载压缩物脂质体(NL2和CL2),并进粒径、电位和电镜表征。NL1、CL1的粒径分别为226.8nm、262.4nm;后者PdI较小,粒径分布窄;Zeta分别为37.0mV、55.7mV,体系稳定;电镜下观察,粒径约200nm左右。NL2、CL2粒径分别为289.8nm、293.2nm;两组制剂PdI都很小,粒径分布窄;Zeta分别为-29.6mV、-29.2mV,脂质体表面带负电,体系趋于稳定;电镜下观察,粒径约200nm左右。6采用流式细胞分析术分析经药物制剂处理的细胞悬液非压缩制剂组N-L和C-L进入细胞的荧光强度X-mean分别为9.1,10.4,是阴性对照组和游离siRNA组的20倍左右,由此说明CPP修饰非压缩载药脂质体(C-L制剂)、普通修饰非压缩载药脂质体(N-L)均提高了细胞摄取率,CPP修饰非压缩载药脂质体具有更高的细胞摄取率。载压缩物制剂组N-L’、C-L’阳性细胞百分比为6.4%、7.9%,其阳性细胞百分数均有显著变化,提高细胞摄取效率约10倍,表明载压缩物制剂均提高了细胞摄取效率,CPP修饰载压缩物脂质体具有更高的细胞摄取率。结论:实验结果表明,DC-Chol以及CHEMS合成路线可靠,产率分别为60.3%、78%,产品纯度较高,重现性高。由Ellman试剂判断反应进程,质谱测定得出的分子离子峰推测产物结构,成功地将CPP共轭连接到DSPE-PEG(2000)中的PEG远端,得到增强细胞穿透能力的导向性脂材DSPE-PEG(2000)-CPP。成功地制备了四组递送siRNA的递送纳米脂质载体CPP修饰非压缩载药脂质体(NL1)、普通修饰非压缩载药脂质体(NL2)、普通修饰在压缩物脂质体(CL1)、CPP修饰载压缩物脂质体(CL2)。四组制剂均提高了细胞摄取效率。普通脂质体与CPP修饰的脂质体的细胞摄取相对较高,但差异并不显著。导致这个结果的可能的原因是,如DSPE-PEG-CPP合成产物中有较多剩余脂材原料,反应条件有待进一步优化,产物纯度有待提高。
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