心外膜祖细胞被证实在心脏发育过程中起着重要作用,它能通过上皮间质转化(EMT)形成心外膜来源细胞(EPDCs),并在一系列的信号通路作用下最终分化为心脏成纤维细胞以及冠脉血管平滑肌细胞,参与心脏纤维骨架和冠脉血管的形成。因其具有多项分化潜能,心外膜祖细胞被认为是心脏的第三心生区,是一个能特征性表达Tbx18、Wt1和Tcf21等基因的祖细胞池。成年心脏的心外膜细胞丧失心外膜祖细胞的特征,但有研究发现心肌梗死后梗死区周边处于静止期的心外膜细胞可再次激活,重新表达胚胎期心外膜祖细胞基因,如Tbx18和Wt1,并不断增殖、EMT、迁移进入梗死区域参与心脏修复及血管再生。因此,研究心外膜祖细胞增殖以及EMT机制不仅对于深入探索心脏生长发育机制具有重要的意义,且有助于推进心外膜祖细胞在心脏再生领域的相关应用。胰岛素样生长因子1型受体(IGF1R)介导的信号通路已经被证实参与多种细胞的增殖以及EMT过程,并且有研究通过原位杂交的方式证实在E11.5-E14.5天心外膜上有IGF1R基因的表达,我们猜测此信号通路可能参与调控心外膜祖细胞的增殖以及EMT过程。IGF1R参与调控细胞增殖以及EMT的作用除了通过传统经典的PI3K/AKT以及MAPK/ERK途径实现外,近年来发现其也可通过FAK途径产生相似的生理或者病理作用,因此,我们通过本实验研究探索IGF1R信号通路在心外膜祖细胞增殖以及EMT中的作用,以及探讨其相关作用是否通过FAK介导实现。第一部分:IGF1R信号通路在小鼠胚胎心脏组织中的时空表达目的:探索IGF1R及其主要配体IGF1和IGF2在小鼠胚胎心脏组织中的时空表达情况。方法:雌性及雄性C57BL/6小鼠进行交配,取E11.5-E17.5天的胚胎组织进行冰冻切片,免疫荧光染色确定IGF1R及其配体IGF1和IGF2在E11.5-E17.5天胚胎心脏中的表达情况。结果:免疫荧光染色结果提示IGF1R在E11.5-E17.5天的胚胎心外膜上有明确表达。IGF1在E11.5-E13.5天的胚胎心外膜上表达量较少,在E14.5-E17.5天的胚胎心外膜上明显表达。作为胚胎期生长因子,IGF2在胚胎心外膜的表达比IGF1更加明显且高表达贯穿E11.5-E17.5天。结论:IGF1R及其配体IGF1和IGF2在E11.5-E17.5天的胚胎心外膜上均有表达,提示IGF1R信号通路可能参与调控小鼠心外膜祖细胞的发育过程。第二部分:IGF1R信号通路在心外膜祖细胞增殖中的作用及机制研究目的:建立小鼠心外膜祖细胞体外培养体系,并通过干预细胞IGF1R信号通路,研究IGF1R信号通路是否参与调控心外膜祖细胞的增殖,并深入探讨其调控增殖作用是否通过FAK介导实现。方法:雌性及雄性C57BL/6小鼠进行交配,取E12.5d的胚胎心脏组织进行心外膜祖细胞培养,使用免疫荧光染色技术检测其特异性标志物Tbx18和Wt1的表达情况来进行细胞鉴定。同时也通过免疫荧光染色检测IGF1R在体外培养的原代小鼠心外膜祖细胞中的表达情况。然后分别用不同浓度的Picropodophyllin(PPP)(0、0.2μM、0.4μM、0.8μm和1.6μM)干预原代心外膜祖细胞72小时,CCK-8(Cell Counting Kit-8)检测细胞增殖情况。然后将体外培养的原代心外膜祖细胞随机分为两组:对照组和PPP组(给予0.4μM PPP干预)。培养72小时后,使用免疫荧光染色检测两组细胞增殖标志物Ki67的表达以及FAK(p Y397)磷酸化水平;q RT-PCR测定Ki67、CCND1(细胞周期蛋白Cyclin D1编码基因)以及Ptk2和Ptk2b(FAK编码基因)在m RNA水平的表达情况,并通过流式细胞技术检测两组细胞之间细胞周期的变化。考虑到血清之中含有胰岛素样生长因子,将原代心外膜祖细胞培养基中的胎牛血清(Fetal Bovine Serum,FBS)由10%降至1%。然后,分别用不同浓度的IGF1(0、5ng/ml、10ng/ml和50ng/ml)和IGF2(0、10ng/ml、50ng/ml和100ng/ml)干预细胞72h,CCK-8检测细胞增殖情况。并将细胞随机分为:对照组、IGF1组(50ng/ml)、IGF2组(100ng/ml)、IGF1+Y15组(50ng/ml IGF1+1n M Y15)和IGF2+Y15组(100ng/ml IGF2+1n M Y15)。CCK-8检测各组细胞增殖能力,免疫荧光染色检测Ki67表达以及FAK(p Y397)磷酸化情况,q RT-PCR检测Ki67、CCND1、Ptk2和Ptk2在m RNA水平的表达情况,流式细胞技术检测各组细胞周期变化。结果:培养出来的细胞在倒置细胞显微镜下呈现“铺路石”样外观,形态规则、单一,细胞间连接紧密,细胞核内特异性表达Tbx18及Wt1,且阳性细胞数高。细胞免疫荧光染色提示小鼠心外膜祖细胞膜上点状分布IGF1R。CCK-8实验结果提示随着PPP浓度的增加,心外膜祖细胞增值能力逐渐降低。与对照组相比,免疫荧光染色显示PPP组细胞Ki67表达、FAK(p Y397)磷酸化水平明显下降,q RT-PCR提示干预组细胞Ki67、CCND1、Ptk2以及Ptk2b m RNA表达明显降低,流式细胞周期检查结果提示PPP组细胞中处于G1期的细胞明显增加,S和G2期细胞则明显减少。不同浓度的IGF1和IGF2干预细胞72后,随着生长因子浓度的增加,心外膜祖细胞的增殖能力逐渐升高。与对照组相比,IGF1与IGF2组细胞Ki67表达以及FAK(p Y397)磷酸化水平明显增高,Ki67、CCND1、Ptk2和Ptk2b m RNA的表达也明显升高,G1期细胞减少,S、G2期细胞增多;使用Y15特异性阻断FAK(p Y397)磷酸化后,Ptk2和Ptk2b在m RNA水平的表达不受影响,但引起Ki67、CCND1在m RNA水平的表达明显降低,CCK-8显示细胞增殖能力明显受限,流式细胞周期检查则提示细胞由G1期向S/G2期的转化被明显抑制。结论:我们成功建立了心外膜祖细胞的体外培养体系,并证实IGF1R信号通路可参与调控心外膜祖细胞的增殖,且此作用可通过FAK介导实现。第三部分:IGF1R信号通路在心外膜祖细胞上皮间质转化中的作用研究目的:探索IGF1R信号通路是否能够影响心外膜祖细胞EMT过程。方法:同上,将体外培养的心外膜祖细胞随机分为两组:对照组和PPP组(给予0.4μM PPP干预)。培养72小时后,使用免疫荧光染色检测细胞上皮标志物ZO-1以及间质标志物Vimentin的表达情况;q RT-PCR测定Cdh1(上皮标志物E-cadherin编码基因)、Tjp1(ZO-1编码基因)、Cdh2(间质标志物N-cadherin编码基因)以及Vim(Vimentin编码基因)在m RNA水平的表达情况。将心外膜祖细胞的培养背景降低为1%FBS后,细胞随机分为:对照组、IGF1组(50ng/ml)和IGF2组(100ng/ml)。免疫荧光染色检测各组细胞ZO-1和Vimentin的表达情况,q RT-PCR检测各组细胞Cdh1、Tjp1、Cdh2和Vim在m RNA水平的表达情况,以及Transwell实验观察三组细胞间迁移能力的差异。结果:细胞免疫荧光染色及q RT-PCR的结果提示,对照组与PPP组细胞不论是ZO-1和Vimentin的表达还是Cdh1、Tjp1、Cdh2和Vim在m RNA水平的表达均无明显差异。同样地,IGF1与IGF2干预处理细胞也不能引起所检测的EMT相关标志物表达的明显改变。Transwell试验提示IGF1及IGF2并不影响细胞的迁移能力。结论:IGF1R信号通路不影响心外膜祖细胞的EMT过程。