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NADPH氧化酶(NADPH oxidase,NOX)是植物胞外活性氧(reactive oxygen species,ROS)产生的主要来源,ROS在调节植物抵抗逆境胁迫以及生长发育中有重要作用。而OsNOX2是水稻NOX家族成员之一。本研究首先对OsNOX2基因的表达进行了初步分析,然后通过构建OsNOX2基因的超表达和RNA干扰转基因水稻植株,对OsNOX2在水稻中的功能进行了初步研究。具体的研究结果如下:1.我们分析了OsNOX2的诱导表达谱与组织表达谱。首先OsNOX2在水稻幼苗中的诱导表达分析结果表明当水稻受到高温、PEG、NaCl或MeJA处理时,OsNOX2的表达水平上调比较明显。而当受到冷害,ABA或SA胁迫处理时,OsNOX2的表达水平几乎没有变化。其次本研究选取了水稻发育4个时期(幼苗期、分蘖期、孕穗期、抽穗期)以及水稻愈伤组织材料,通过qRT-PCR技术研究OsNOX2在这些时期的各组织中的表达情况。结果表明OsNOX2在选取的各时期各组织中都有表达,其中在抽穗期的第二叶叶鞘中表达最高,在幼苗期和抽穗期的根、以及在孕穗期和抽穗期的穗中表达量相对较低。总体表现为在水稻不同的发育时期有组织表达特异性。2.我们构建了OsNOX2-GFP融合表达载体,并利用农杆菌介导的侵染烟草叶片的方法构建了瞬时转化体系,在烟草中确定了OsNOX2定位于细胞质膜。3.我们构建了OsNOX2超表达载体和RNA干扰载体,通过农杆菌侵染水稻愈伤的方法获得了3个OsNOX2超表达转基因株系和4个RNA干扰转基因株系。通过这些材料我们可以观察在水稻中超表达OsNOX2或降低OsNOX2的表达后对水稻造成的影响,为研究OsNOX2的功能提供基础。4.采用荧光标记法,即利用2,7-二氯氢化荧光素二乙酸酯(H2DCFDA)标记H2O2,我们发现在正常生长条件下OsNOX2超表达植株胞内H2O2的浓度最高,野生型次之,osnox2最低。其次采用了ROS的组织化学染色方法,其中H2O2的DAB染色结果表明,野生型(Wide type,WT)、osnox2、OsNOX2超表达植株中H2O2的浓度相差不大;O2-的NBT染色结果表明,osnox2和OsNOX2超表达植株中O2-的浓度较WT高。5.通过花粉的I2-KI染色分析,结果表明WT和OsNOX2超表达植株的花粉育性高于80%,而osnox2的花粉育性低于60%。