原子力显微镜(AFM)是扫描探针家族中的一员,它通过控制并检测扫描微悬臂上的针尖——样品间的相互作用力,不仅可以实现样品表面形貌的纳米尺度上的高分辨成像,而且可以进行分子间相互作用力的检测。由于AFM独特的成像方式,使其己广泛应用于生物样本的研究中。近些年来AFM作为一种高分辨的成像手段用于生物样品超微结构研究的同时,越来越多的被用于微观力学性质的探测中。血管平滑肌细胞在血管张力的调节中起着关键作用,而微血管平滑肌细胞的功能则直接影响微循环状态。因此,在接近生理状态下对急性分离的微动脉平滑肌细胞进行微观力学研究,将非常有助于多种心血管疾病,如动脉粥样硬化、失血性休克发病机制的深入研究。但迄今为止这方面的报导很少。前期工作查明,培养的3T3细胞经戌二醛固定后,AFM观察细胞表面出现大量凹陷结构,与未固定的活体细胞有明显差异。本项研究的目的是观察急性分离的平滑肌细胞(它不具有培养细胞的贴壁能力,又不希望用戌二醛固定),能在接近生理条件下,用AFM高分辨成像,并观察收缩前后微观力学性质的改变。因此本项工作包括三个部分①寻找一个固定急性分离活体细胞的方法,以用于AFM采样;②减少AFM成像过程对细胞的损伤,取得真实的活体高分辨图像;③探索合适的用AFM分析细胞力学性质的方法。一,微米水平微阵列机械固定法实验采用离子刻蚀技术在硅片上刻制硬模板,用软蚀刻技术制备弹性模板,运用复制模塑法制备聚二甲基硅氧烷(PDMS)微柱结构,其中柱体的边长尺寸为4μm,柱体间距为8μm,深度为3μm。用多聚左旋赖氨酸涂铺PDMS微阵列模板表面。采用木瓜酶和胶原酶两步酶消化法快速分离正常大鼠的肠系膜动脉平滑肌细胞,将细胞悬液离心固定于预处理过的PDMS模板上。环境扫描电镜下观察显示,细胞被较好地限制在PDMS微结构之间。由于微柱组成阵列结构,并不影响细胞的自主伸缩,非常适合于在接近生理的环境中,应用AFM对活细胞进行高分辨成像及微观力学的研究。二,原子力显微术平滑肌活体细胞成像的研究运用最新发展的磁驱动轻敲模式(MAC mode AFM),使用弹性系数小的微悬臂,以及小的驱动振幅,对机械固定于微柱阵列中的急性分离平滑肌细胞进行成像。结果显示,活细胞成像分辨率Z轴可达30 nm,可接近环境扫描电镜分辨程度。刺激(去甲肾上腺素或者机械刺激)引起平滑肌细胞收缩,提示此方法可应用于其它杆状未贴壁细胞的AFM高分辨成像,对细胞的损伤很小,细胞仍具有收缩的机能。三,原子力显微术平滑肌细胞微观力学性质的研究实验采用微阵列结构固定急性分离的正常大鼠的肠系膜动脉平滑肌细胞,运用原子力显微术接触模式扫描样品的同时采集每一点的力——微悬臂偏转曲线。运用AFM的force volume imaging手段研究细胞局部硬度,以及平滑肌细胞经去甲肾上腺素刺激后微观力学性质变化,采集细胞不同区域力曲线观察细胞力学性质变化。将力曲线逼近部分偏转/位移曲线处理成直方图,研究细胞力学性质药物刺激后的变化。结果显示细胞不同区域硬度有明显差别,即中央区域较周边软,去甲肾上腺素(0.02mg/ml)刺激前后细胞硬度整体增加,但周围增加明显。提示平滑肌细胞的弹性作功主要来源于周边应力区。总之,本项研究建立了一个用原子力显微镜在纳米水平既观察平滑肌细胞形态学变化,又观察收缩机能的方法。它包括微阵列单细胞机械固定,适用活细胞的磁驱动轻敲模式AFM成像,及运用Force volume imaging对细胞进行微观力学研究。希望通过本课题的研究,可将生物医学亟待解决的问题与最新发展的物理新成像手段有机结合,探索心血管系统研究的新方法及新途径。