抗VEGF治疗后纤维化加剧分析及抑制内源性CTGF表达的慢病毒颗粒构建

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目的:验证抗VEGF治疗后纤维化加剧作用因子,构建结缔组织生长因子(CTGF)重组干扰载体(shRNA),观察其对视网膜血管内皮细胞内源性CTGF表达的抑制作用。方法:培养细胞分为空白对照组、高糖组及高糖联合抗VEGF组,以模拟临床中注射抗VEGF药物治疗与否PDR患者体内细胞状态,应用实时定量PCR验证CTGF、FN、α-SMA、ColI表达,收集注射抗VEGF药物与否PDR患者纤维增殖膜,进行荧光半定量分析。构建带有mcherry红色荧光标记的人源CTGF重组干扰载体(CTGFshRNA),应用三质粒包装系统获得高滴度的CTGFshRNA慢病毒颗粒,并感染视网膜血管内皮细胞,首先利用干扰载体中的红色荧光标记示踪并筛选慢病毒的最佳感染复数及起效时间,在此基础之上将细胞分为三组,分别为空白对照组,感染对照组及CTGF敲低组。通过Transwell实验观察细胞迁移能力的改变,经实时定量PCR联合Western blot方法量化CTGF的敲低效率及FN、α-SMA、ColI蛋白的表达。结果:高糖联合抗VEGF组中各因子表达量(CTGF:197.35±14.95,FN:3.08±0.47,α-SMA:4.50±1.07,ColI:2.14±0.06)较高糖组(CTGF:2.00±0.14,FN:1.54±0.10,α-SMA:2.24±0.35,ColI:1.97±0.08)明显上升,差异具有统计学意义(F=7.86、4.24、6.03、0.16,P=0.000、0.005、0.03、0.041)。增殖膜荧光结果与其相符。确定在实验体系中感染复数20及起效时间72h为CTGFshRNA慢病毒优化感染条件,可有效降低内源性CTGF表达水平。Transwell细胞迁移实验结果显示,CTGF敲低组穿过小孔细胞数(117.33±19.76)较空白对照组(268.00±30.05)及感染对照组(241.67±39.12)明显降低,差异均有统计学意义(F=20.64,P=0.002)。实时定量PCR实验结果显示:CTGF敲低组中相关因子表达量(CTGF:0.11±0.11,FN:0.14±0.13,α-SMA:0.10±0.09及ColI:0.09±0.04)与空白对照组相比差异具有统计学意义(F=128.83、124.44、144.76、1374.44,P=0.000、0.000、0.000、0.000)。Western blot结果显示:CTGF敲低组中相关蛋白表达量为(CTGF:0.96±0.07,FN:0.99±0.06,α-SMA:0.61±0.06及ColI:0.60±0.01)与空白对照组(CTGF:1.76±0.19,FN:1.72±0.15,α-SMA:1.30±0.16,ColI:1.19±0.08)相比差异具有统计学意义(F=22.55、41.60、25.73、161.68,P=0.002、0.000、0.001、0.000)。结论:抗VEGF药物引起视网膜血管内皮细胞中CTGF等相关因子表达上升,在临床组织中得到验证,成功制备可特异性敲低CTGF表达的CTGFshRNA慢病毒颗粒,初步证实CTGFshRNA慢病毒可有效下调内源性CTGF的表达,抑制细胞的迁移并下调FN、α-SMA、ColI表达,即CTGFshRNA慢病毒是抑制内源性CTGF表达的潜在分子工具。
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