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目的探讨沉默CTNNB1从而抑制Wnt/β-catenin通路活性对甲状腺癌干细胞增殖、迁移、侵袭及自我更新能力的影响及相关机制。方法以免疫磁珠分选技术筛选分离甲状腺未分化癌ARO细胞系中CD133阳性细胞亚群,并采用Western-blot法、CCK-8法、肿瘤细胞球形成实验鉴定其肿瘤干细胞特性。其次将生长状态良好的CD133阳性ARO细胞亚群随机分为空白对照组、阴性对照组和转染组,其中空白组细胞除常规培养外不做任何处理,阴性对照组转染仅携带荧光标记蛋白GFP基因的空载慢病毒,转染组转染携带了靶向沉默CTNNB1基因的sh RNA和GFP的重组慢病毒,72h后于倒置荧光显微镜下观察转染效率,选取转染效率大于80%的细胞进行下一步实验。Western-blot法检测三组细胞中目的蛋白β-catenin以及上皮-间质转化标志蛋白E-cadherin、Vimentin表达;CCK-8法检测转染后细胞增殖活性变化;肿瘤细胞球形成实验检验转染后细胞自我更新能力改变;Transwell实验检测转染后细胞增殖和迁移能力。结果ARO细胞中CD133阳性亚群的Oct-4蛋白相对表达量(0.98±0.01)明显高于CD133阴性亚群(0.59±0.01),差异具有统计学意义(t=81.04,P<0.01);CD133阳性细胞培养4～6天时生长速度明显快于CD133阴性细胞(F=177.18,P<0.01),显示CD133阳性细胞具有更强的增殖能力。无血清条件下连续培养1周后,CD133阳性细胞能够形成悬浮生长的肿瘤细胞球,而CD133阴性细胞则不能,说明CD133阳性细胞自我更新能力更强。慢病毒转染72h后倒置荧光显微镜下观察,当感染复数(MOI)约50时,转染效率达80%以上。Western-blot结果显示,β-catenin蛋白在转染组中相对表达量为(0.85±0.02),明显低于空白组(1.64±0.04)和阴性对照组(1.57±0.05),差异有统计学意义(F=408.45,P<0.01),空白组与阴性对照组无明显差异(P>0.05),说明成功构建稳定抑制CTNNB1基因表达的细胞模型。CCK-8结果显示,培养2d、3d转染组与空白组及阴性对照组相比细胞增殖能力下降,差异具有统计学意义(均P<0.01),而空白组与阴性对照组细胞OD值差异无统计学意义(P>0.05)。肿瘤细胞球形成实验结果显示,转染组在细胞球成型率及细胞球体积方面较空白组均呈下降趋势,差异有意义(P<0.05)。Transwell小室实验结果显示,迁移实验中转染组穿膜细胞数为(94.80±5.11)/视野,明显少于空白组(308.80±12.13)/视野,差异具有显著性(t=-36.339,P<0.01)。侵袭实验中转染组穿过膜细胞数为(85.00±6.70)/视野,明显少于空白组(267.00±9.08)/视野,差异具有显著性(t=-36.041,P<0.01)。Western-blot检测上皮表型分子E-cadherin和间质表型分子Vimentin的表达结果提示,间质表型分子Vimentin蛋白在转染组中的相对表达量为(0.85±0.05),与空白组(1.28±0.04)和阴性对照组(1.27±0.06)相比明显降低(P<0.01);上皮表型分子E-cadherin蛋白在转染组中的相对表达量为(1.09±0.08),较空白组(0.72±0.03)和阴性对照组(0.72±0.02)相比明显升高(P<0.01)。结论抑制Wnt/β-catenin信号通路活性可以降低甲状腺癌干细胞增殖、迁移、侵袭及自我更新能力。图10幅;表4个;参166篇。