【目的】　　本课题拟通过检测激活态雪旺细胞（activated Schwann cells,ASCs）和非激活态雪旺细胞（Schwanncells,SCs）之间营养因子的表达差异，探究体外培养对ASCs的功能状态影响，及ASCs、SCs诱导神经干细胞（neural stem cells,NSCs）向神经元分化的作用；通过培养ASCs、SCs于静电纺丝聚己内酯（PCL）纤维支架上，对比ASCs、SCs与PCL纤维支架的生物相容性；通过培养NSCs或联合ASCs于静电纺丝PCL纤维支架上，观察细胞分布、增殖、分化，探究ASCs和NSCs共培养体系与静电纺丝PCL纤维支架的生物相容性。　　【方法】　　通过结扎Wistar大鼠坐骨神经7天，模拟坐骨神经挫伤模型，提取ASCs；由正常坐骨神经提取SCs，分别培养至第3代，提取总蛋白，通过Western Blot对比分析ASCs和SCs的营养因子在蛋白水平的表达差异；提取Wister孕鼠E14.5天胚胎海马区NSCs，通过免疫荧光染色进行细胞鉴定及观察NSCs的多向分化能力；通过ASCs和SCs的条件培养基半量换液诱导NSCs分化，观察神经元分化比例及轴突长度；3D培养ASCs和SCs在静电纺丝 PCL纤维支架上，通过CCK-8实验检测细胞活性与增殖，结晶紫染色观察细胞分布及寻找合适细胞密度，激光共聚焦显微镜观察细胞粘附和形态；将NSCs单纯或联合ASCs培养于静电纺丝PCL纤维支架上，通过CCK-8实验检测NSCs增殖，通过激光扫描电镜观察细胞形态和分布，通过激光共聚焦显微镜观察 NSCs神经元的分化和ASCs MBP的表达。　　【结果】　　1.传至第3代的ASCs较SCs高表达BDNF、NGF（P<0.05），而NT-3、MBP的表达则低于SCs（P<0.05)；半量换液7天后，ASCM组，神经元分化比例为36.06±7.04%；SCM组分化比例为17.22±3.78%；M组分化比例为5.78±3.03%。ASCM组神经元分化比例高于其他两组(P<0.05)。ASCM组，神经元轴突长度为161.33±67.44μm；SCM组神经元轴突长度为110.33±60.34μm；M组，神经元轴突长度为97.55±54.09μm。ASCM组神经元轴突长于其余两组(P<0.05)。　　2.静电纺丝PCL纤维支架的纤维直径集中在7.93±1.41μm，纤维随机分布能形成3D培养结构；结晶紫染色观察：一定数量的雪旺细胞紧贴纤维纵向分布，且细胞种植密度为2×10^4个/cm2时细胞增殖良好；通过S-100染色，激光共聚焦显微镜观察：细胞呈典型的梭型，并且细胞紧贴纤维分布，与结晶紫染色观察结果相一致；CCK-8实验检测：ASCs在PCL支架上比SCs的增殖更快，第7天OD值高于SCs（P<0.05）。　　3.神经干细胞在静电纺丝PCL纤维支架上培养，1-7天OD值逐渐增大，在第6-7天时，趋于平缓，在第7天时细胞增殖达到最高峰；通过βⅢ-Tubulin、GFAP、O4免疫荧光染色，利用激光共聚焦显微镜进行观察：神经干细胞分化7天后，能够分化为星形胶质细胞，神经元和少突胶质细胞；NSCs与ASCs共培养于静电纺丝PCL支架上后，分化7天进行疫荧光染色共聚焦显微镜观察：一定数量的ASCs能够表达MBP，神经干细胞能够分化为神经元，并且神经元多分布于表达MBP的ASCs周围。　　【结论】　　1.体外培养条件下传代至第3代的ASCs仍能保持一定的激活表型，且能促进NSCs向神经元方向分化；　　2.静电纺丝PCL支架具有3D培养结构，与ASCs具有良好的生物相容性，且纤维对细胞分布具有一定导向性作用；　　3.NSCs、ASCs共培养体系在静电纺丝PCL支架上能够形成3D培养，可以进行体内移植探究。