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摘要：以绿竹基因组DNA为ISSR-PCR扩增模板，采用单因素试验方法，对dNTPs、Mg2 、Taq DNA聚合酶、引物、模板DNA设置7个不同浓度梯度进行研究，并对退火温度和循环次数进行筛选，建立绿竹ISSR-PCR最佳反应体系和扩增程序，并利用优化后的体系对100条ISSR引物进行筛选。最终确定的最佳反应体系为：20 μL的扩增体系中，dNTPs浓度为0.2 mol/L，Mg2 浓度为2.0 mmol/L，Taq DNA聚合酶用量为1.0 U，引物浓度为0.4 μmol/L，DNA用量为50 ng，10×PCR buffer体积为2 μL、剩余体积用灭菌ddH2O补全。扩增程序为：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性45 s，（根据引物的退火温度）复性30 s，72 ℃延伸90 s，循环38次；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。以此体系为基础进行引物筛选，在100条ISSR引物中筛选出14条扩增条带清晰、多态性较高、重复性好的引物。[JP2]本研究建立了绿竹ISSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物，为绿竹的指纹图谱、遗传多样性分析、分子育种和品种鉴定等研究提供了基础。
关键词：绿竹；ISSR；反应体系；扩增程序；引物筛选
中图分类号： S795.501文献标志码： A
文章编号：1002-1302（2017）15-0034-05
绿竹[Dendrocalamopsis oldhami （Munro） Keng f.]是禾本科竹亚科（Bambusoideae）绿竹属（Dendrocalamopsis）的模式种，是绿竹属中分布最广、栽培最多的竹种[1]。绿竹分布在中亚热带南部、南亚热带的北部和中部，主要分布于东南亚等国家[2]。绿竹原产我国台湾省淡水，我国主要分布在浙江南部、福建、台湾、广东、广西和海南等省区，是我国南方优良速生的笋材两用丛生竹种之一，具有较高的观赏价值、经济价值和社会价值[3]。
分子标记技术经过三代的发展，已经出现了十几种分子标记技术，目前使用比较广泛且成熟的技术有SSR、RAPD、ISSR、SRAP、RFLP、AFLP、SNP等[4-5]。ISSR技术是1994年Zietkiewicz等在SSR分子标记技术的基础上发展起来的一种新的分子标记方法，它在SSR序列的3′或5′末端加上1～4个核苷酸作为反应的引物，从而扩大DNA序列[6]。此种分子标记技术具有简单快捷易操作、DNA用量较少、稳定性较好、试验成本低等优点，且扩增出的条带多态性较好，重复性较高[7-8]。目前ISSR技术已经广泛应用于种质资源的鉴定、基因定位、遗传多样性分析、指纹图谱的构建等方面的研究，是目前使用最广泛的分子标记技术之一[9-12]。本试验采用了单因素多水平梯度方法建立绿竹ISSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物，旨在为绿竹的指纹图谱、遗传多样性分析、分子育种和品种鉴定等研究提供基础。
1材料与方法
1.1试验材料
供试的材料取自于福建省东山国有赤山林场的绿竹地理种源试验样地。对不同的植株随机选取3～5张新鲜叶片，将采集到的新鲜叶片用变色硅胶干燥的方法保存，将干燥的材料迅速带回实验室，于-80 ℃超低温冰箱保存。
1.2DNA的提取与检测
绿竹全基因组DNA的提取采用杭州博日公司Biospin植物基因组DNA提取试剂盒（Cat#BSC13S1）法，并对该种方法略作調整。提取完后用紫外分光光度计测定DNA的浓度和纯度。并用1%的琼脂糖凝胶电泳检测DNA的完整性与清晰性，看是否有降解或断裂现象，将满足试验条件的DNA稀释到20 ng/μL，并置于-20 ℃冰箱保存。
1.3引物筛选
本试验ISSR引物采用加拿大哥伦比亚大学公布的100条引物序列，引物由上海生物工程技术服务有限公司合成，选择1个DNA模板对引物进行初步筛选。从中选择条带清晰、重复性好、稳定性较高、具有多态性的引物，最后确定初选引物为U815（图1）。待最优反应体系建立后，再进行复筛，从100条引物中最终筛选出14条最适宜的引物。
[FK（W13][TPXW11.tif；S 2mm][FK）]
1.4初始PCR扩增程序及反应体系
参照文献[13-15]并作适当调整，确定初始扩增反应体系为：20 μL的扩增体系中，dNTPs浓度为 0.25 mmol/L，Mg2 浓度为2.5 mmol/L，引物浓度为 0.4 μmol/L，Taq DNA聚合酶用量为1 U，DNA用量为50 ng，10×PCR buffer体积为 2 μL，剩余体积用灭菌ddH2O补齐。初始扩增程序为：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性45 s，55 ℃退火30 s，72 ℃延伸90 s，循环35次；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。
1.5扩增程序的优化
本试验采用单因多水平梯度试验法对影响PCR反应的dNTPs浓度、Mg2 浓度、Taq DNA聚合酶用量、引物浓度、模板DNA含量、退火温度及循环次数7个主要因素进行筛选。其中dNTPs浓度、Mg2 浓度、Taq DNA聚合酶用量、引物浓度和模板DNA含量这5个因素设置7个梯度浓度水平（表1）。待最优反应体系建立后，再筛选最佳退火温度与最佳循环次数。使用预试验中扩增效果较好的引物U815对绿竹的基因组DNA进行ISSR扩增，PCR产物于1.5%的琼脂糖凝胶上电泳45 min，电压设为5 V/cm。并用紫外凝胶成像分析仪进行观察和拍照。
1.6ISSR有效引物的筛选
以优化的反应体系及扩增程序体系为基础进行引物筛选，在100条ISSR引物中筛选出14条扩增条带清晰、多态性较高、重复性好的引物。 2结果与分析
2.1dNTPs对ISSR-PCR扩增的影响
对dNTPs设置0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35 mmol/L 7个不同浓度梯度，分别进行PCR扩增，结果如图2所示。当dNTPs浓度为0.05 mmol/L时，PCR产率很低，高分子量区域条带很少，整体条带都比较暗，当dNTPs浓度为0.35 mmol/L时，扩增出的条带也较暗，当dNTPs浓度为0.20～0.30 mmol/L时，条带明亮而清晰，扩增效果较好。为降低试验成本，最终选择dNTPs浓度为0.20 mmol/L。
2.2Mg2 对ISSR-PCR扩增的影响[JP2]
不同浓度的Mg2 对绿竹ISSR-PCR扩增的影响显著（图3），过高过低都会影响扩增的结果。当Mg2 浓度低于或等于1.0 mmol/L时，高分子量区域没有条带，扩增出的条带很暗，[JP2]当Mg2 浓度高于或等于2.5 mmol/L时，扩增出的条带又会出现弥散的现象，当Mg2 的浓度为2.0 mmol/L时，扩增出的条带比较清晰、稳定。所以Mg2 最佳用量确定为2.0 mmol/L。
2.3Taq DNA聚合酶对ISSR-PCR扩增的影响
对Taq DNA聚合酶进行单因子筛选的结果如图4所示，当Taq DNA聚合酶用量为0.50 U时，扩增出的条带较弱，当Taq DNA聚合酶用量为1.00 U时，扩增出的条带比较清晰。当Taq DNA聚合酶用量高于1.00 U时，低分子量区域出现弥散现象，不易区分，当浓度过高时还易出现非特异性扩增。所以确定Taq DNA聚合酶最佳用量为1.00 U。
2.4引物浓度对ISSR-PCR扩增的影响
由图5可知，当引物浓度在0.2～0.4 mmol/L时，扩增条带较多，而且清晰且稳定；当引物浓度高于0.4 mmol/L时，高分子量区域扩增出来的条带较暗，低分子量区域扩增条带不稳定，还出现非特异性扩增；当引物浓度低于0.2 mmol/L时，低分子量区域扩增条带数较少，且整体条带比较暗。最后确定引物最佳用量为0.4 mmol/L。
2.5模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增的影响
对模板DNA用量在10～100 ng之间设置了7个梯度水平进行PCR扩增，结果如图6所示，7个梯度均能扩增出明亮的条带，且扩增出的条带数和清晰度差不多，说明模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增的影响较小。在7个梯度中，模板DNA含量为50 ng时效果最佳，确定其为最佳浓度。
2.6退火温度对ISSR-PCR扩增的影响
根据引物U815的Tm值52.9 ℃，在45～60 ℃之间设置了12个温度梯度，结果（图7）显示，退火温度对扩增影响明显，当退火温度较低时，扩增特异性较差，条带较弱且比较模糊，当退火温度升高时，电泳条带逐渐增多，清晰度也逐渐增强，当退火温度为47.5 ℃时，扩增的条带数最为清晰稳定，当退火温度大于47.5 ℃时，高分子量区域和中等分子量区域条带的扩增效率下降，直至无扩增条带，且在低分子量区域也逐渐出现弥散现象，整体电泳条带数逐渐减少，清晰度也逐渐减弱，因此，确定引物U815的最佳退火温度为47.5 ℃。
2.7循环次数对ISSR-PCR扩增的影响
PCR的循环次数对ISSR-PCR扩增也有一定的影响。本试验对循环次数设置了30、32、35、38、40次5个梯度，试验结果如图8所示。當循环次数为38次时，扩增条带最为清晰明亮其稳定。所以选择38次循环为ISSR-PCR反应的最佳循环次数。
2.8ISSR有效引物的筛选
根据绿竹优化后的最佳反应体系，对100条引物进行扩增。部分引物筛选结果如图9所示。结果显示，利用建立的体系筛选不同的引物时，大部分引物都能扩增出清晰、明亮的条带，只有少部分引物扩增出的条带数较少或不能扩增出条带。说明本试验建立的绿竹的最佳反应体系具有较高的重复性和稳定性。最终在100条引物中筛选出14条扩增条带清晰不拖尾，稳定性较好的引物，分别为UBC807、UBC810、UBC811、UBC815、UBC822、UBC841、UBC856、UBC857、UBC858、UBC859、UBC868、UBC881、UBC895、UBC899。
3讨论与结论
3.1讨论
dNTPs作为PCR扩增的底物，对ISSR-PCR扩增的影响较大，由图1可知，当dNTPs浓度很低时，DNA的合成速率很低，使得PCR产物单链化，扩增出的条带较暗且产量较少；当dNTPs浓度较高时，dNTPs容易与Mg2 相鳌合，使得游离的Mg2 浓度降低，从而影响Taq DNA聚合酶的活性，同时还有可[CM（25]能导致碱基的错误渗入，使得扩增出的产物特异性下降[16-17]。所以正确地选择好dNTPs的浓度非常重要。
Mg2 浓度对ISSR-PCR 扩增的影响非常显著，Mg2 浓度变化直接影响Taq DNA聚合酶的活性，并间接影响引物与模板DNA的双联杂交体的解链温度、引物的退火温度、扩增产物的特异性以及引物二聚体的生成[17-18]。当引物浓度很低时，引物与模板DNA特异性结合不够，扩增效率较低；而当引物浓度较高时，会增加引物与模板DNA非特异性结合，以及引物二聚体的生成，从而导致扩增效率的下降。本试验设置的7个梯度差异显著，说明Mg2 浓度对SSR-PCR 扩增的影响较大。
Taq DNA聚合酶直接影响ISSR-PCR扩增的成败，Taq DNA聚合酶的用量受到反应体系以及酶的活性等因素的影响[18-19]；当Taq DNA聚合酶的浓度较低时，扩增效率较低，条带较弱，当Taq DNA聚合酶的浓度较高时，会产生非特异性条带。所以正确地把握好Taq DNA聚合酶的用量很关键[20]。 引物浓度的高低会影响PCR扩增产物产量的多少。当引物的浓度过低时，扩增产物量很低，当引物的浓度过高时，又会形成引物二聚体和非特异性扩增，此二者也是PCR扩增的底物，它们会和靶序列竞争dNTPs和Taq DNA聚合酶，从而导致扩增效率的下降[19，21]。
模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增也有一定的影响，当模板DNA的浓度过低时，模板DNA和引物的结合率就很低，导致扩增产物较少；当模板DNA的浓度过高时，会导致扩增条带产生弥散现象，也会增加非特异性扩增。本试验中模板DNA用量从10～100 ng设置了7个梯度，结果发现，7个梯度的条带数和亮度很相似，并无明显差别。说明适宜的模板DNA浓度范围很宽，正常情况下对ISSR-PCR扩增的影响不大，这与其他学者的研究结果[22-26]一致。
退火温度对ISSR-PCR扩增的影响也较大，当退火温度较高时，会使得模板DNA与引物的亲和度下降甚至不能结合，从而使得扩增的条带数较少且较模糊；当退火温度较低时，会导致模板DNA与引物的非特异性结合[27]。在一定的温度范围内，随着退火温度的增加，扩增出的产物特异性越好，如果扩增结果相似，尽量选择其中温度较高的，一般最佳的退火温度低于引物的真实Tm值5 ℃左右[28]。本试验中筛选的最佳退火温度为47.5 ℃，引物815的真实Tm值为 52.9 ℃，两者相差5.4 ℃，在理论范围内。
循环次数也会影响ISSR-PCR扩增，当循环次数较少时，扩增的条带数较少，且清晰度较低；当循环次数过多时，又会增加非特异性扩增。本试验中当循环次数为38次时，扩增产量较多，条带清晰，且稳定性较好。
3.2结论
最终确定的绿竹ISSR-PCR最佳反应体系为：20 μL的扩增体系中，dNTPs浓度为0.2 mmol/L，Mg2 浓度为 2.0 mmol/L，Taq DNA聚合酶用量为1.0 U，引物浓度为 0.4 μmol/L，模板DNA用量為50 ng，10×PCR buffer体积为2 μL，剩余体积用灭菌ddH2O补全。扩增程序为：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性45 s，（根据引物的退火温度）复性30 s，72 ℃延伸90 s，循环38次；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。以此体系为基础进行引物筛选，在100条ISSR引物中筛选出14条扩增条带清晰、多态性较高、重复性好的引物。本研究建立了绿竹ISSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物，为绿竹的指纹图谱、遗传多样性分析、分子育种和品种鉴定等研究提供了基础。
参考文献：
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关键词：绿竹；ISSR；反应体系；扩增程序；引物筛选
中图分类号： S795.501文献标志码： A
文章编号：1002-1302（2017）15-0034-05
绿竹[Dendrocalamopsis oldhami （Munro） Keng f.]是禾本科竹亚科（Bambusoideae）绿竹属（Dendrocalamopsis）的模式种，是绿竹属中分布最广、栽培最多的竹种[1]。绿竹分布在中亚热带南部、南亚热带的北部和中部，主要分布于东南亚等国家[2]。绿竹原产我国台湾省淡水，我国主要分布在浙江南部、福建、台湾、广东、广西和海南等省区，是我国南方优良速生的笋材两用丛生竹种之一，具有较高的观赏价值、经济价值和社会价值[3]。
分子标记技术经过三代的发展，已经出现了十几种分子标记技术，目前使用比较广泛且成熟的技术有SSR、RAPD、ISSR、SRAP、RFLP、AFLP、SNP等[4-5]。ISSR技术是1994年Zietkiewicz等在SSR分子标记技术的基础上发展起来的一种新的分子标记方法，它在SSR序列的3′或5′末端加上1～4个核苷酸作为反应的引物，从而扩大DNA序列[6]。此种分子标记技术具有简单快捷易操作、DNA用量较少、稳定性较好、试验成本低等优点，且扩增出的条带多态性较好，重复性较高[7-8]。目前ISSR技术已经广泛应用于种质资源的鉴定、基因定位、遗传多样性分析、指纹图谱的构建等方面的研究，是目前使用最广泛的分子标记技术之一[9-12]。本试验采用了单因素多水平梯度方法建立绿竹ISSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物，旨在为绿竹的指纹图谱、遗传多样性分析、分子育种和品种鉴定等研究提供基础。
1材料与方法
1.1试验材料
供试的材料取自于福建省东山国有赤山林场的绿竹地理种源试验样地。对不同的植株随机选取3～5张新鲜叶片，将采集到的新鲜叶片用变色硅胶干燥的方法保存，将干燥的材料迅速带回实验室，于-80 ℃超低温冰箱保存。
1.2DNA的提取与检测
绿竹全基因组DNA的提取采用杭州博日公司Biospin植物基因组DNA提取试剂盒（Cat#BSC13S1）法，并对该种方法略作調整。提取完后用紫外分光光度计测定DNA的浓度和纯度。并用1%的琼脂糖凝胶电泳检测DNA的完整性与清晰性，看是否有降解或断裂现象，将满足试验条件的DNA稀释到20 ng/μL，并置于-20 ℃冰箱保存。
1.3引物筛选
本试验ISSR引物采用加拿大哥伦比亚大学公布的100条引物序列，引物由上海生物工程技术服务有限公司合成，选择1个DNA模板对引物进行初步筛选。从中选择条带清晰、重复性好、稳定性较高、具有多态性的引物，最后确定初选引物为U815（图1）。待最优反应体系建立后，再进行复筛，从100条引物中最终筛选出14条最适宜的引物。
[FK（W13][TPXW11.tif；S 2mm][FK）]
1.4初始PCR扩增程序及反应体系
参照文献[13-15]并作适当调整，确定初始扩增反应体系为：20 μL的扩增体系中，dNTPs浓度为 0.25 mmol/L，Mg2 浓度为2.5 mmol/L，引物浓度为 0.4 μmol/L，Taq DNA聚合酶用量为1 U，DNA用量为50 ng，10×PCR buffer体积为 2 μL，剩余体积用灭菌ddH2O补齐。初始扩增程序为：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性45 s，55 ℃退火30 s，72 ℃延伸90 s，循环35次；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。
1.5扩增程序的优化
本试验采用单因多水平梯度试验法对影响PCR反应的dNTPs浓度、Mg2 浓度、Taq DNA聚合酶用量、引物浓度、模板DNA含量、退火温度及循环次数7个主要因素进行筛选。其中dNTPs浓度、Mg2 浓度、Taq DNA聚合酶用量、引物浓度和模板DNA含量这5个因素设置7个梯度浓度水平（表1）。待最优反应体系建立后，再筛选最佳退火温度与最佳循环次数。使用预试验中扩增效果较好的引物U815对绿竹的基因组DNA进行ISSR扩增，PCR产物于1.5%的琼脂糖凝胶上电泳45 min，电压设为5 V/cm。并用紫外凝胶成像分析仪进行观察和拍照。
1.6ISSR有效引物的筛选
以优化的反应体系及扩增程序体系为基础进行引物筛选，在100条ISSR引物中筛选出14条扩增条带清晰、多态性较高、重复性好的引物。 2结果与分析
2.1dNTPs对ISSR-PCR扩增的影响
对dNTPs设置0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35 mmol/L 7个不同浓度梯度，分别进行PCR扩增，结果如图2所示。当dNTPs浓度为0.05 mmol/L时，PCR产率很低，高分子量区域条带很少，整体条带都比较暗，当dNTPs浓度为0.35 mmol/L时，扩增出的条带也较暗，当dNTPs浓度为0.20～0.30 mmol/L时，条带明亮而清晰，扩增效果较好。为降低试验成本，最终选择dNTPs浓度为0.20 mmol/L。
2.2Mg2 对ISSR-PCR扩增的影响[JP2]
不同浓度的Mg2 对绿竹ISSR-PCR扩增的影响显著（图3），过高过低都会影响扩增的结果。当Mg2 浓度低于或等于1.0 mmol/L时，高分子量区域没有条带，扩增出的条带很暗，[JP2]当Mg2 浓度高于或等于2.5 mmol/L时，扩增出的条带又会出现弥散的现象，当Mg2 的浓度为2.0 mmol/L时，扩增出的条带比较清晰、稳定。所以Mg2 最佳用量确定为2.0 mmol/L。
2.3Taq DNA聚合酶对ISSR-PCR扩增的影响
对Taq DNA聚合酶进行单因子筛选的结果如图4所示，当Taq DNA聚合酶用量为0.50 U时，扩增出的条带较弱，当Taq DNA聚合酶用量为1.00 U时，扩增出的条带比较清晰。当Taq DNA聚合酶用量高于1.00 U时，低分子量区域出现弥散现象，不易区分，当浓度过高时还易出现非特异性扩增。所以确定Taq DNA聚合酶最佳用量为1.00 U。
2.4引物浓度对ISSR-PCR扩增的影响
由图5可知，当引物浓度在0.2～0.4 mmol/L时，扩增条带较多，而且清晰且稳定；当引物浓度高于0.4 mmol/L时，高分子量区域扩增出来的条带较暗，低分子量区域扩增条带不稳定，还出现非特异性扩增；当引物浓度低于0.2 mmol/L时，低分子量区域扩增条带数较少，且整体条带比较暗。最后确定引物最佳用量为0.4 mmol/L。
2.5模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增的影响
对模板DNA用量在10～100 ng之间设置了7个梯度水平进行PCR扩增，结果如图6所示，7个梯度均能扩增出明亮的条带，且扩增出的条带数和清晰度差不多，说明模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增的影响较小。在7个梯度中，模板DNA含量为50 ng时效果最佳，确定其为最佳浓度。
2.6退火温度对ISSR-PCR扩增的影响
根据引物U815的Tm值52.9 ℃，在45～60 ℃之间设置了12个温度梯度，结果（图7）显示，退火温度对扩增影响明显，当退火温度较低时，扩增特异性较差，条带较弱且比较模糊，当退火温度升高时，电泳条带逐渐增多，清晰度也逐渐增强，当退火温度为47.5 ℃时，扩增的条带数最为清晰稳定，当退火温度大于47.5 ℃时，高分子量区域和中等分子量区域条带的扩增效率下降，直至无扩增条带，且在低分子量区域也逐渐出现弥散现象，整体电泳条带数逐渐减少，清晰度也逐渐减弱，因此，确定引物U815的最佳退火温度为47.5 ℃。
2.7循环次数对ISSR-PCR扩增的影响
PCR的循环次数对ISSR-PCR扩增也有一定的影响。本试验对循环次数设置了30、32、35、38、40次5个梯度，试验结果如图8所示。當循环次数为38次时，扩增条带最为清晰明亮其稳定。所以选择38次循环为ISSR-PCR反应的最佳循环次数。
2.8ISSR有效引物的筛选
根据绿竹优化后的最佳反应体系，对100条引物进行扩增。部分引物筛选结果如图9所示。结果显示，利用建立的体系筛选不同的引物时，大部分引物都能扩增出清晰、明亮的条带，只有少部分引物扩增出的条带数较少或不能扩增出条带。说明本试验建立的绿竹的最佳反应体系具有较高的重复性和稳定性。最终在100条引物中筛选出14条扩增条带清晰不拖尾，稳定性较好的引物，分别为UBC807、UBC810、UBC811、UBC815、UBC822、UBC841、UBC856、UBC857、UBC858、UBC859、UBC868、UBC881、UBC895、UBC899。
3讨论与结论
3.1讨论
dNTPs作为PCR扩增的底物，对ISSR-PCR扩增的影响较大，由图1可知，当dNTPs浓度很低时，DNA的合成速率很低，使得PCR产物单链化，扩增出的条带较暗且产量较少；当dNTPs浓度较高时，dNTPs容易与Mg2 相鳌合，使得游离的Mg2 浓度降低，从而影响Taq DNA聚合酶的活性，同时还有可[CM（25]能导致碱基的错误渗入，使得扩增出的产物特异性下降[16-17]。所以正确地选择好dNTPs的浓度非常重要。
Mg2 浓度对ISSR-PCR 扩增的影响非常显著，Mg2 浓度变化直接影响Taq DNA聚合酶的活性，并间接影响引物与模板DNA的双联杂交体的解链温度、引物的退火温度、扩增产物的特异性以及引物二聚体的生成[17-18]。当引物浓度很低时，引物与模板DNA特异性结合不够，扩增效率较低；而当引物浓度较高时，会增加引物与模板DNA非特异性结合，以及引物二聚体的生成，从而导致扩增效率的下降。本试验设置的7个梯度差异显著，说明Mg2 浓度对SSR-PCR 扩增的影响较大。
Taq DNA聚合酶直接影响ISSR-PCR扩增的成败，Taq DNA聚合酶的用量受到反应体系以及酶的活性等因素的影响[18-19]；当Taq DNA聚合酶的浓度较低时，扩增效率较低，条带较弱，当Taq DNA聚合酶的浓度较高时，会产生非特异性条带。所以正确地把握好Taq DNA聚合酶的用量很关键[20]。 引物浓度的高低会影响PCR扩增产物产量的多少。当引物的浓度过低时，扩增产物量很低，当引物的浓度过高时，又会形成引物二聚体和非特异性扩增，此二者也是PCR扩增的底物，它们会和靶序列竞争dNTPs和Taq DNA聚合酶，从而导致扩增效率的下降[19，21]。
模板DNA浓度对ISSR-PCR扩增也有一定的影响，当模板DNA的浓度过低时，模板DNA和引物的结合率就很低，导致扩增产物较少；当模板DNA的浓度过高时，会导致扩增条带产生弥散现象，也会增加非特异性扩增。本试验中模板DNA用量从10～100 ng设置了7个梯度，结果发现，7个梯度的条带数和亮度很相似，并无明显差别。说明适宜的模板DNA浓度范围很宽，正常情况下对ISSR-PCR扩增的影响不大，这与其他学者的研究结果[22-26]一致。
退火温度对ISSR-PCR扩增的影响也较大，当退火温度较高时，会使得模板DNA与引物的亲和度下降甚至不能结合，从而使得扩增的条带数较少且较模糊；当退火温度较低时，会导致模板DNA与引物的非特异性结合[27]。在一定的温度范围内，随着退火温度的增加，扩增出的产物特异性越好，如果扩增结果相似，尽量选择其中温度较高的，一般最佳的退火温度低于引物的真实Tm值5 ℃左右[28]。本试验中筛选的最佳退火温度为47.5 ℃，引物815的真实Tm值为 52.9 ℃，两者相差5.4 ℃，在理论范围内。
循环次数也会影响ISSR-PCR扩增，当循环次数较少时，扩增的条带数较少，且清晰度较低；当循环次数过多时，又会增加非特异性扩增。本试验中当循环次数为38次时，扩增产量较多，条带清晰，且稳定性较好。
3.2结论
最终确定的绿竹ISSR-PCR最佳反应体系为：20 μL的扩增体系中，dNTPs浓度为0.2 mmol/L，Mg2 浓度为 2.0 mmol/L，Taq DNA聚合酶用量为1.0 U，引物浓度为 0.4 μmol/L，模板DNA用量為50 ng，10×PCR buffer体积为2 μL，剩余体积用灭菌ddH2O补全。扩增程序为：94 ℃预变性5 min；94 ℃变性45 s，（根据引物的退火温度）复性30 s，72 ℃延伸90 s，循环38次；72 ℃延伸10 min，4 ℃保存。以此体系为基础进行引物筛选，在100条ISSR引物中筛选出14条扩增条带清晰、多态性较高、重复性好的引物。本研究建立了绿竹ISSR-PCR最佳反应体系并筛选出高多态性引物，为绿竹的指纹图谱、遗传多样性分析、分子育种和品种鉴定等研究提供了基础。
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