论文部分内容阅读
中图分类号：S858.33 文献标识码：C 文章编号：1673-1085（2017）03-0037-03
鹅巴氏杆菌病又名禽霍乱或者鹅出血性败血症，是由多杀性巴氏杆菌引起的一种接触性传染病。属于多种动物共患传染病，各种日龄鹅都容易患病，但以幼龄小鹅多发，特别是气温高、雨量多、气候骤变，以及饲养管理不良等应激因素作用下，常引起本病的发生与流行。
近日，山东济宁一养殖场养殖的成年鹅发病，该场共养殖4000羽，来诊时已发病3d，病鹅急性死亡，前3d死亡数量为10、30、100羽，呈现快速增加趋势，后经实验室化验，诊断为鹅巴氏杆菌感染，现将诊断治疗情况汇报如下。
1 临床症状
急性发病鹅表现突然发病死亡，之前未见任何症状，或者在吃食时，或者在行走中，突然倒地，急性死亡，多见于营养状况良好的体重偏大的鹅。也有慢性发病鹅，可见精神沉郁，食欲不振，羽毛蓬乱，时间长的可见瘫痪，消瘦、出血性贫血和腹泻，部分关节肿大、跛行。
2 解剖症状
死亡鹅尸体营养状况良好，尸僵不全，有的有少量散在的出血斑点，眼睛流泪、结膜潮红（图1），气管环内有大量粘液（图2），肺门淋巴结肿大出血（图3），肝脏表面大量针尖大小的白色坏死灶（图4），脾脏水肿出血（图5），胰腺表面有白色坏死灶（图6），心包积液（图7），心冠脂肪出血（图8），心肌条状坏死（图9），心肌内膜轻微出血（图10），卵泡出血（图11），输卵管内有大量干酪样物（图12）。
3 实验室诊断
3.1 镜检 取肝脏在载玻片上触片，火焰固定，瑞氏染色，显微镜下可见两极浓染的小杆菌。
3.2 细菌分离 解剖后无菌取心血、肝脏涂布于麦康凯平板、普通营养琼脂平板、鲜血平板，37℃温箱培养过夜，见麦康凯和普通营养琼脂平板未长菌，鲜血平板可见透明、光滑露珠样小菌落。
3.3 生化试验 分离菌接种于血清肉汤培养基，培养24h后，各取0.2ml接种微量生化反应管，接种24～48h观察结果，可见触酶、氧化酶反应阳性，吲哚试验阳性，脲酶实验阴性，分解葡萄糖、蔗糖、果糖、甘露醇，不分解乳糖、麦芽糖、山梨醇。
3.4 PCR 取病鹅肺、肝、脾研磨，离心取上清，进行PCR基因扩增，使用流感通用引物检测，检测结果为阴性。取血清肉汤纯培养物对分离菌进行16S rRNA扩增，确诊为禽多杀性巴氏杆菌。
3.5 动物试验 取血清肉汤培养菌，100倍稀释后，注射18～22g小白鼠5只，每只腹腔0.5ml，注射后2～3d全部死亡，对照组观察7d，全部正常。
3.6 药敏试验 使用药敏纸片法，对分离菌进行药敏试验，结果见分离的巴氏杆菌对阿莫西林、环丙沙星、氧氟沙星、恩诺沙星、强力霉素高敏，头孢噻呋、头孢噻肟、阿奇霉素、氟苯尼考中度敏感，阿米卡星、粘杆菌素、红霉素不敏感。
根据临床症状、解剖症状和实验室检测结果，确诊为鹅巴氏杆菌病。
4 防治
4.1 预防 对死亡鹅全部挑出，进行深埋或者焚烧，无害化處理；对发病的不精神、不吃食的患鹅全部集中隔离，单独治疗，特别不好的按照死亡处理，防止感染扩大。养殖场全面清理卫生，清洗饮水、饮食器具，聚维酮碘1：800带禽喷雾消毒。
4.2 治疗 使用10%阿莫西林全群拌料，100g拌料200kg，连续使用5d；发病鹅注射恩诺沙星，按照5mg/kg体重，每天2次，连续使用3～5d。
采取以上措施，治疗2d后死亡开始下降，4d后死亡明显减少，基本停止死亡，一周后询问全部恢复正常。
5 小结
5.1 巴氏杆菌属于环境致病菌，在应激条件下容易发病，饲料改变、高温潮湿、天气变化、卫生不佳都是严重的应激因素，鹅机体抵抗力低，处于亚健康状态都会促进巴氏杆菌病的发生，因此预防该病主要是加强管理，保证饲料饮水安全，搞好卫生，减少应激。
5.2 巴氏杆菌发病比较急，发病率高，死亡率高，在发病后必须及时诊断、及时采取消毒措施，对死亡的病鹅要及时消毒处理，环境消毒要及时进行，诊断后进行药敏试验，根据结果，选择敏感药物准确投药，只有这样才能更好地减少死亡。
5.3 巴氏杆菌对营养要求比较高，死亡鹅做细菌分离时必须及时进行，死亡过夜的鹅很难再分离到细菌，细菌分离时必须加血液或者血清，巴氏杆菌在普通的营养琼脂平板和麦康凯平板上不生长，因此细菌分离时必须准备营养高的培养基。
5.4 从加强管理和提高鹅群机体抵抗力方面预防巴氏杆菌病，有条件的养殖场可以使用禽巴氏杆菌的疫苗，但是巴氏杆菌抗原结构比较复杂，疫苗免疫效果不理想，目前商品化的疫苗只有对同型毒株攻击有效果，免疫效果好的新型巴氏杆菌疫苗有待开发。
鹅巴氏杆菌病又名禽霍乱或者鹅出血性败血症，是由多杀性巴氏杆菌引起的一种接触性传染病。属于多种动物共患传染病，各种日龄鹅都容易患病，但以幼龄小鹅多发，特别是气温高、雨量多、气候骤变，以及饲养管理不良等应激因素作用下，常引起本病的发生与流行。
近日，山东济宁一养殖场养殖的成年鹅发病，该场共养殖4000羽，来诊时已发病3d，病鹅急性死亡，前3d死亡数量为10、30、100羽，呈现快速增加趋势，后经实验室化验，诊断为鹅巴氏杆菌感染，现将诊断治疗情况汇报如下。
1 临床症状
急性发病鹅表现突然发病死亡，之前未见任何症状，或者在吃食时，或者在行走中，突然倒地，急性死亡，多见于营养状况良好的体重偏大的鹅。也有慢性发病鹅，可见精神沉郁，食欲不振，羽毛蓬乱，时间长的可见瘫痪，消瘦、出血性贫血和腹泻，部分关节肿大、跛行。
2 解剖症状
死亡鹅尸体营养状况良好，尸僵不全，有的有少量散在的出血斑点，眼睛流泪、结膜潮红（图1），气管环内有大量粘液（图2），肺门淋巴结肿大出血（图3），肝脏表面大量针尖大小的白色坏死灶（图4），脾脏水肿出血（图5），胰腺表面有白色坏死灶（图6），心包积液（图7），心冠脂肪出血（图8），心肌条状坏死（图9），心肌内膜轻微出血（图10），卵泡出血（图11），输卵管内有大量干酪样物（图12）。
3 实验室诊断
3.1 镜检 取肝脏在载玻片上触片，火焰固定，瑞氏染色，显微镜下可见两极浓染的小杆菌。
3.2 细菌分离 解剖后无菌取心血、肝脏涂布于麦康凯平板、普通营养琼脂平板、鲜血平板，37℃温箱培养过夜，见麦康凯和普通营养琼脂平板未长菌，鲜血平板可见透明、光滑露珠样小菌落。
3.3 生化试验 分离菌接种于血清肉汤培养基，培养24h后，各取0.2ml接种微量生化反应管，接种24～48h观察结果，可见触酶、氧化酶反应阳性，吲哚试验阳性，脲酶实验阴性，分解葡萄糖、蔗糖、果糖、甘露醇，不分解乳糖、麦芽糖、山梨醇。
3.4 PCR 取病鹅肺、肝、脾研磨，离心取上清，进行PCR基因扩增，使用流感通用引物检测，检测结果为阴性。取血清肉汤纯培养物对分离菌进行16S rRNA扩增，确诊为禽多杀性巴氏杆菌。
3.5 动物试验 取血清肉汤培养菌，100倍稀释后，注射18～22g小白鼠5只，每只腹腔0.5ml，注射后2～3d全部死亡，对照组观察7d，全部正常。
3.6 药敏试验 使用药敏纸片法，对分离菌进行药敏试验，结果见分离的巴氏杆菌对阿莫西林、环丙沙星、氧氟沙星、恩诺沙星、强力霉素高敏，头孢噻呋、头孢噻肟、阿奇霉素、氟苯尼考中度敏感，阿米卡星、粘杆菌素、红霉素不敏感。
根据临床症状、解剖症状和实验室检测结果，确诊为鹅巴氏杆菌病。
4 防治
4.1 预防 对死亡鹅全部挑出，进行深埋或者焚烧，无害化處理；对发病的不精神、不吃食的患鹅全部集中隔离，单独治疗，特别不好的按照死亡处理，防止感染扩大。养殖场全面清理卫生，清洗饮水、饮食器具，聚维酮碘1：800带禽喷雾消毒。
4.2 治疗 使用10%阿莫西林全群拌料，100g拌料200kg，连续使用5d；发病鹅注射恩诺沙星，按照5mg/kg体重，每天2次，连续使用3～5d。
采取以上措施，治疗2d后死亡开始下降，4d后死亡明显减少，基本停止死亡，一周后询问全部恢复正常。
5 小结
5.1 巴氏杆菌属于环境致病菌，在应激条件下容易发病，饲料改变、高温潮湿、天气变化、卫生不佳都是严重的应激因素，鹅机体抵抗力低，处于亚健康状态都会促进巴氏杆菌病的发生，因此预防该病主要是加强管理，保证饲料饮水安全，搞好卫生，减少应激。
5.2 巴氏杆菌发病比较急，发病率高，死亡率高，在发病后必须及时诊断、及时采取消毒措施，对死亡的病鹅要及时消毒处理，环境消毒要及时进行，诊断后进行药敏试验，根据结果，选择敏感药物准确投药，只有这样才能更好地减少死亡。
5.3 巴氏杆菌对营养要求比较高，死亡鹅做细菌分离时必须及时进行，死亡过夜的鹅很难再分离到细菌，细菌分离时必须加血液或者血清，巴氏杆菌在普通的营养琼脂平板和麦康凯平板上不生长，因此细菌分离时必须准备营养高的培养基。
5.4 从加强管理和提高鹅群机体抵抗力方面预防巴氏杆菌病，有条件的养殖场可以使用禽巴氏杆菌的疫苗，但是巴氏杆菌抗原结构比较复杂，疫苗免疫效果不理想，目前商品化的疫苗只有对同型毒株攻击有效果，免疫效果好的新型巴氏杆菌疫苗有待开发。