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摘要：目的：探讨分析我院检验科血检不合格的发生率以及相关因素，采取有效地质控措施提高数据分析的质量，为临床工作给予参考和借鉴。
方法：以我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样为研究对象，以一年时间为单位分为两组，实验组（2012年6月1日-2013年6月1日）及对照组（2011年6月1日-2012年6月1日），每组选择10000份。分析统计两组样品的不合格情况以及原因和需要采取的必要措施。
结果：实验组与对照组，实验组为99.59对照组为99.28不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。
结论：我院分析了血检不合格的原因并采取相应的措施，如制作SOP文件，使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。
关键词：检验科血检不合格标本因素质控措施分析
Doi：10.3969/j.issn.1671-8801.2014.01.537
【中图分类号】R-1【文献标识码】B【文章编号】1671-8801（2014）01-0364-01
临床上，血液检查对疾病诊断有着重要的参考价值，但以下因素严重影响了血检在临床上的应用：①如果标本质量有问题，即使再先进的分析仪器和丰富的人为经验都无法获取真实的数据；②血检要求多部门配合、多环节贯穿，过程中干扰因素众多[1]。本文总结分析了我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样标本合格情况，比较两年内血检不合格率以及原因，分析采取的措施的效果。结果表明，实验组与对照组，不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。我院分析了血检不合格的原因并采取相应的措施，如制作SOP文件，使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。现报告如下：
1资料和方法
1.1资料：以我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样为研究对象，所有标本均由专业人员进行采集，护送。
1.2方法：以一年时间为单位分为两组，实验组（2012年6月1日-2013年6月1日）及对照组（2011年6月1日-2012年6月1日），每组选择10000份分析统计两组样品的不合格情况以及原因和必要的措施。
1.3统计学的方法。患者临床治疗的数据使用SPSS18.0软件进行统计、分析，对离散资料采用卡方分析，P<0.05为差异有统计学意义。
2结果
2.1不合格原因。血检不合格原因依次为：标本溶血，标本凝固，标本受污染，标本量少，人为失误，以及其他情况。
2.2比较结果。实验组与对照组，实验组为99.59对照组为99.28不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。两组具体结果如下表1：
2011年，我院在统计检验科血检不合格标本后作出的一定的努力，如培训医务人员等，效果明显。
3讨论
针对血检不合格，我院不断改进措施，提高合格率。主要措施如下：
3.1制定SOP文件。SOP，即标准化操作文件，将血检的标准操作步骤和要求以统一的格式描述出来，用来指导和规范日常的工作。我们要求，加强责任心严格执行，检查监督，提高护理人员采集血液标本的技术，严格操作规程，正确采集血液标本，减少和杜绝不合格标本[2]。
3.2样本的验收。检验人员在验收和检查样本时，要做到以下几点：①观察样本的采集量是否符合检验要求；②确定血液标本不能出现凝块；③对标本进行离心后，应观察有无脂血、溶血等情况；④如果样本不符合要求，要及时与临床医护人员取得联系，解释情况并要求重送标本[2，3]。
3.3人员间协作。检验科应该主动和临床定期进行沟通，通过讲课的方式把新开展项目标本留取事项向护士介绍，并对临床上留取标本中存在的问题进行反馈，这样就可以减少不合格标本的发生[4]。
3.4其他。其他措施，包括定期检测仪器的情况等，更新换代，保证仪器的准确性，充分发挥仪器在血检中的作用。
综上，笔者总结分析了我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样标本合格情况，比较两年内血检不合格率以及原因，分析采取措施的效果。结果表明，实验组与对照组，不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。笔者认为，建立标本采集的标准操作规程，加强样本的验收工作，保证医疗、护理和检验三方的良好沟通，可以使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。
参考文献
[1]徐国民.26例血检不合格标本因素分析及质控措施[J].中国卫生产业，2012，9（21）：64-64
[2]刘志华，李丹华，彭祥云.临床不合格血液标本原因分析和持续改进措施[J].实验与检验医学，2013，31（5）：476-477
[3]H.Zhang，A.M.Ackermann，G.A.Gusarova，D.Lowe，X.Feng，U.G.Kopsombut，R.H.Costa，M.Gannon.The Foxm1 transcription factor is required to maintain pancreatic beta cell mass.Molecular Endocrinology.2006（06）：336-337
[4]赖晓霏，张莉萍.2008～ 2010 年某院检验科不合格标本情况分析及质量控制[J].重庆医学，2010，39（024）：3365-3366
方法：以我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样为研究对象，以一年时间为单位分为两组，实验组（2012年6月1日-2013年6月1日）及对照组（2011年6月1日-2012年6月1日），每组选择10000份。分析统计两组样品的不合格情况以及原因和需要采取的必要措施。
结果：实验组与对照组，实验组为99.59对照组为99.28不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。
结论：我院分析了血检不合格的原因并采取相应的措施，如制作SOP文件，使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。
关键词：检验科血检不合格标本因素质控措施分析
Doi：10.3969/j.issn.1671-8801.2014.01.537
【中图分类号】R-1【文献标识码】B【文章编号】1671-8801（2014）01-0364-01
临床上，血液检查对疾病诊断有着重要的参考价值，但以下因素严重影响了血检在临床上的应用：①如果标本质量有问题，即使再先进的分析仪器和丰富的人为经验都无法获取真实的数据；②血检要求多部门配合、多环节贯穿，过程中干扰因素众多[1]。本文总结分析了我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样标本合格情况，比较两年内血检不合格率以及原因，分析采取的措施的效果。结果表明，实验组与对照组，不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。我院分析了血检不合格的原因并采取相应的措施，如制作SOP文件，使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。现报告如下：
1资料和方法
1.1资料：以我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样为研究对象，所有标本均由专业人员进行采集，护送。
1.2方法：以一年时间为单位分为两组，实验组（2012年6月1日-2013年6月1日）及对照组（2011年6月1日-2012年6月1日），每组选择10000份分析统计两组样品的不合格情况以及原因和必要的措施。
1.3统计学的方法。患者临床治疗的数据使用SPSS18.0软件进行统计、分析，对离散资料采用卡方分析，P<0.05为差异有统计学意义。
2结果
2.1不合格原因。血检不合格原因依次为：标本溶血，标本凝固，标本受污染，标本量少，人为失误，以及其他情况。
2.2比较结果。实验组与对照组，实验组为99.59对照组为99.28不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。两组具体结果如下表1：
2011年，我院在统计检验科血检不合格标本后作出的一定的努力，如培训医务人员等，效果明显。
3讨论
针对血检不合格，我院不断改进措施，提高合格率。主要措施如下：
3.1制定SOP文件。SOP，即标准化操作文件，将血检的标准操作步骤和要求以统一的格式描述出来，用来指导和规范日常的工作。我们要求，加强责任心严格执行，检查监督，提高护理人员采集血液标本的技术，严格操作规程，正确采集血液标本，减少和杜绝不合格标本[2]。
3.2样本的验收。检验人员在验收和检查样本时，要做到以下几点：①观察样本的采集量是否符合检验要求；②确定血液标本不能出现凝块；③对标本进行离心后，应观察有无脂血、溶血等情况；④如果样本不符合要求，要及时与临床医护人员取得联系，解释情况并要求重送标本[2，3]。
3.3人员间协作。检验科应该主动和临床定期进行沟通，通过讲课的方式把新开展项目标本留取事项向护士介绍，并对临床上留取标本中存在的问题进行反馈，这样就可以减少不合格标本的发生[4]。
3.4其他。其他措施，包括定期检测仪器的情况等，更新换代，保证仪器的准确性，充分发挥仪器在血检中的作用。
综上，笔者总结分析了我院2011年06月01日到2013年06月01日对患者采集的血样标本合格情况，比较两年内血检不合格率以及原因，分析采取措施的效果。结果表明，实验组与对照组，不合格率相比差异性显著（P<0.05），有统计学意义。笔者认为，建立标本采集的标准操作规程，加强样本的验收工作，保证医疗、护理和检验三方的良好沟通，可以使得质量控制明显改善，检验结果的准确性得到极大的提高。
参考文献
[1]徐国民.26例血检不合格标本因素分析及质控措施[J].中国卫生产业，2012，9（21）：64-64
[2]刘志华，李丹华，彭祥云.临床不合格血液标本原因分析和持续改进措施[J].实验与检验医学，2013，31（5）：476-477
[3]H.Zhang，A.M.Ackermann，G.A.Gusarova，D.Lowe，X.Feng，U.G.Kopsombut，R.H.Costa，M.Gannon.The Foxm1 transcription factor is required to maintain pancreatic beta cell mass.Molecular Endocrinology.2006（06）：336-337
[4]赖晓霏，张莉萍.2008～ 2010 年某院检验科不合格标本情况分析及质量控制[J].重庆医学，2010，39（024）：3365-3366