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从红曲样品中分离筛选得到一株Monacolin K产率较高（高效液相色谱法，HPLC）而桔霉素产率为0.11ng／g（酶联免疫吸附法，ELISA）的红曲霉菌株，编号为M12。以之为出发菌株，通过诱变筛选，获得一株Monacolin K产率有明显提高而桔霉素产率仅为0.13ng／g（ELISA）的突变株，编号为M12-69。对该突变株的液态和固态发酵条件进行初步优化研究。具体包括以下五个方面的内容： 第一，从红曲样品分离纯化获得红曲霉菌株25株，以这些菌株和从中科院购得4株红曲霉菌株，共29株作为菌种，制备得29个（固态）红曲样品。 第二，以上述29个红曲样品为实验材料，对红曲中桔霉素的（单向）薄层层析（STLC）条件进行了研究。结果显示，以甲苯：乙酸乙酯：甲酸（6：3：1）为展开剂，桔霉素的分离效果较好。按照该方法，对上述29个红曲样品中的桔霉素进行了分析测定，筛选得到6个桔霉素含量低于0.2μg／g的红曲样品及其相应菌株。 以上述6个低桔霉素含量的红曲样品为材料，对Monacolin K的双向薄层层析（DTLC）条件进行了研究。结果显示，以正己烷：乙酸乙酯：无水乙醚：甲酸（20：1：5：0.5）为第一展开剂，正己烷：氯仿：无水乙醚（30：1：5）为第二展开剂，Monacolin K的分离效果较好。以该方法对6个样品中的Monacolin K进行了分析测定，得到1个Monacolin K含量最高为225μg／g（DTLC）的红曲样品及其相应菌株。 为了更准确地判断该红曲样品桔霉素和Monacolin K含量，采用ELISA对桔霉素进行了分析测定，结果显示，该样品中桔霉素含量仅为0.11ng／g。同时，采用HPLC对Monacolin K进行了分析测定，Monacolin K含量为213μg／g。将该样品对应的菌株编号为M12。 通过上述研究，获得1株固态发酵产物Monacolin K产率为213μg／g（HPLC），桔霉素含量为0.11ng／g（ELISA）的红曲霉菌株M12。 第三，以M12为诱变出发菌株，采用紫外线、60Co—γ射线、硫酸二乙酯为诱变剂对其进行处理。突变株的桔霉素产率采用STLC分析，MonacolinK采用DTLC分析，最后获得一株桔霉素产率低且MonacofinK产率有明显提高的突变株M12一69。以M12一69为菌种制备（固态）红曲，其MonacolinK产率达2143协9/9（HPLC），较出发菌株M12提高906.10%，而桔霉素产率仅为0.13 ng/g （ELISA），和M12相比，变化不大。 第四，根据Hawkswo曲和Pitt关于红曲霉的分类方法，对M12及M 12一69的培养物进行了形态观察及分类鉴定。观察发现，M12一69与M12相比有较大的形态差别，但二者均为丛毛红曲菌（物nascusPl’lo拟5 Sato）。 第五，对红曲霉突变菌株M12一69产MonacofinK的液态和固态发酵条件进行了初步优化研究。 首先，研究了碳源、氮源、起始pH值、培养温度及时间等因素对M12一69液态发酵的影响。结果显示，当培养基配方为:4%葡萄糖，0.4%谷氨酸钠，0.3%蛋白膝，0.3%硝酸按，0.5%磷酸二氢钾，豆芽汁配制，起始pH值为5;培养条件为:25℃，15or/min，摇床培养12天时，MonacolinK产率达275“g/而（D几C），桔霉素产率为0.18n留ml（ELIsA）。在上述培养基和培养条件下，以14L模拟发酵罐进行扩大培养，接种量为10%（v/v），通气量为6L/min，转速为200r/min，25℃，培养7天时，MonacolinK产率达280协9/1111（DTLC），此时桔霉素产率为o.20ng‘ml（ELISA）。 然后，研究了大米吸水量、培养温度及时间等因素对M12一69固态发酵的影响。当固态发酵条件为:大米1009，鼓皮19，灭菌，趁热打散冷却后，添加20ml液体培养基，摇匀，接种，25oC，培养18天时，MonaeolinK产率达2400;9/9（DTLC），桔霉素产率仅为。.13n留g（ELISA），与国内外报道的MonacolinK高产菌株相比，以M12一69制备的固态红曲中MonacolinK含量与报道的最高水平持平: