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目的：研究125Ⅰ标记CD28单克隆抗体2F5的方法及标记物125Ⅰ-2F5的生物学活性及体外稳定性，探讨125Ⅰ-2F5对特定肿瘤放射性免疫显像的可行性。
方法：1.采用Iodogen法125Ⅰ标记单抗2F5，测定t25Ⅰ-2F5的标记率；纸层析法测定125Ⅰ-2F5的放射化学纯度；将125Ⅰ-2F5与不同细胞数的小鼠淋巴瘤细胞转人CD28基因细胞株CD28-T细胞悬液置于37℃细胞培养箱中反应，测定标记物的免疫活性；将标记物按1:20的比例分别加入到生理盐水和新鲜人血清中，另取标记物不稀释作为对照，分别置于37℃、4℃条件下，观察放置0h、2h、4h、24h、48h后标记物的放化纯度，以了解其稳定性。2.自正常裸鼠尾静脉注射1.11-1.67 MBq/100μL(30-45μCi/100μL)125Ⅰ-2F5后，不同时间点断颈处死小鼠，同时取血液及各主要组织器官标本，计算各组织器官不同时间点的每克组织百分注射剂量率(％ID/g)；同样方法，计算荷淋巴瘤裸鼠模型血液、肿瘤及各组织器官16h、24h、48h的每克组织百分注射剂量率(％ID/g)和肿瘤/非肿瘤(T/NT)比值。3.选用4～6周龄雌性BALB/C裸鼠，建立荷淋巴瘤和非小细胞肺癌裸鼠模型，尾静脉注射11.1-14.8MBq/200μL(300-400μCi/200μL)125Ⅰ-2F5并用SPECT进行放射免疫显像，显像前3d开始用1％碘化钾溶液200μ L/d灌胃封闭甲状腺，采用ROI(Region of interest)技术在不同时相的显像图上勾画肿瘤轮廓，并计算瘤体与对侧相同部位的T/B比值。
结果：1.125Ⅰ-2F5标记率为(68.12±6.19)％，纯化后纸层析法测得即刻125Ⅰ-2F5的放射化学纯度为(97.67±0.59)％，比活度为756.13 MBq/mg；125Ⅰ-2F5与CD28-T细胞的结合率随细胞数的增加而增加，当细胞数为1×107个时结合率达到最高水平，此时总细胞结合率为(37.31±0.85)％，特异性细胞结合率为(34.44±0.93)％；标记物加入到不同稀释液中后，在4℃条件下，对照组24h后、生理盐水组4h后放化纯仍大于90％；在37℃条件下，对照组24h后、生理盐水组4h后放化纯仍大于90％；人血清组48h后的放化纯为(74.59±2.69)％；2.125Ⅰ-2F5在正常裸鼠和荷淋巴瘤裸鼠体内主要通过肾脏和肝脏代谢；注射125Ⅰ-2F5后，肿瘤组织的放射性分布及肿瘤组织与各组织器官的T/NT比值随时间延长逐渐上升，至24h达到最大值；3.注射125Ⅰ-2F5后，荷淋巴瘤裸鼠放射免疫显像肿瘤清晰可见；荷非小细胞肺癌裸鼠模型的瘤体组织未见明显放射性浓聚。
结论：1.Iodogen法125Ⅰ标记单抗2F5的标记率和放化纯高，方法简便，标记物的稳定性好且保持较好的免疫活性。2.SPECT进行放射免疫显像，可获得优质的淋巴瘤放射免疫图像。3.本研究为不同放射性碘(123Ⅰ、125Ⅰ、131Ⅰ)标记单抗2F5以及建立淋巴瘤的放射免疫显像和靶向治疗方法提供实验依据。