香蕉CRISPR/Cas9系统的优化及香蕉种质的创制

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香蕉大多数栽培品种为三倍体,育性极低,没有种子,通过传统的杂交育种培育优良香蕉新品种难度较大,通过诱变育种、突变体筛选选育新品种具有一定的盲目性且周期较长。香蕉A、B基因组测序的完成及CRISPR/Cas9基因编辑技术的应用与发展为香蕉分子育种提供了新的途径。目前,香蕉基因编辑种质主要通过根癌农杆菌介导的遗传转化获得,但存在转入的外源DNA无法通过后代遗传分离而去除和编辑效率较低这两大问题,阻碍了CRISPR/Cas9基因编辑技术在香蕉分子育种上的应用。本研究以主栽香蕉品种‘巴西蕉’(Musa spp.Cavendish;AAA Group cv.‘Baxi’)胚性细胞悬浮系为材料,利用CRISPR/Cas9基因编辑技术创制了香蕉种质,分析了突变模式和相关分子机理,在此基础上对香蕉CRISPR/Cas9基因编辑技术体系进行了优化,主要结果如下:(1)建立了香蕉原生质体瞬时转化体系。利用PEG介导,结合深度测序技术,在香蕉中建立了原生质体瞬时转换体系,利用此体系可以检测各个sg RNA的活性及编辑效率。并利用此体系转化Cas9系统、RNP系统及Cas12a系统,深度测序结果表明这三个系统均能在香蕉原生质体中正常工作。(2)优化了香蕉CRISPR/Cas9基因编辑体系。第一,优化了香蕉Cas9蛋白密码子,提高了Cas9蛋白的表达;第二,筛选到香蕉内源sg RNA启动子,提高了sg RNA的表达。通过与Os U6a BLAST比对,在香蕉中得到3个同源性较高的序列Ma U6a、Ma U6b和Ma U6c,分别在这3个启动子区域截取300bp、400bp、700bp、1000bp长度序列,构建到p GreenⅡ0800-LUC上,然后进行双荧光素酶实验,结果表明Ma U6c+700bp的活性最高。以香蕉PDS为靶基因,以优化了密码子的Cas9蛋白和Ma U6c 700内源启动子构建载体,进行原生质体转化后深度测序,结果表明优化后的香蕉CRISPR/Cas9基因组编辑载体,总体编辑效率提高了4倍。(3)建立了香蕉基因枪遗传转化体系。参照小麦基因枪打靶体系,对打靶体系进行了优化,构建了23个不同载体,其中14个载体有融合GFP,5个载体带有筛选标记,结合深度测序,检测到基因枪打靶效率最高的为仅为0.26%。同时以PDS基因为靶标基因,利用基因枪投送DNA或RNP至香蕉悬浮细胞,利用香蕉遗传转化体系,获得了再生植株。(4)利用香蕉CRISPR/Cas9基因编辑系统同时编辑了Ma MADS1和Ma MADS2基因,通过香蕉遗传转化体系,获得了2个突变体株系,创制了香蕉种质。对这2个株系进行单克隆测序,结果显示Ma MADS1基因靶点indel类型主要为删除,最多达到了13个碱基的删除,Ma MADS2基因靶点indel类型主要为插入,分别是插入了1个碱基。同时进行深度测序,测序结果发现突变效率最高的为82.235%。(5)初步解析了香蕉基因编辑半矮化突变体的分子机理。对实验室保存的半矮化香蕉突变体Ma SD1#1和Ma SD1#2株系进行单克隆测序和深度测序,单克隆测序结果表明靶点2位置发生了碱基插入或缺失,深度测序结果发现靶点1突变效率最高的为1.13%,靶点2的突变效率几乎为100%。对突变体Ma SD1#1和Ma SD1#2株系进行蛋白质组学分析,结果发现2个株系差异蛋白显著,下调蛋白多于上调蛋白,且大多与光合作用相关蛋白显著下调。对这2个株系赤霉素水平进行分析,结果显示GA20ox基因表达受阻。综合分析结果表明,Ma04_g15900基因可能在调控香蕉株高上起主要作用。
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