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目的:探讨血管紧张素-（1-7） [Ang-（1-7）]对转化生长因-β1（TGF-β1）和结缔组织生长因子（CTGF）诱导大鼠肾小球系膜细胞（GMCs）细胞增殖和细胞外基质分泌的影响。方法:将GMCs传代培养后按以下分组加入不同干预因素,Ang-（1-7）终浓度为10-6mol/L,TGF-β1终浓度为5ng/ml,CTGF为终浓度5ng/ml。①对照组:GMCs培养液中不加入干预因素;②Ang-（1-7）组:GMCs培养液中加入Ang-（1-7）;③TGF-β1组:GMCs培养液中加入TGF-β1;④TGF-β1+Ang- （1-7）组:GMCs培养液中加入TGF-β1及Ang-（1-7）;⑤CTGF组:GMCs培养液中加入CTGF;⑥CTGF +Ang- （1-7）组:GMCs培养液中加入CTGF及Ang-（1-7）。（1）采用WST-1法检测肾小球系膜细胞数目:传代培养的GMCs用无血清的DMEM培养液制成5×104/ml的细胞悬液,接种于96孔板中,每孔加入细胞悬液100μl,无血清培养24h后按上述分组加入药物,干预24h后,每孔加入WST-1 10μl,37℃继续孵育4h,在酶联免疫检测仪450nm波长处测定吸光光度（OD）值,OD值越大代表细胞数目越多;（2）RT-PCR法检测层粘蛋白（LN）mRNA和Ⅳ型胶原（ColⅣ） mRNA表达:实验分组及药物干预浓度同上,药物干预48h后,按RNA提取试剂盒说明书提取各组细胞总RNA,逆转录为cDNA后进行PCR反应。PCR反应结束后取产物15μl于1.5%琼脂糖凝胶中以0.5×TBE作为电泳缓冲液,100V电压电泳40min,用凝胶成像扫描分析系统,测定各组目的基因与内参基因的光密度比值。（3）放射免疫法检测细胞培养上清液中LN和ColⅣ的含量,观察GMCs细胞外基质分泌情况:实验分组及药物干预浓度同上,按实验分组加入不同药物干预48h后,用放射免疫法检测细胞培养上清液中LN和ColⅣ的含量。实验结果用均数±标准差（ x±s）表示,多组均数间比较采用单因素方差分析,以P<0.05表示有统计学意义。采用SPSS14.0软件进行统计学分析。结果:（1）TGF-β1和CTGF明显诱导GMCs增殖（P<0.05）;Ang-（1-7）可明显抑制基础状态下的GMCs增殖（P<0.05）;同时Ang-（1-7）对TGF-β1和CTGF诱导的系膜细胞增殖有显著的抑制作用（P<0.05）;（2）检测LNmRNA、ColⅣmRNA表达:与对照组相比,TGF-β1和CTGF可明显上调GMCs LNmRNA、ColⅣmRNA表达（P<0.05）;Ang-（1-7）明显下调基础状态下GMCs LNmRNA、ColⅣmRNA的表达（P <0.05） ; Ang-（1-7）对TGF-β1和CTGF诱导的LNmRNA、ColⅣmRNA的表达均有明显的抑制作用（P<0.05）。（3）细胞外基质成分层粘蛋白（LN）和Ⅳ型胶原（ColⅣ）的含量:细胞上清液细胞外基质成分LN、ColⅣ含量在TGF-β1组较对照组明显升高（P<0.05）,Ang-（1-7）组上述指标均低于对照组（P<0.05）,同时Ang-（1-7）对TGF-β1和CTGF的促细胞外基质LN、ColⅣ分泌也有显著的抑制作用（P<0.05）。结论:①Ang-（1-7）能抑制基础状态下及TGF-β1、CTGF诱导的GMCs增殖。②Ang-（1-7）可下调基础状态下及TGF-β1、CTGF诱导的GMCs LN、ColⅣmRNA的表达。③Ang-（1-7）减少基础状态下及TGF-β1、CTGF诱导的GMCs细胞外基质LN、ColⅣ的分泌。