目的：通过建立羊水栓塞动物模型，分析外周血液动力学改变、测定血中IL-6、IL-8含量的变化，进一步探索羊水栓塞的发病机制。方法：1．构建羊水栓塞的大鼠模型正常怀孕大鼠30只，重300g~500g，胎龄20~25d。随机分为3组：对照组（生理盐水组）、实验组1（羊水原液组）、实验组2（羊水胎粪液组），每组为10只。待麻醉生效后，大鼠行子宫次全切除术后，关腹。分离孕鼠左颈总动脉，从左颈总动脉插管，并将其接通三通管连接于二通道生理记录仪上，测出连续的血液动力学指标。三组经腹腔静脉分别注入生理盐水、羊水原液、羊水胎粪混合离心上清液，分别于注射前、注射后60min由左颈总动脉取血，量1ml（若在观察过程中大鼠出现死亡立即取血），将血液离心10min（3000r/min），取其上清液放置于-20°C恒温冰箱中保存备用，剪开胸腔，取孕鼠右肺组织留做病理学检查。2．羊水胎粪上清液的制备打开胎鼠腹壁，取出胎鼠大肠，用注射器抽取羊水冲洗胎鼠肠腔（或将胎粪轻轻挤压出来），用匀浆器磨碎，配置成羊水中混有1%~7%胎粪的羊水胎粪混合悬液，然后离心10min （3000r/min），留取上清液。3.IL-6的检测方法IL-6的检测方法：用酶联免疫吸附实验（ELISA）对IL-6进行检测。将已知IL-6浓度的标准品、未知浓度的样品加入微孔酶标板内进行检测。先将IL-6和生物素标记的抗体同时温育。洗涤后，加入亲和素标记过的HRP。再经过温育和洗涤，去除未结合的酶结合物，然后加入底物A、B，和酶结合物同时作用，产生颜色。颜色的深浅和样品中IL-6的浓度呈比例关系。4.IL-8的检测方法IL-8的检测方法：用酶联免疫吸附实验（ELISA）对IL-8进行检。将已知IL-8浓度的标准品、未知浓度的样品加入微孔酶标板内进行检测。先将IL-8和生物素标记的抗体同时温育。洗涤后，加入亲和素标记过的HRP。再经过温育和洗涤，去除未结合的酶结合物，然后加入底物A、B，和酶结合物同时作用。产生颜色。颜色的深浅和样品中IL-8的浓度呈比例关系。所有数据使用SPSS18.0处理，组内采用t检验，组间比较用多个样本均数间的两两比较。P<0.05有统计学意义。结果：1.大鼠羊水栓塞模型建立成功，实验组1、实验组2孕鼠临床表现比较严重，实验组1孕鼠60min内无死亡，实验组2孕鼠60min内1只死亡。三组孕鼠外周血液动力学结果：对照组血液动力学指标有一过性改变，无统计学意义（P>0.05），实验组1、实验组2与对照组动脉收缩压、舒张压及平均动脉压相比有明显下降（P<0.05），以注入羊水后10min最为明显，30min至60min维持低水平，未恢复正常，实验组2中有一只孕鼠出现平均动脉血压持续性下降约至20mmHg发展成心衰，实验组1与实验组2之间差异不明显，无统计学意义（P>0.05），三组孕鼠心率改变差异无统计学意义（P>0.05）。2.IL-6浓度：对照组注射前(20.38±7.73)μg/ml，注射后(19.47±6.46)μg/ml；实验组1注射前(21.41±6.47)μg/ml，注射后(30.74±5.61)μg/ml；实验组2注射前(20.27±5.51)μg/ml，注射后(36.44±5.47)μg/ml。3.IL-8浓度：对照组注射前(15.78±4.36)μg/ml，注射后(15.29±4.76)μg/ml；实验组1注射前(16.21±3.89)μg/ml，注射后(23.02±8.06)μg/ml；实验组2注射前(15.49±4.25)μg/ml，注射后(38.8±9.02)μg/ml。4. HE染色显示实验组1与实验组2可见不同程度的肺水肿，大量的炎性细胞浸润，肺血管内见鳞状上皮、粘液等羊水成分，对照组无明显改变。5. CK10免疫组织化学染色检测可见实验组1与实验组2在大鼠肺血管含有鳞状上皮等羊水有形成分，对照组无明显改变。6. APM染色可见实验组1与实验组2肺血管里角化鳞状上皮呈桃红色、管腔中粘液呈蓝色、中性粒细胞胞质淡蓝或无色核红色，对照组无明显改变。结论：1.孕鼠临床表现的严重程度与进入母体的羊水成分有关，出现胎粪污染时要警惕AFE。2.实验组IL-6含量增加，以羊水胎粪组增加更为明显，说明胎粪里含有的某些物质刺激机体引起IL-6大量激活。3.实验组IL-8含量增加，以羊水胎粪组增加更为明显，说明胎粪里含有的某些物质刺激机体引起IL-8大量激活。