论文部分内容阅读
摘 要 目的 研究分析猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗方法。方法 对某猪场临床及实验室诊断确诊的48头传染性胸膜肺炎的病猪为研究对象，对其实施药敏实验，确定最理想的治疗方案，使疾病得到有效控制。结果 48头病猪治疗后，痊愈42头，痊愈率为87.5%，治疗效果良好。结论 经临床症状诊断、病理变化与实验室诊断，可确诊猪传染性胸膜肺炎，采用最佳的治疗方案可获得较好的治疗效果，控制病情的发展。
关键词 猪；传染性胸膜肺炎；诊断；治疗
中图分类号：S828 文献标志码：B 文章编号：1673-890X（2016）09--02
猪传染性胸膜肺炎是一种高度传染性与致死性的呼吸系统疾病[1]，本研究对某猪场发病猪群流行病学、临床症状以及病理变化等进行了研究诊断，基于药敏实验探寻最佳的治疗方法，控制该疾病的传染蔓延。
1 发病情况
2015年12月10日，南宁市良庆区良庆镇某猪场共饲养猪132头，其中5头3～5月龄猪开始不吃料，后陆续出现病情，疑似猪传染性胸膜肺炎的病猪48头。
2 临床诊断与实验室诊断
2.1 临床诊断
病猪病理变化，出现胸腔与呼吸道的不同程度的坏死与出血。根据病理变化分为急性死亡型与慢性死亡型。急性死亡型病猪气管与支气管充满了大量的红色血性黏液、渗出物，成泡沫状。两侧肺呈现出紫红色，发硬，健康肺组织很少，切面与肝相似，肺间质加宽，其胸腔内部可见少量的淡黄色液体，心包膜增厚，心肌弹性降低。慢性死亡型病猪支气管与气管内部存在少量的红色黏液，成泡沫状，其胸腔内可见淡黄色的混合物，肺及胸黏膜发生粘连，两侧肺为红色，表面有黄色结节。切面呈现为沙粒状，充血呈现出紫红色，膈肌表现为异常的增厚，有大量的积液存在于心包内，心包膜为肌肉样，心肌无弹性且增厚。
2.2 实验室诊断
无菌条件下取病猪肺脏组织，并将其接种在巧克力琼脂培养基上，置于恒温培养箱37 ℃进行培养，在48 h后取出分离菌种并接种在10%的绵羊献血琼脂培养基上，取培养物做成图片标本用革兰氏染色进行镜检。将过滤除菌的NAD加入到常规发酵管当中，并在生化培养基内分离菌纯培养物，观察培养结果。
2.3 药敏试验
取分离菌纯培养物，采用巧克力琼脂培养基，用常规纸片法对抗菌药物敏感性进行测定，判定标准为：低敏，抑菌圈直径<10 mm；中敏，抑菌圈直径在11～15 mm；高敏，抑菌圈直径>16 mm。
2.4 治疗方法
将48头病猪进行随机分组，分为A、B、C、D四组，每组病猪12头，体质量在25～30 kg，平均（28.8±4.3）kg，月龄4-6个月，平均（4.7±1.1）个月。各组间体质量、月龄比较差异无统计学意义（P>0.05）。A组给予氟苯尼考注射液肌肉注射治疗，用量为0.5 mL/kg，1次/d，连续使用5 d；B组给予苯唑西林钠粉肌肉注射治疗，用量为20 mg/kg，1次/d，连续使用5 d；C组给予氟苯尼考粉口服治疗，2次/d，连续使用7 d；D组给予氟苯尼考注射液+鱼腥草（金银花）肌肉注射治疗，2次/d，连续使用5 d。观察疗效。
3 结果
3.1 临床诊断结果
经临床症状等诊断初步判断48头病猪为猪传染性胸膜肺炎。
3.2 实验室诊断结果
经实验室诊断发现巧克力培养基上长出针尖大小的、表面光滑、边缘整齐、灰白色半透明小菌落，染色镜检结果存在革兰氏阴性红色小球杆菌。生化反应结果发现，与尿酶、触酶、蔗糖、葡萄糖与麦芽糖表现出阳性反应（+）；与氧化酶、吲哚、乳糖、甘露醇与木糖呈阴性反应（-）。经分离鉴定出分离病菌为胸膜肺炎放线杆菌。
3.3 药敏试验结果
药敏试验结果见表1。
3.4 四组病猪疗效比较
48头病猪治疗后，痊愈42头，痊愈率为87.5%。其中D组痊愈率最高，其次为A组、C组与B组。
4 讨论
4.1 猪传染性胸膜肺炎流行病学
猪传染性胸膜肺炎是一种高度传染性与致死性的呼吸系统疾病，由胸膜肺炎放线杆菌引起，发生胸膜肺炎与出血性和坏死性肺炎。当前已经发现的猪胸膜肺炎放线杆菌包括了2个生物型与15个血清型。由于该疾病的主要血清型之间交叉免疫性较缺乏，因此该疾病的诊断与防治有较大的困难。阿莫西林、先锋霉素、四环素和替米考星等药物尽管能够在该疾病的治疗中发挥良好的效果，但由于哟物的长期使用，易产生耐药性，甚至造成药物的残留影响肉的品质，以及人类的健康[2]。
猪传染性胸膜肺炎并无明显的季节性，在各个季度均可发生，其中11月-次年2月发病率可达40%，3-10月发病率则为10%～30%，其发病与猪日龄关系密切，其中哺乳猪的发病率较低，或者不发病。外界环境因素对猪传染性胸膜肺炎的发生具有很大的影响，当猪饲养的环境突然发生变化，突然转群、断奶、气候条件恶劣、饲养密度过大、闷热潮湿、卫生条件差、饲养管理不当等都将造成该疾病的快速传播[3]。猪舍出现一头或者几头猪咳嗽或者呼吸困难时，将在短时间内感染其他猪，而病猪与带菌猪为主要的传染源，经空气、猪与猪之间的接触、咳嗽、污染物等传播。
4.2 猪传染性胸膜肺炎诊断
经临床症状、病理变化与实验室检查等诊断判断48头病猪为猪传染性胸膜肺炎，主要表现为高热、呼吸困难等症状。
4.3 治疗药物选择
经实验室检验该治病菌属于革兰氏阴性菌，在进行药物选择时，以抑制蛋白质合成药物与抗G-菌药物进行结合治疗。本研究中D组病猪给予了氟苯尼考注射液+鱼腥草（金银花）肌肉注射治疗，且A组与D组疗效明显优于其他两组，抗菌作用良好。结果提示，采用中医与西医相结合疗效更为显著。在治疗过程中，要注意惊心解热镇咳，增强机体的看病能力，缓解气喘症状，并对其他病原体引发的激发感染予以控制。在药物治疗后，临床症状能够获得暂时的缓解，但是不能够立即停止用药，以避免其复发。因此，可在停止药物治疗后，继续给予药物添加在饮水与粮食中，持续预防一周。针对长期治疗但并不能治愈的病猪应考虑进行无害化处理或者淘汰。
4.4 预防
为有效避免疫情的发生，猪场中需要对疾病的防治引起高度的重视，坚持“预防为主，防治结合”的原则，禁止隐性感染猪的引入。饲养方式为“全进全出”，保证猪舍的清洁卫生，做好日常消毒工作；强化饲养管理工作，实施封闭式管理，坚决杜绝病原的侵入，增强机体抵抗能力，确保猪群的健康[4-5]。
参考文献
[1]杨根章.规模化猪场疑似猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].中国畜牧兽医文摘，2015（8）：196-196.
[2]杨晓平.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].现代农业科技，2014（9）：295-295.
[3]徐桂森，赵永成，徐桂平.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].中国动物保健，2014，16（9）：50-51.
[4]杨少凤，陈国凤.一例猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].畜禽业，2012（5）：62-63.
[5]李国辉，张久荣，田兵.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].今日畜牧兽医，2012（2）：29-31.
（责任编辑：刘昀）
关键词 猪；传染性胸膜肺炎；诊断；治疗
中图分类号：S828 文献标志码：B 文章编号：1673-890X（2016）09--02
猪传染性胸膜肺炎是一种高度传染性与致死性的呼吸系统疾病[1]，本研究对某猪场发病猪群流行病学、临床症状以及病理变化等进行了研究诊断，基于药敏实验探寻最佳的治疗方法，控制该疾病的传染蔓延。
1 发病情况
2015年12月10日，南宁市良庆区良庆镇某猪场共饲养猪132头，其中5头3～5月龄猪开始不吃料，后陆续出现病情，疑似猪传染性胸膜肺炎的病猪48头。
2 临床诊断与实验室诊断
2.1 临床诊断
病猪病理变化，出现胸腔与呼吸道的不同程度的坏死与出血。根据病理变化分为急性死亡型与慢性死亡型。急性死亡型病猪气管与支气管充满了大量的红色血性黏液、渗出物，成泡沫状。两侧肺呈现出紫红色，发硬，健康肺组织很少，切面与肝相似，肺间质加宽，其胸腔内部可见少量的淡黄色液体，心包膜增厚，心肌弹性降低。慢性死亡型病猪支气管与气管内部存在少量的红色黏液，成泡沫状，其胸腔内可见淡黄色的混合物，肺及胸黏膜发生粘连，两侧肺为红色，表面有黄色结节。切面呈现为沙粒状，充血呈现出紫红色，膈肌表现为异常的增厚，有大量的积液存在于心包内，心包膜为肌肉样，心肌无弹性且增厚。
2.2 实验室诊断
无菌条件下取病猪肺脏组织，并将其接种在巧克力琼脂培养基上，置于恒温培养箱37 ℃进行培养，在48 h后取出分离菌种并接种在10%的绵羊献血琼脂培养基上，取培养物做成图片标本用革兰氏染色进行镜检。将过滤除菌的NAD加入到常规发酵管当中，并在生化培养基内分离菌纯培养物，观察培养结果。
2.3 药敏试验
取分离菌纯培养物，采用巧克力琼脂培养基，用常规纸片法对抗菌药物敏感性进行测定，判定标准为：低敏，抑菌圈直径<10 mm；中敏，抑菌圈直径在11～15 mm；高敏，抑菌圈直径>16 mm。
2.4 治疗方法
将48头病猪进行随机分组，分为A、B、C、D四组，每组病猪12头，体质量在25～30 kg，平均（28.8±4.3）kg，月龄4-6个月，平均（4.7±1.1）个月。各组间体质量、月龄比较差异无统计学意义（P>0.05）。A组给予氟苯尼考注射液肌肉注射治疗，用量为0.5 mL/kg，1次/d，连续使用5 d；B组给予苯唑西林钠粉肌肉注射治疗，用量为20 mg/kg，1次/d，连续使用5 d；C组给予氟苯尼考粉口服治疗，2次/d，连续使用7 d；D组给予氟苯尼考注射液+鱼腥草（金银花）肌肉注射治疗，2次/d，连续使用5 d。观察疗效。
3 结果
3.1 临床诊断结果
经临床症状等诊断初步判断48头病猪为猪传染性胸膜肺炎。
3.2 实验室诊断结果
经实验室诊断发现巧克力培养基上长出针尖大小的、表面光滑、边缘整齐、灰白色半透明小菌落，染色镜检结果存在革兰氏阴性红色小球杆菌。生化反应结果发现，与尿酶、触酶、蔗糖、葡萄糖与麦芽糖表现出阳性反应（+）；与氧化酶、吲哚、乳糖、甘露醇与木糖呈阴性反应（-）。经分离鉴定出分离病菌为胸膜肺炎放线杆菌。
3.3 药敏试验结果
药敏试验结果见表1。
3.4 四组病猪疗效比较
48头病猪治疗后，痊愈42头，痊愈率为87.5%。其中D组痊愈率最高，其次为A组、C组与B组。
4 讨论
4.1 猪传染性胸膜肺炎流行病学
猪传染性胸膜肺炎是一种高度传染性与致死性的呼吸系统疾病，由胸膜肺炎放线杆菌引起，发生胸膜肺炎与出血性和坏死性肺炎。当前已经发现的猪胸膜肺炎放线杆菌包括了2个生物型与15个血清型。由于该疾病的主要血清型之间交叉免疫性较缺乏，因此该疾病的诊断与防治有较大的困难。阿莫西林、先锋霉素、四环素和替米考星等药物尽管能够在该疾病的治疗中发挥良好的效果，但由于哟物的长期使用，易产生耐药性，甚至造成药物的残留影响肉的品质，以及人类的健康[2]。
猪传染性胸膜肺炎并无明显的季节性，在各个季度均可发生，其中11月-次年2月发病率可达40%，3-10月发病率则为10%～30%，其发病与猪日龄关系密切，其中哺乳猪的发病率较低，或者不发病。外界环境因素对猪传染性胸膜肺炎的发生具有很大的影响，当猪饲养的环境突然发生变化，突然转群、断奶、气候条件恶劣、饲养密度过大、闷热潮湿、卫生条件差、饲养管理不当等都将造成该疾病的快速传播[3]。猪舍出现一头或者几头猪咳嗽或者呼吸困难时，将在短时间内感染其他猪，而病猪与带菌猪为主要的传染源，经空气、猪与猪之间的接触、咳嗽、污染物等传播。
4.2 猪传染性胸膜肺炎诊断
经临床症状、病理变化与实验室检查等诊断判断48头病猪为猪传染性胸膜肺炎，主要表现为高热、呼吸困难等症状。
4.3 治疗药物选择
经实验室检验该治病菌属于革兰氏阴性菌，在进行药物选择时，以抑制蛋白质合成药物与抗G-菌药物进行结合治疗。本研究中D组病猪给予了氟苯尼考注射液+鱼腥草（金银花）肌肉注射治疗，且A组与D组疗效明显优于其他两组，抗菌作用良好。结果提示，采用中医与西医相结合疗效更为显著。在治疗过程中，要注意惊心解热镇咳，增强机体的看病能力，缓解气喘症状，并对其他病原体引发的激发感染予以控制。在药物治疗后，临床症状能够获得暂时的缓解，但是不能够立即停止用药，以避免其复发。因此，可在停止药物治疗后，继续给予药物添加在饮水与粮食中，持续预防一周。针对长期治疗但并不能治愈的病猪应考虑进行无害化处理或者淘汰。
4.4 预防
为有效避免疫情的发生，猪场中需要对疾病的防治引起高度的重视，坚持“预防为主，防治结合”的原则，禁止隐性感染猪的引入。饲养方式为“全进全出”，保证猪舍的清洁卫生，做好日常消毒工作；强化饲养管理工作，实施封闭式管理，坚决杜绝病原的侵入，增强机体抵抗能力，确保猪群的健康[4-5]。
参考文献
[1]杨根章.规模化猪场疑似猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].中国畜牧兽医文摘，2015（8）：196-196.
[2]杨晓平.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].现代农业科技，2014（9）：295-295.
[3]徐桂森，赵永成，徐桂平.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].中国动物保健，2014，16（9）：50-51.
[4]杨少凤，陈国凤.一例猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].畜禽业，2012（5）：62-63.
[5]李国辉，张久荣，田兵.猪传染性胸膜肺炎的诊断与治疗[J].今日畜牧兽医，2012（2）：29-31.
（责任编辑：刘昀）