本研究探讨不同方法诱导大鼠骨骼肌卫星细胞（MDSCs）定向分化为胰岛素生成细胞（IPCs）的效果，为1型糖尿病的干细胞治疗提供一种新的研究思路。
方法通过二次酶消化法和差速贴壁培养法分离、培养大鼠MDSCs，利用不同的诱导方法使MDSCs定向分化为IPCs，并通过双硫腙染色对MDSCs-IPCs形态进行鉴定；用免疫组化检测MDSCs标记基因Desmin、α-Sarcomeric Actinin、MyoD1、Myf5和PAX7的表达情况，鉴定分离得到MDSCs；采用Q-PCR和免疫印迹方法检测MDSCs-IPCs中C-peptide和Insulin的表达；通过胰岛素释放实验检测MDSCs-IPCs的生物学功能。
结果MDSCs在接种4 h后开始贴壁，部分细胞伸出小的突起，48 h后绝大多数细胞贴壁呈梭形、胞浆丰富、折光度高。随着培养时间的延长，细胞的梭形形状更为明显且生长迅速。免疫组化结果显示细胞均表达Desmin、α-Sarcomeric Actinin、MyoD1、Myf5和PAX7。共培养诱导法、二步诱导法和五步诱导法均可不同程度将MDSCs诱导形成双硫腙染色阳性的IPCs。Q-PCR结果显示，五步诱导法诱导形成MDSCs-IPCs中C-peptide和Insulin蛋白表达量（β细胞的0.79、0.70倍）显著高于共培养法（β细胞的0.59、0.46倍）、二步诱导法（β细胞的0.27、0.14倍）形成MDSCs-IPCs（P<0.01）。胰岛素释放实验显示，5.6 mmol/L和16.7 nmlol/L葡萄糖刺激培养2 h后，β细胞分泌胰岛素量分别是（20.3±4.2）mU/L和60.5± 9.3）mU/L，五步诱导法诱导形成MDSCs-IPCs分泌胰岛素量分别是（16.1±3.7）mU/L和（40.9±7.3）mU/L，明显高于共培养法[（10.9±2.7）mU/L和（30.2 ± 6.7）mU/L]、二步诱导法[（6.2±2.1）mU/L和（12.9 ± 3.3）mU/L]，与β细胞更接近。
结论MDSCs易于分离培养、增殖能力强，五步诱导法更适合作为体外诱导IPCs的方法。