论文部分内容阅读
摘要：为探究不同光照强度对种公猪血液中FSH、LH表达量的影响，试验分别利用50、100、150 Lx照度条件下，对处理第0、45、90天公猪进行采血，检测其血液中FSH、LH含量。试验时间为2017年10—12月的短光照季节。结果：光照周期为18L：6D条件下，FSH表达量方面，第45天时，50 Lx组其含量受到较大抑制，但100 Lx组和150 Lx组其含量均增加，差异不显著（P>0.05）。第90天时，与50 Lx组相比，100 Lx和150 Lx组差异显著（P<0.05），其中150 Lx组数值最大;LH表达量方面，第45天时，50 Lx组和100 Lx组其含量均有下降，但2组差异不显著（P>0.05）;第90天时，100 Lx组其数值最大，显著高于其他2组。
关键词：光照强度;种公猪;FSH;LH
中图分类号：S828 文献标识码：B doi：10.3969/j.issn.2096-3637.2019.14.005
0引言
促卵泡激素（follicle-stimulating hormone，FSH）是一种动物垂体前叶嗜碱性细胞合成分泌的糖蛋白類促性腺激素。对雄性动物的精子产生起着重要的调控作用[1-2]，LH也是一种糖蛋白激素，它的分子结构与FSH的分子结构相似[3]，Ruwanpura[4]等人研究发现，LH与FSH在雄性激素的作用下，不仅能促进精子成熟，而且对性腺以外的组织发育也具有一定的积极作用。目前关于FSH、LH在动物体中发育性表达研究较多，但关于种畜饲养中光照强度对其表达量的影响较少，因此，试验通过探究不同光照强度下对睾丸激素的影响，旨在更好地了解光照对精子质量的影响机制[5]，为后续精液品质的提升提供参考。
1材料与方法
1.1材料
试验材料选自天津宁河某种公猪站12头体质健康、性欲旺盛、年龄和精子质量相当的杜洛克种公猪。
1.2方法
1.2.1血样采集与处理
2017年10—12月，分别对50、100、150 Lx光照强度处理组，处理第0、45、90天时进行抽血检测，利用颈静脉采血，采血量为10mL/次，常温自然析出血清，在4℃冰箱保存备用，将血样装在盛有30%的50 ? LEDTA的试管中，静置数小时后，利用3 500r/min离心15 min，分离血清，收集分装后于-20℃冰箱中保存待测。
1.2.2样品检测
血清FSH的测定采用美国农业研究中心畜牧研究所建立的抗牛FSH抗体放射性碘标记牛FSH系统的双抗体放射免疫测定法。血清LH的测定采用抗羊LH抗体放射性碘标记羊LH系统的双抗体放射免疫测定法测定[6]。
1.3试验设计
试验在光照节律（18L：6D）下，分别利用50、100、150 Lx光照强度进行处理，分别在第0、45、90天进行抽血，检测其FSH、LH表达量。
1.4数据处理
试验数据整理后，利用Excel计算每组中各种指标的平均数和标准差，利用SPSS 17.0进行单因素方差分析和Duncan多重比较，当P<0.05时，差异显著，试验重复数为3次，试验数据以“平均值±标准偏差”表示。
2结果与分析
2.1不同光照强度对种公猪血液中FSH表达量的影响
光照节律（18L：6D）条件下，第45天时，100、150 Lx组血液中FSH表达量均显著增加（P<0.05），但50 Lx组FSH表达量明显降低。第90天时，随着时间增加，50、150 Lx组数值增加，且150 Lx组数值最高，但100 Lx组数值呈现下降趋势。见表1。
2.2不同光照强度对种公猪血液中LH表达量的影响
光照节律（18L：6D）条件下，随着时间增加，50、100 Lx组呈现先下降后上升的趋势，150 Lx组呈现先上升后下降的趋势。第45天时，150 Lx组数值显著高于50、100 Lx组（P<0.05），但第90天时，100 Lx组数值最高，与其他组差异明显。见表2。
3讨论
睾丸类激素对种公猪生殖机能具有较为重要的调节作用，其中FSH、LH在雄性激素的作用下对精子的生成与生殖组织的成熟具有一定协同作用。试验对不同光照强度处理的种公猪血液中FSH、LH表达量的研究，结果显示150Lx光照强度时，FSH含量最高，随时间增加相较50、100 Lx组差异显著（P<0.05），但LH方面，100 Lx光照强度处理条件下，第90天时含量最高显著优于其他组<0.05）。
4结论
结合前期光照强度对精液质量的影响结果，试验推测100?150 Lx光照强度对公畜附睾组织与精子的成熟有一定促进作用，能达到提高精液品质的作用，这也与田允波[7]等人研究，光照强度由8?10 Lx增加到100?150 Lx，有利于改善精液品质的试验结果相一致。
参考文献
[1]产舒恒，陈子璇，张戌园，等.FSH和LH及其受体基因在梅山猪公猪HPT轴的表达[J].江苏农业科学，2018，46（1）：23-26.
[2]李桂芝，李飞，刁秀念，等.奶牛发情周期中生殖激素浓度与卵泡发育对比分析[J].甘肃农业大学学报，2008（3）：42-46.
[3]徐盼，李完波，蒋凯，等.二花脸FSH的高量表达对大白公猪睾丸的影响[J].农业生物技术学报，2016，24（12）：1 882-1 889.
[4]Ruwanpura S M，Mclachlan R I，Meachem S J.Hormonal regulate-on of male germ cell development[J].The Journal of Endocrinology，2010，205（2）：117-131.
[5]冯志良.光照对猪生产性能的影响[J].当代畜牧，1992（2）：38-41.
[6]梁鸿雁，周虚，李纯锦，等，成年公猪睾丸及附睾中促卵泡素受体mRNA的表达[J].中国畜牧兽医，2008，35（12）：47-52.
[7]田允波.光照对猪的影响[J].甘肃畜牧兽医，1997（4）：27-30.
关键词：光照强度;种公猪;FSH;LH
中图分类号：S828 文献标识码：B doi：10.3969/j.issn.2096-3637.2019.14.005
0引言
促卵泡激素（follicle-stimulating hormone，FSH）是一种动物垂体前叶嗜碱性细胞合成分泌的糖蛋白類促性腺激素。对雄性动物的精子产生起着重要的调控作用[1-2]，LH也是一种糖蛋白激素，它的分子结构与FSH的分子结构相似[3]，Ruwanpura[4]等人研究发现，LH与FSH在雄性激素的作用下，不仅能促进精子成熟，而且对性腺以外的组织发育也具有一定的积极作用。目前关于FSH、LH在动物体中发育性表达研究较多，但关于种畜饲养中光照强度对其表达量的影响较少，因此，试验通过探究不同光照强度下对睾丸激素的影响，旨在更好地了解光照对精子质量的影响机制[5]，为后续精液品质的提升提供参考。
1材料与方法
1.1材料
试验材料选自天津宁河某种公猪站12头体质健康、性欲旺盛、年龄和精子质量相当的杜洛克种公猪。
1.2方法
1.2.1血样采集与处理
2017年10—12月，分别对50、100、150 Lx光照强度处理组，处理第0、45、90天时进行抽血检测，利用颈静脉采血，采血量为10mL/次，常温自然析出血清，在4℃冰箱保存备用，将血样装在盛有30%的50 ? LEDTA的试管中，静置数小时后，利用3 500r/min离心15 min，分离血清，收集分装后于-20℃冰箱中保存待测。
1.2.2样品检测
血清FSH的测定采用美国农业研究中心畜牧研究所建立的抗牛FSH抗体放射性碘标记牛FSH系统的双抗体放射免疫测定法。血清LH的测定采用抗羊LH抗体放射性碘标记羊LH系统的双抗体放射免疫测定法测定[6]。
1.3试验设计
试验在光照节律（18L：6D）下，分别利用50、100、150 Lx光照强度进行处理，分别在第0、45、90天进行抽血，检测其FSH、LH表达量。
1.4数据处理
试验数据整理后，利用Excel计算每组中各种指标的平均数和标准差，利用SPSS 17.0进行单因素方差分析和Duncan多重比较，当P<0.05时，差异显著，试验重复数为3次，试验数据以“平均值±标准偏差”表示。
2结果与分析
2.1不同光照强度对种公猪血液中FSH表达量的影响
光照节律（18L：6D）条件下，第45天时，100、150 Lx组血液中FSH表达量均显著增加（P<0.05），但50 Lx组FSH表达量明显降低。第90天时，随着时间增加，50、150 Lx组数值增加，且150 Lx组数值最高，但100 Lx组数值呈现下降趋势。见表1。
2.2不同光照强度对种公猪血液中LH表达量的影响
光照节律（18L：6D）条件下，随着时间增加，50、100 Lx组呈现先下降后上升的趋势，150 Lx组呈现先上升后下降的趋势。第45天时，150 Lx组数值显著高于50、100 Lx组（P<0.05），但第90天时，100 Lx组数值最高，与其他组差异明显。见表2。
3讨论
睾丸类激素对种公猪生殖机能具有较为重要的调节作用，其中FSH、LH在雄性激素的作用下对精子的生成与生殖组织的成熟具有一定协同作用。试验对不同光照强度处理的种公猪血液中FSH、LH表达量的研究，结果显示150Lx光照强度时，FSH含量最高，随时间增加相较50、100 Lx组差异显著（P<0.05），但LH方面，100 Lx光照强度处理条件下，第90天时含量最高显著优于其他组<0.05）。
4结论
结合前期光照强度对精液质量的影响结果，试验推测100?150 Lx光照强度对公畜附睾组织与精子的成熟有一定促进作用，能达到提高精液品质的作用，这也与田允波[7]等人研究，光照强度由8?10 Lx增加到100?150 Lx，有利于改善精液品质的试验结果相一致。
参考文献
[1]产舒恒，陈子璇，张戌园，等.FSH和LH及其受体基因在梅山猪公猪HPT轴的表达[J].江苏农业科学，2018，46（1）：23-26.
[2]李桂芝，李飞，刁秀念，等.奶牛发情周期中生殖激素浓度与卵泡发育对比分析[J].甘肃农业大学学报，2008（3）：42-46.
[3]徐盼，李完波，蒋凯，等.二花脸FSH的高量表达对大白公猪睾丸的影响[J].农业生物技术学报，2016，24（12）：1 882-1 889.
[4]Ruwanpura S M，Mclachlan R I，Meachem S J.Hormonal regulate-on of male germ cell development[J].The Journal of Endocrinology，2010，205（2）：117-131.
[5]冯志良.光照对猪生产性能的影响[J].当代畜牧，1992（2）：38-41.
[6]梁鸿雁，周虚，李纯锦，等，成年公猪睾丸及附睾中促卵泡素受体mRNA的表达[J].中国畜牧兽医，2008，35（12）：47-52.
[7]田允波.光照对猪的影响[J].甘肃畜牧兽医，1997（4）：27-30.