论文部分内容阅读
摘要 在卵母细胞中贮存的大量RNA和蛋白对于后续早期胚胎的发育起着至关重要的作用，尤其是母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex），简称（SCMC）。对SCMC的研究历程、结构与功能研究方向进行了综述，以期对有关母源效应复合体对于早期胚胎发育调控的研究领域提供借鉴。
关键词 SCMC；母源效应因子；卵母细胞；胚胎发育
中图分类号 S811.4 文献標识码 A 文章编号 0517-6611（2015）13-162-03
Abstract A large number of RNA and proteins plays a vital role in subsequent early embryonic development， and subcortical maternal complex （SCMC） is one of the most important compounds stored in oocytes. This paper mainly focus on the development， discovered structures and function and research directions of SCMC， which is expected to be helpful for peer researchers from research field of maternal effect factors’s regulation on early embryo development.
Key words Subcortical maternal complex （SCMC）； Maternal effect factors； Oocyte； Embryo development
在卵母细胞生长发育、受精、早期胚胎发育和合子基因激活乃至胚胎植入等过程中，需要产生大量的转录因子和蛋白质，而这些物质主要依靠原有的贮存在卵母细胞中的卵源性物质（由母源效应基因表达产生）。已有研究表明，母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex ，SCMC）能够调控小鼠早期胚胎发育，其缺失会导致胚胎在2细胞阶段发生阻滞。进一步研究发现，该复合体主要位于胞质网格（Cytoplasmic lattices， CPLs）中，并且能够调控其形成。笔者综述了SCMC在早期胚胎发育中调控网络的研究进展，以期为SCMC调控胚胎发育机制的研究提供一定的参考。
1 SCMC研究历程
母源效应基因是指其产物虽然对卵母细胞发育、成熟以及排卵和受精的影响不大，但是对后续的胚胎基因组激活起着必不可少的作用的一类基因，缺乏该基因的表达会阻碍早期胚胎的进一步发育[1]。在胚胎基因组激活以前，卵母细胞中贮存了大量的促进早期胚胎发育过程中翻译功能的核糖体。已有研究表明，在两栖类和线虫中其合子基因一般至少要在发生第12次卵裂以后才会激活（一般少于10 h）。但是，在哺乳动物中至少需要等待2～4 d合子基因才会激活，一般而言小鼠中在第1次卵裂后，在人、牛和绵羊中一般在发生2～3次卵裂后[2]。尽管对于哺乳动物卵母细胞保存大量的核糖体的机制还不是很清楚，但已有研究表明小鼠中75%～80%的核糖体在排卵时不会形成多核糖体，也不会在体外立即参与蛋白质的合成[3]。
已有研究表明，这些没有激活的核糖体实际上在卵母细胞中参与形成胞质网格（Cytoplasmic lattices， CPLs），形成包含有大量蛋白质和RNA纤维状的基质。另外，已有研究发现核糖体与CPLs的形成存在联系，核糖体数量的减少会引起CPLs数量的增加[4]。进一步研究也已证实，按照rRNA的数量推算应该有2/3的核糖体存在于卵母细胞中，但是在超微结构下却完全没有观察到核糖体[5]。此后，有人观察到CPLs纤丝中包含大量的高电子密度的核糖体大小颗粒，说明丢失的这些核糖体实际上聚集在CPLs内[4]。进一步研究发现，与体细胞中的核糖体需要至少100 000 g的离心力离心1 h以上才能分离到不同，卵母细胞中70%的核糖体仅需要9 000 g的离心力离心5 min即可分离到，由此可见卵母细胞中的核糖体以1种超大分子结构聚集在一起[6]。同时，也有研究发现这些胞质网格中也包含中间纤维如角蛋白，据此推测这些细胞骨架结构为卵母细胞形成一个特殊的细胞骨架原件提供了条件[7]。
最近研究表明在CPLs中存在母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex，SCMC），而且进一步研究发现主要有FLOPED（Factor located in oocytes permitting embryonic development）、MATER（Maternal antigen that embryo requires）和TLE6（Transducin-like enhancer of split 6）相互作用以及仅与MATER作用的Filia也称之为KHDC3（KH domain containing protein 3）共同构成[8]。研究发现，尽管SCMC复合体转录和翻译获得蛋白在卵母细胞减数分裂和排卵过程中不断降解，但是在早期胚胎发育阶段仍然存在。在胚胎发育阶段，SCMC处于卵裂球之间的以外的区域，到桑椹胚和囊胚阶段逐渐分布在胚胎的外周。
FLOPED基因，也称为Ooep基因，其基因的mRNAs仅在生长发育的卵母细胞中存在，但其蛋白产物在发育到囊胚的阶段一直存在。该基因敲除小鼠的卵母细胞可以正常生长发育（如进行减数分裂、成熟和受精等），但其胚胎由于没有改变蛋白的作用会在2-细胞胚胎阶段发生阻滞[8]。同样也有研究发现在小鼠胚胎干细胞中高表达，利用打靶突变的方法研究发现Floped基因在非分化培养条件下对维持胚胎干细胞的特性不是必不可少的，但是该基因的缺失在分化培养条件下会加快胚胎干细胞分化的进程。 2 SCMC复合体的结构及功能
母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex，SCMC），由FLOPED、MATER和TLE6相互作用以及仅与MATER作用的Filia也称之为KHDC3共同构成。
（1）FLOPED蛋白定位在卵巢和卵母細胞中。研究发现，小鼠Floped蛋白分子量为18 kD，含有164个氨基酸，是SCMC复合体中分子量最小的蛋白，含有1 个单独的含有70个氨基酸的KH（hnRNA K homology）区域，它的多聚体与单链核酸有关[9]。但是，人类的Floped蛋白含有149个氨基酸，与小鼠有39%的相同氨基酸。Flpoed 蛋白是卵母细胞CPLs 的主要成分。Floped 缺乏会影响卵子细胞质中网架状结构CPLs 的形成[10]。敲除小鼠Floped 基因后，并不会影响卵巢的发育、卵子发生、卵母细胞成熟及排卵和交配后的受精；缺乏Floped基因的成年雌性和雄性小鼠外表是正常的[8]。进一步研究发现，虽然在卵巢和卵母细胞中检测不到Floped蛋白以及SCMC，但可以检测到其他成分蛋白，说明它也是维持SCMC稳定性的主要因子[8]。此外，也有研究表明这种雌鼠排出的卵子可以受精，但是第1次卵裂后胚胎发育不良并且在植入前死亡，即使让这种雌鼠与正常的雄鼠交配，胚胎发育不良的表现也不会被改变[11]。由此可见，该基因与早期胚胎发育以及SCMC的形成紧密相关。
（2）Mater（Maternal antigen that embryo requires）基因，也名Nlrp5（Pyrin domain containing 5）基因，是第1个在小鼠中发现的母源基因，编码125 kD的蛋白，由位于第7号染色体上单拷贝基因表达，其基因缺失会让胚胎在2细胞发生阻滞[12]。同时，进一步研究也发现由1 111个氨基酸构成的蛋白包含1个NACHT结构域和在终端存在2个重复的Motif结构域[13]。通过研究小鼠自身免疫性卵巢功能发育障碍模型，母源效应基因首先作为1个卵母细胞抗原被确定。Mater蛋白是由在卵母细胞中发现的单拷贝基因表达的，并且持续表达到后期囊胚阶段[11， 14]。Mater-/-小鼠产出的幼崽性别比例大致相等，表型没有异常。Mater-/-雄性老鼠是不育的， 尽管Mater-/-雌性老鼠也可以正常进行卵泡发生、卵母细胞发育、排卵和受精[15]。此外，在早期胚胎发育阶段第1次卵裂也是正常的；但是，Mater-/-母鼠是不育的，因为在胚胎发育到2细胞阶段时发生阻滞；此外，排出的卵母细胞和产生的胚胎数量与正常的小鼠没有差异[15]。这些研究结果表明Mater基因对于2细胞以上的胚胎发育是必要的。研究发现，与Mater基因结合的因子被发现，即Filia基因[16]。Filia蛋白与Mater蛋白结合在一起，共同定位于卵母细胞核早期胚胎的亚皮质区，在早期胚胎发育阶段处于卵裂球联系之处的外面，囊胚阶段就处于胚胎外周-滋养层区域[16]。
（3）TLE6基因属于Groucho/TLE 转录共同抑制因子家族的一员，首先作为E2A肝白血病因子被发现，在小鼠胚胎和成年小鼠的组织中大量表达。在神经祖细胞中，TLE6通过与TLE1竞争性结合脑因子1（Brain factor 1， BF-1）抑制TLE1的功能，并且TLE6在新出生的小鼠卵巢中高度表达，能够与SCMC的其余3个因子（MATER、FLOPED和FILIA）结合，形成母源效应因子复合体，调控早期胚胎的卵裂。近年来，研究发现TLE6可以通过影响小鼠卵母细胞中微丝细胞骨架的功能来调控早期胚胎的对称性分裂[17]。
（4）Filia基因编码1个卵源性的基本的螺旋-环-螺旋（Basic helix-loop-helix， bHLH）转录因子，分子量在50 kD左右，能够与第1个被发现的母源因子Mater蛋白相互结合，在调控激活透明带基因方面发挥着重要的作用[18]。Filia基因缺失不仅会影响透明带基因的表达，而且会阻滞原始卵泡的发育和生长[18-19]。Filia基因只有在性成熟动物的生长的卵母细胞中表达。随着卵母细胞减数分裂和排卵的进行，卵母细胞中贮存的转录因子及蛋白逐渐降解，但其表达的蛋白在胚胎早期发育阶段会持续发挥作用[20]。最近研究发现，Filia基因敲除后会引起卵母细胞中因纺锤体不正常组装导致的染色体非倍体的形成及纺锤体组装检查点（Spindle assembly checkpoint， SAC）失活等，其具体机制是通过RhoA 信号通路影响主要的纺锤体组装调控因子（AURKA、PLK1和γ-tubulin）的分布，从而影响到微观组装中心的功能[21]。
3 展望
一般而言，对于卵母细胞发生和早期胚胎发育起调控作用的分子机制在不同物种之间是比较保守的。但是，由于不同物种之间存在的特异性区别（如排卵数量和合子基因启动处在不同胚胎阶段）决定了这些母源性的效应基因以及表达还是存在较大的差异，甚至同样的基因在不同的动物之间完全不同[22-23]。由此可见，尽管SCMC在小鼠早期胚胎发育的研究已有报道，但是在其他大的动物（如牛和猪等）中尚未见报道。研究表明，SCMC复合体对于小鼠早期胚胎超越第1次卵裂是必不可少的[1，8]。进一步研究发现，SCMC是卵母细胞胞质中肌动蛋白F-actin网络形成中必不可少的，该纤维控制卵母细胞中纺锤体的中心位置，从而确保小鼠合子的对称性分裂；另外，SCMC是通过Cofilin蛋白（肌动蛋白F-actin组装的重要调控因子）来控制细胞骨架微丝的形成[17]。这些虽然在小鼠中已有较多研究，但是在其他动物早期胚胎发育的作用研究还较少。尽管有关SCMC对于早期胚胎发育调控的研究已有报道（主要限于小鼠的研究），但是有关大动物SCMC调控早期胚胎发育的机制仍不清楚，目前还未见到国内外的相关文献报道。 由此可見，SCMC可能是通过形成胞质中的CPLs，调节F-actin的组装，从而调节纺锤体的形成，影响早期胚胎的发育，但其具体的调控途径以及网络也还不清楚，有待于进一步研究。
参考文献
[1]LI L，ZHENG P，DEAN J.Maternal control of early mouse development[J].Development，2010，137（6）：859-870.
[2] RNASCHULTZ R M.The molecular foundations of the maternal to zygotic transition in the preimplantation embryo[J].Human Reproduction Update，2002，8（4）：323-331.
[3] RNABACHVAROVA R，DE LEON V.Polyadenylated RNA of mouse ova and loss of maternal RNA in early development[J].Developmental Biology，1980，74（1）：1-8.
[4] RNASTERNLICHT A L，SCHULTZ R M.Biochemical studies of mammalian oogenesis：Kinetics of accumulation of total and poly （A）-containing RNA during growth of the mouse oocyte[J].Journal of Experimental Zoology，1981，215（2）：191-200.
[5] RNAGARCIA R B，PEREYRA-ALFONSO S，SOTELO J R.Protein-synthesizing machinery in the growing oocyte of the cyclic mouse[J].Differentiation，1979，14：101-106.
[6] RNABACHVAROVA R，DE LEON V，SPIEGELMAN I.Mouse egg ribosomes：Evidence for storage in lattices[J].Journal of Embryology and Experimental Morphology，1981，62（1）：153-164.
[7] RNACAPCO D G，GALLICANO G I，MCGAUGHEY R W，et al.Cytoskeletal sheets of mammalian eggs and embryos：A lattice-like network of intermediate filaments[J].Cell Motility and the Cytoskeleton，1993，24（2）：85-99.
[8] RNALI L，BAIBAKOV B，DEAN J.A subcortical maternal complex essential for preimplantation mouse embryogenesis[J].Developmental Cell，2008，15（3）：416-425.
[9] RNAVALVERDE R，EDWARDS L，REGAN L.Structure and function of KH domains[J].FEBS Journal，2008，275（11）：2712-2726.
[10] RNATASHIRO F，KANAI-AZUMA M，MIYAZAKI S，et al.Maternaleffect gene Ces5/Ooep/Moep19/Floped is essential for oocyte cytoplasmic lattice formation and embryonic development at the maternal zygotic stage transition[J].Genes to Cells，2010，15（8）：813-828.
[11] RNATONG Z B，NELSON L M.A mouse gene encoding an oocyte antigen associated with autoimmune premature ovarian failure[J].Endocrinology，1999，140（8）：3720-3726.
[12] RNATONG Z B，GOLD L，PFEIFER K E，et al.Mater，a maternal effect gene required for early embryonic development in mice[J].Nature Genetics，2000，26（3）：267-268.
[13] RNAKOONIN E V，ARAVIND L.The NACHT family-a new group of predicted NTPases implicated in apoptosis and MHC transcription activation[J].Trends in Biochemical Sciences，2000，25（5）：223-224.
[14] RNATONG Z B，NELSON L M，DEAN J.Mater encodes a maternal protein in mice with a leucine-rich repeat domain homologous to porcine ribonuclease inhibitor[J].Mammalian Genome，2000，11（4）：281-287. [15] RNAKIM K H，LEE K A.Maternal effect genes：Findings and effects on mouse embryo development[J].Clinical and Experimental Reproductive Medicine，2014，41（2）：47-61.
[16] RNAOHSUGI M，ZHENG P，BAIBAKOV B，et al.Maternally derived FILIA-MATER complex localizes asymmetrically in cleavage-stage mouse embryos[J].Development，2008，135（2）：259-269.
[17] RNAYU X J，YIZ H，GAO Z，et al.The subcortical maternal complex controls symmetric division of mouse zygotes by regulating F-actin dynamics[J].Nature communications，2014，75：4887.
[18] RNALIANG L F，SOYAL S M，DEAN J.FIGalpha，a germ cell specific transcription factor involved in the coordinate expression of the zona pellucida genes[J].Development，1997，124（24）：4939-4947.
[19] RNASOYAL S M，AMLEH A，DEAN J.FIGalpha，a germ cell-specific transcription factor required for ovarian follicle formation[J].Development，2000，127（21）：4645-4654.
[20] RNASU Y Q，SUGIURA K，WOO Y，et al.Selective degradation of transcripts during meiotic maturation of mouse oocytes[J].Developmental Biology，2007，302（1）：104-117.
[21] RNAZHENG P，DEAN J.Role of Filia，a maternal effect gene，in maintaining euploidy during cleavage-stage mouse embryogenesis[J].Proceedings of the National Academy of Sciences，2009，106（18）：7473-7478.
[22] RNAHANRAHAN J P，GREGAN S M，MULSANT P.Mutations in the genes for oocyte-derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep （Ovis aries）[J].Biology of Reproduction，2004，70（4）：900-909.
[23] RNABETTEGOWDA A，YAO J B，SEN O，et al.JY-1，an oocyte-specific gene，regulates granulosa cell function and early embryonic development in cattle[J].Proceedings of the National Academy of Sciences，2007，104（45）：17602-17607.
关键词 SCMC；母源效应因子；卵母细胞；胚胎发育
中图分类号 S811.4 文献標识码 A 文章编号 0517-6611（2015）13-162-03
Abstract A large number of RNA and proteins plays a vital role in subsequent early embryonic development， and subcortical maternal complex （SCMC） is one of the most important compounds stored in oocytes. This paper mainly focus on the development， discovered structures and function and research directions of SCMC， which is expected to be helpful for peer researchers from research field of maternal effect factors’s regulation on early embryo development.
Key words Subcortical maternal complex （SCMC）； Maternal effect factors； Oocyte； Embryo development
在卵母细胞生长发育、受精、早期胚胎发育和合子基因激活乃至胚胎植入等过程中，需要产生大量的转录因子和蛋白质，而这些物质主要依靠原有的贮存在卵母细胞中的卵源性物质（由母源效应基因表达产生）。已有研究表明，母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex ，SCMC）能够调控小鼠早期胚胎发育，其缺失会导致胚胎在2细胞阶段发生阻滞。进一步研究发现，该复合体主要位于胞质网格（Cytoplasmic lattices， CPLs）中，并且能够调控其形成。笔者综述了SCMC在早期胚胎发育中调控网络的研究进展，以期为SCMC调控胚胎发育机制的研究提供一定的参考。
1 SCMC研究历程
母源效应基因是指其产物虽然对卵母细胞发育、成熟以及排卵和受精的影响不大，但是对后续的胚胎基因组激活起着必不可少的作用的一类基因，缺乏该基因的表达会阻碍早期胚胎的进一步发育[1]。在胚胎基因组激活以前，卵母细胞中贮存了大量的促进早期胚胎发育过程中翻译功能的核糖体。已有研究表明，在两栖类和线虫中其合子基因一般至少要在发生第12次卵裂以后才会激活（一般少于10 h）。但是，在哺乳动物中至少需要等待2～4 d合子基因才会激活，一般而言小鼠中在第1次卵裂后，在人、牛和绵羊中一般在发生2～3次卵裂后[2]。尽管对于哺乳动物卵母细胞保存大量的核糖体的机制还不是很清楚，但已有研究表明小鼠中75%～80%的核糖体在排卵时不会形成多核糖体，也不会在体外立即参与蛋白质的合成[3]。
已有研究表明，这些没有激活的核糖体实际上在卵母细胞中参与形成胞质网格（Cytoplasmic lattices， CPLs），形成包含有大量蛋白质和RNA纤维状的基质。另外，已有研究发现核糖体与CPLs的形成存在联系，核糖体数量的减少会引起CPLs数量的增加[4]。进一步研究也已证实，按照rRNA的数量推算应该有2/3的核糖体存在于卵母细胞中，但是在超微结构下却完全没有观察到核糖体[5]。此后，有人观察到CPLs纤丝中包含大量的高电子密度的核糖体大小颗粒，说明丢失的这些核糖体实际上聚集在CPLs内[4]。进一步研究发现，与体细胞中的核糖体需要至少100 000 g的离心力离心1 h以上才能分离到不同，卵母细胞中70%的核糖体仅需要9 000 g的离心力离心5 min即可分离到，由此可见卵母细胞中的核糖体以1种超大分子结构聚集在一起[6]。同时，也有研究发现这些胞质网格中也包含中间纤维如角蛋白，据此推测这些细胞骨架结构为卵母细胞形成一个特殊的细胞骨架原件提供了条件[7]。
最近研究表明在CPLs中存在母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex，SCMC），而且进一步研究发现主要有FLOPED（Factor located in oocytes permitting embryonic development）、MATER（Maternal antigen that embryo requires）和TLE6（Transducin-like enhancer of split 6）相互作用以及仅与MATER作用的Filia也称之为KHDC3（KH domain containing protein 3）共同构成[8]。研究发现，尽管SCMC复合体转录和翻译获得蛋白在卵母细胞减数分裂和排卵过程中不断降解，但是在早期胚胎发育阶段仍然存在。在胚胎发育阶段，SCMC处于卵裂球之间的以外的区域，到桑椹胚和囊胚阶段逐渐分布在胚胎的外周。
FLOPED基因，也称为Ooep基因，其基因的mRNAs仅在生长发育的卵母细胞中存在，但其蛋白产物在发育到囊胚的阶段一直存在。该基因敲除小鼠的卵母细胞可以正常生长发育（如进行减数分裂、成熟和受精等），但其胚胎由于没有改变蛋白的作用会在2-细胞胚胎阶段发生阻滞[8]。同样也有研究发现在小鼠胚胎干细胞中高表达，利用打靶突变的方法研究发现Floped基因在非分化培养条件下对维持胚胎干细胞的特性不是必不可少的，但是该基因的缺失在分化培养条件下会加快胚胎干细胞分化的进程。 2 SCMC复合体的结构及功能
母源效应因子复合体（Subcortical maternal complex，SCMC），由FLOPED、MATER和TLE6相互作用以及仅与MATER作用的Filia也称之为KHDC3共同构成。
（1）FLOPED蛋白定位在卵巢和卵母細胞中。研究发现，小鼠Floped蛋白分子量为18 kD，含有164个氨基酸，是SCMC复合体中分子量最小的蛋白，含有1 个单独的含有70个氨基酸的KH（hnRNA K homology）区域，它的多聚体与单链核酸有关[9]。但是，人类的Floped蛋白含有149个氨基酸，与小鼠有39%的相同氨基酸。Flpoed 蛋白是卵母细胞CPLs 的主要成分。Floped 缺乏会影响卵子细胞质中网架状结构CPLs 的形成[10]。敲除小鼠Floped 基因后，并不会影响卵巢的发育、卵子发生、卵母细胞成熟及排卵和交配后的受精；缺乏Floped基因的成年雌性和雄性小鼠外表是正常的[8]。进一步研究发现，虽然在卵巢和卵母细胞中检测不到Floped蛋白以及SCMC，但可以检测到其他成分蛋白，说明它也是维持SCMC稳定性的主要因子[8]。此外，也有研究表明这种雌鼠排出的卵子可以受精，但是第1次卵裂后胚胎发育不良并且在植入前死亡，即使让这种雌鼠与正常的雄鼠交配，胚胎发育不良的表现也不会被改变[11]。由此可见，该基因与早期胚胎发育以及SCMC的形成紧密相关。
（2）Mater（Maternal antigen that embryo requires）基因，也名Nlrp5（Pyrin domain containing 5）基因，是第1个在小鼠中发现的母源基因，编码125 kD的蛋白，由位于第7号染色体上单拷贝基因表达，其基因缺失会让胚胎在2细胞发生阻滞[12]。同时，进一步研究也发现由1 111个氨基酸构成的蛋白包含1个NACHT结构域和在终端存在2个重复的Motif结构域[13]。通过研究小鼠自身免疫性卵巢功能发育障碍模型，母源效应基因首先作为1个卵母细胞抗原被确定。Mater蛋白是由在卵母细胞中发现的单拷贝基因表达的，并且持续表达到后期囊胚阶段[11， 14]。Mater-/-小鼠产出的幼崽性别比例大致相等，表型没有异常。Mater-/-雄性老鼠是不育的， 尽管Mater-/-雌性老鼠也可以正常进行卵泡发生、卵母细胞发育、排卵和受精[15]。此外，在早期胚胎发育阶段第1次卵裂也是正常的；但是，Mater-/-母鼠是不育的，因为在胚胎发育到2细胞阶段时发生阻滞；此外，排出的卵母细胞和产生的胚胎数量与正常的小鼠没有差异[15]。这些研究结果表明Mater基因对于2细胞以上的胚胎发育是必要的。研究发现，与Mater基因结合的因子被发现，即Filia基因[16]。Filia蛋白与Mater蛋白结合在一起，共同定位于卵母细胞核早期胚胎的亚皮质区，在早期胚胎发育阶段处于卵裂球联系之处的外面，囊胚阶段就处于胚胎外周-滋养层区域[16]。
（3）TLE6基因属于Groucho/TLE 转录共同抑制因子家族的一员，首先作为E2A肝白血病因子被发现，在小鼠胚胎和成年小鼠的组织中大量表达。在神经祖细胞中，TLE6通过与TLE1竞争性结合脑因子1（Brain factor 1， BF-1）抑制TLE1的功能，并且TLE6在新出生的小鼠卵巢中高度表达，能够与SCMC的其余3个因子（MATER、FLOPED和FILIA）结合，形成母源效应因子复合体，调控早期胚胎的卵裂。近年来，研究发现TLE6可以通过影响小鼠卵母细胞中微丝细胞骨架的功能来调控早期胚胎的对称性分裂[17]。
（4）Filia基因编码1个卵源性的基本的螺旋-环-螺旋（Basic helix-loop-helix， bHLH）转录因子，分子量在50 kD左右，能够与第1个被发现的母源因子Mater蛋白相互结合，在调控激活透明带基因方面发挥着重要的作用[18]。Filia基因缺失不仅会影响透明带基因的表达，而且会阻滞原始卵泡的发育和生长[18-19]。Filia基因只有在性成熟动物的生长的卵母细胞中表达。随着卵母细胞减数分裂和排卵的进行，卵母细胞中贮存的转录因子及蛋白逐渐降解，但其表达的蛋白在胚胎早期发育阶段会持续发挥作用[20]。最近研究发现，Filia基因敲除后会引起卵母细胞中因纺锤体不正常组装导致的染色体非倍体的形成及纺锤体组装检查点（Spindle assembly checkpoint， SAC）失活等，其具体机制是通过RhoA 信号通路影响主要的纺锤体组装调控因子（AURKA、PLK1和γ-tubulin）的分布，从而影响到微观组装中心的功能[21]。
3 展望
一般而言，对于卵母细胞发生和早期胚胎发育起调控作用的分子机制在不同物种之间是比较保守的。但是，由于不同物种之间存在的特异性区别（如排卵数量和合子基因启动处在不同胚胎阶段）决定了这些母源性的效应基因以及表达还是存在较大的差异，甚至同样的基因在不同的动物之间完全不同[22-23]。由此可见，尽管SCMC在小鼠早期胚胎发育的研究已有报道，但是在其他大的动物（如牛和猪等）中尚未见报道。研究表明，SCMC复合体对于小鼠早期胚胎超越第1次卵裂是必不可少的[1，8]。进一步研究发现，SCMC是卵母细胞胞质中肌动蛋白F-actin网络形成中必不可少的，该纤维控制卵母细胞中纺锤体的中心位置，从而确保小鼠合子的对称性分裂；另外，SCMC是通过Cofilin蛋白（肌动蛋白F-actin组装的重要调控因子）来控制细胞骨架微丝的形成[17]。这些虽然在小鼠中已有较多研究，但是在其他动物早期胚胎发育的作用研究还较少。尽管有关SCMC对于早期胚胎发育调控的研究已有报道（主要限于小鼠的研究），但是有关大动物SCMC调控早期胚胎发育的机制仍不清楚，目前还未见到国内外的相关文献报道。 由此可見，SCMC可能是通过形成胞质中的CPLs，调节F-actin的组装，从而调节纺锤体的形成，影响早期胚胎的发育，但其具体的调控途径以及网络也还不清楚，有待于进一步研究。
参考文献
[1]LI L，ZHENG P，DEAN J.Maternal control of early mouse development[J].Development，2010，137（6）：859-870.
[2] RNASCHULTZ R M.The molecular foundations of the maternal to zygotic transition in the preimplantation embryo[J].Human Reproduction Update，2002，8（4）：323-331.
[3] RNABACHVAROVA R，DE LEON V.Polyadenylated RNA of mouse ova and loss of maternal RNA in early development[J].Developmental Biology，1980，74（1）：1-8.
[4] RNASTERNLICHT A L，SCHULTZ R M.Biochemical studies of mammalian oogenesis：Kinetics of accumulation of total and poly （A）-containing RNA during growth of the mouse oocyte[J].Journal of Experimental Zoology，1981，215（2）：191-200.
[5] RNAGARCIA R B，PEREYRA-ALFONSO S，SOTELO J R.Protein-synthesizing machinery in the growing oocyte of the cyclic mouse[J].Differentiation，1979，14：101-106.
[6] RNABACHVAROVA R，DE LEON V，SPIEGELMAN I.Mouse egg ribosomes：Evidence for storage in lattices[J].Journal of Embryology and Experimental Morphology，1981，62（1）：153-164.
[7] RNACAPCO D G，GALLICANO G I，MCGAUGHEY R W，et al.Cytoskeletal sheets of mammalian eggs and embryos：A lattice-like network of intermediate filaments[J].Cell Motility and the Cytoskeleton，1993，24（2）：85-99.
[8] RNALI L，BAIBAKOV B，DEAN J.A subcortical maternal complex essential for preimplantation mouse embryogenesis[J].Developmental Cell，2008，15（3）：416-425.
[9] RNAVALVERDE R，EDWARDS L，REGAN L.Structure and function of KH domains[J].FEBS Journal，2008，275（11）：2712-2726.
[10] RNATASHIRO F，KANAI-AZUMA M，MIYAZAKI S，et al.Maternaleffect gene Ces5/Ooep/Moep19/Floped is essential for oocyte cytoplasmic lattice formation and embryonic development at the maternal zygotic stage transition[J].Genes to Cells，2010，15（8）：813-828.
[11] RNATONG Z B，NELSON L M.A mouse gene encoding an oocyte antigen associated with autoimmune premature ovarian failure[J].Endocrinology，1999，140（8）：3720-3726.
[12] RNATONG Z B，GOLD L，PFEIFER K E，et al.Mater，a maternal effect gene required for early embryonic development in mice[J].Nature Genetics，2000，26（3）：267-268.
[13] RNAKOONIN E V，ARAVIND L.The NACHT family-a new group of predicted NTPases implicated in apoptosis and MHC transcription activation[J].Trends in Biochemical Sciences，2000，25（5）：223-224.
[14] RNATONG Z B，NELSON L M，DEAN J.Mater encodes a maternal protein in mice with a leucine-rich repeat domain homologous to porcine ribonuclease inhibitor[J].Mammalian Genome，2000，11（4）：281-287. [15] RNAKIM K H，LEE K A.Maternal effect genes：Findings and effects on mouse embryo development[J].Clinical and Experimental Reproductive Medicine，2014，41（2）：47-61.
[16] RNAOHSUGI M，ZHENG P，BAIBAKOV B，et al.Maternally derived FILIA-MATER complex localizes asymmetrically in cleavage-stage mouse embryos[J].Development，2008，135（2）：259-269.
[17] RNAYU X J，YIZ H，GAO Z，et al.The subcortical maternal complex controls symmetric division of mouse zygotes by regulating F-actin dynamics[J].Nature communications，2014，75：4887.
[18] RNALIANG L F，SOYAL S M，DEAN J.FIGalpha，a germ cell specific transcription factor involved in the coordinate expression of the zona pellucida genes[J].Development，1997，124（24）：4939-4947.
[19] RNASOYAL S M，AMLEH A，DEAN J.FIGalpha，a germ cell-specific transcription factor required for ovarian follicle formation[J].Development，2000，127（21）：4645-4654.
[20] RNASU Y Q，SUGIURA K，WOO Y，et al.Selective degradation of transcripts during meiotic maturation of mouse oocytes[J].Developmental Biology，2007，302（1）：104-117.
[21] RNAZHENG P，DEAN J.Role of Filia，a maternal effect gene，in maintaining euploidy during cleavage-stage mouse embryogenesis[J].Proceedings of the National Academy of Sciences，2009，106（18）：7473-7478.
[22] RNAHANRAHAN J P，GREGAN S M，MULSANT P.Mutations in the genes for oocyte-derived growth factors GDF9 and BMP15 are associated with both increased ovulation rate and sterility in Cambridge and Belclare sheep （Ovis aries）[J].Biology of Reproduction，2004，70（4）：900-909.
[23] RNABETTEGOWDA A，YAO J B，SEN O，et al.JY-1，an oocyte-specific gene，regulates granulosa cell function and early embryonic development in cattle[J].Proceedings of the National Academy of Sciences，2007，104（45）：17602-17607.