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目的：以体外培养的新生大鼠海马神经细胞为研究对象，选用不同作用时间，丙泊酚对其进行药物干预，研究其对新生大鼠离体海马神经细胞凋亡的影响。 方法：原代培养新生大鼠海马神经细胞：健康出生7d的符合国家二级动物标准的SD新生大鼠海马神经细胞，体外培养48h后用含1％N2(神经生长因子)添加剂DMEM/F12培养基全量换液，以后每3d半量换液，培养至第7d，取部分正常培养的细胞进行NSE免疫组织化学染色，鉴定为海马神经细胞后进行如下实验。分组与药物处理：采用随机数字方法，将其随机分为8组。P1、2、3、4组为丙泊酚药物处理组，丙泊酚处理终浓度为12ug/ml，培养至第7d的神经细胞分别进行3h、 6h、12h、24h干预，后换成细胞完全培养基继续培养24h；C1、2、3、4组为对照组，不作任何处理，各组培养结束时间分别对应 P1、2、3、4组。培养结束后进行各组指标的测定：（1）MTT酶标法检测细胞存活率；（2）Annexi-V/PI双染流式细胞仪检测细胞凋亡率；（3）HE染色光学显微镜下观察细胞形态学变化。 结果：（1）海马神经细胞存活率：C1、2、3、4组之间比较差异无统计学意义（P＞0.05）；P1组与 C1组相比，P2组与 C2组相比,细胞存活率差异无统计学意义（P＞0.05），P3组与 C3组相比，细胞存活率差异具有统计学意义（P＜0.05），P4组与C4组相比，细胞存活率具有显著差异性（P＜0.01）；丙泊酚处理组神经细胞存活率随着药物处理时间的增加而下降，P2组与P1组相比，细胞存活率差异无统计学意义（P＞0.05）；P3组与 P1组，P3组与P2组相比，细胞存活率差异均具有统计学意义（P＜0.05），P4组与P1组，P4组与P2组、P4组与P3相比，细胞存活率均有显著差异性（P＜0.01）。(2)海马神经细胞凋亡率：C1、2、3、4组之间比较差异无统计学意义（P＞0.05）；P1组与C1组相比，P2组与C2组相比，细胞凋亡率差异无统计学意义（P＞0.05），P3组与C3组相比，细胞凋亡率差异具有统计学意义（P＜0.05），P4组与C4组相比，细胞凋亡率具有显著差异性（P＜0.01）；丙泊酚处理组细胞凋亡率随着药物处理时间的增加而升高，P2组与P1组相比，细胞存活率差异无统计学意义（P＞0.05）；P3组与P1组，P3组与P2组相比，细胞凋亡率差异均具有统计学意义（P＜0.05），P4组与 P1组、P4组与 P2组、P4组与P3组相比均有显著差异性（P＜0.01）。（3）海马神经细胞HE染色形态学变化：P1组与 P2组和C1、2、3、4组海马神经细胞形态基本正常，胞体饱满、细胞核清晰可见，胞质透亮、折光度强有明显立体感，突起增粗增长；P3组与P4组海马神经细胞形态均有不同程度的损伤，P4组更为显著，细胞体积变小，变圆，细胞皱缩、染色质凝集、边缘化、解离、胞浆致密、突起减少甚至消失，核固缩偏于一侧等细胞凋亡特征。其中P4组凋亡细胞个数最多。 结论：丙泊酚抑制海马神经细胞存活并促进其凋亡的作用与时间有关，作用时间越长，其促进凋亡的作用越明显。