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研究背景:精原干细胞是一群具有高度自我更新能力和分化潜能的成体干细胞,是精子发生的起始。揭示精原干细胞增殖和分化的调控机制是促进精原干细胞体外培养和移植以及精子发生机制研究的重要基础。由于精原干细胞在生精细胞中的含量极低且缺乏特异性的表面标志,以及精子发生存在不同步性(在小鼠中精子发生的12个阶段同时存在于曲细精管生精上皮),这两方面因素使得直接研究精原干细胞在体内增殖和分化的分子调控机制非常困难。研究显示烷化剂白消安对生精细胞的杀伤作用具有剂量和物种相关性。若能利用白消安杀灭大部分精原干细胞,那么,为了恢复干细胞池的稳定,精子再生初期精原干细胞的更新会得到加强而其分化会被延缓,精原干细胞体内增殖与分化的相对同步就可能再这一过程中得到实现。
目的:探讨建立昆明小鼠精子再生模型的白消安适宜剂量,通过该剂量建立的较理想的精子再生模型实现精子再生初期精原干细胞增殖与分化的相对同步。在此基础上,采用基因芯片检测精原干细胞增殖和分化阶段小鼠睾丸组织基因表达谱的差异,初步探讨精原干细胞增殖和分化的分子调控机制。
方法:8-10周龄雄性昆明白小鼠按区组随机分为实验组(168只)和对照组(8只)。实验组小鼠接受白消安腹腔注射,根据不同给药剂量进一步分为4组:A、B两组各36只,分别接受10mg/kg和20mg/kg白消安单次注射;C、D两组各48只,分别接受10mg/kg和15mg/kg白消安间隔24d_次注射。对照组小鼠接受单次等量溶剂腹腔注射。于给药结束后1、2、3、4、6和8周,分别将各实验组小鼠按期颈椎脱臼处死(组内等量),对照组小鼠在注射后1周一次性处死。取出小鼠双侧睾丸。一侧睾丸采用HE染色观察曲细精管的组织形态学变化和免疫组化法检测C、D组和对照组生精细胞Ki-67表达:对侧睾丸组织采用电镜观察超微结构。通过前述研究判断建立精子再生模型的白消安适宜剂量和模型分期。以此适宜剂量白消安再次建立精子再生模型,分别选取精原干细胞处于增殖和分化阶段的睾丸组织标本,Trizol一步法提取组织总RNA并进行纯化和荧光标记。将经前述反应得到的标记DNA于42℃在芯片杂交仪上与36kMouseGenomeArray杂交过夜。用双通道激光扫描仪扫描杂交芯片,对各芯片进行片间线性校正和片内归一化处理。对筛选得到的差异表达基因进行GO和KEGG信号通路分析。参照www.sabiosciences.com/gene_array_product/HTML/OMM-405.html.筛选差异表达的干细胞相关基因。实时定量PCR验证Kit、bFGF和Oct4表达。免疫组化检测Oct4和Thy-1在生精上皮的表达。
结果:第一周C、D两组生精上皮的损伤程度介于A、B两组之间。第二周,C、D两组生精上皮仅基底膜部残留以单个型精原细胞(As型)为主精原细胞和Sertoli细胞,D组生精上皮部分Sertoli细胞空泡变性:第三周,C、D两组As型精原细胞均增多:第四周,C、D两组均出现分化精原细胞和精母细胞;6~8周,两组均出现精子发生,C组生精上皮结构逐步恢复正常,而D组曲细精管直径和生精上皮厚度仍显著低于对照组。C、D两组精原细胞Ki-67阳性率在第一、二周显著低于对照组,在第三周极度增高,第四周开始下降,6~8周与对照组无显著差异,第二、三周D组精原细胞Ki-67阳性率均低于C组。基因芯片试验结果显示911个基因在精原干细胞增殖和分化阶段的睾丸组织中表达存在差异,其中,上调608个(增殖期/分化期),下调303个。这些差异表达基因分别涉及生物学过程、分子功能和分子组成。84个信号通路功能改变具有统计学意义(P<0.05),包括Notch和Wnt信号通路。与干细胞相关的差异基因有56个,上调40个,下调16个。部分干细胞的阳性标记物(如Cd9,Stra8,Itgb1,Oct4和Thy1)和部分生长因子(如Fgf2,Csf1和Pdgfa)上调。免疫组化染色结果显示Oct4抗原表达于曲细精管基底膜的精原细胞且在精原干细胞增殖期表达显著高于分化期。
绪沦间隔24天10mg/kg白消安二次腹腔注射是建立小鼠精子再生模型的理想剂量。该模型可实现精子发生的相对同步:二次给药后3周主要为精原干细胞增殖期,4周为分化期,6~8周为精子发生恢复期。小鼠精原干细胞增殖和分化过程的调控涉及许多基因(分属不同信号通路)的差异表达,进一步研究这些基因(和通路)功能有助于揭示精原干细胞增殖和分化的调控机制。
目的:探讨建立昆明小鼠精子再生模型的白消安适宜剂量,通过该剂量建立的较理想的精子再生模型实现精子再生初期精原干细胞增殖与分化的相对同步。在此基础上,采用基因芯片检测精原干细胞增殖和分化阶段小鼠睾丸组织基因表达谱的差异,初步探讨精原干细胞增殖和分化的分子调控机制。
方法:8-10周龄雄性昆明白小鼠按区组随机分为实验组(168只)和对照组(8只)。实验组小鼠接受白消安腹腔注射,根据不同给药剂量进一步分为4组:A、B两组各36只,分别接受10mg/kg和20mg/kg白消安单次注射;C、D两组各48只,分别接受10mg/kg和15mg/kg白消安间隔24d_次注射。对照组小鼠接受单次等量溶剂腹腔注射。于给药结束后1、2、3、4、6和8周,分别将各实验组小鼠按期颈椎脱臼处死(组内等量),对照组小鼠在注射后1周一次性处死。取出小鼠双侧睾丸。一侧睾丸采用HE染色观察曲细精管的组织形态学变化和免疫组化法检测C、D组和对照组生精细胞Ki-67表达:对侧睾丸组织采用电镜观察超微结构。通过前述研究判断建立精子再生模型的白消安适宜剂量和模型分期。以此适宜剂量白消安再次建立精子再生模型,分别选取精原干细胞处于增殖和分化阶段的睾丸组织标本,Trizol一步法提取组织总RNA并进行纯化和荧光标记。将经前述反应得到的标记DNA于42℃在芯片杂交仪上与36kMouseGenomeArray杂交过夜。用双通道激光扫描仪扫描杂交芯片,对各芯片进行片间线性校正和片内归一化处理。对筛选得到的差异表达基因进行GO和KEGG信号通路分析。参照www.sabiosciences.com/gene_array_product/HTML/OMM-405.html.筛选差异表达的干细胞相关基因。实时定量PCR验证Kit、bFGF和Oct4表达。免疫组化检测Oct4和Thy-1在生精上皮的表达。
结果:第一周C、D两组生精上皮的损伤程度介于A、B两组之间。第二周,C、D两组生精上皮仅基底膜部残留以单个型精原细胞(As型)为主精原细胞和Sertoli细胞,D组生精上皮部分Sertoli细胞空泡变性:第三周,C、D两组As型精原细胞均增多:第四周,C、D两组均出现分化精原细胞和精母细胞;6~8周,两组均出现精子发生,C组生精上皮结构逐步恢复正常,而D组曲细精管直径和生精上皮厚度仍显著低于对照组。C、D两组精原细胞Ki-67阳性率在第一、二周显著低于对照组,在第三周极度增高,第四周开始下降,6~8周与对照组无显著差异,第二、三周D组精原细胞Ki-67阳性率均低于C组。基因芯片试验结果显示911个基因在精原干细胞增殖和分化阶段的睾丸组织中表达存在差异,其中,上调608个(增殖期/分化期),下调303个。这些差异表达基因分别涉及生物学过程、分子功能和分子组成。84个信号通路功能改变具有统计学意义(P<0.05),包括Notch和Wnt信号通路。与干细胞相关的差异基因有56个,上调40个,下调16个。部分干细胞的阳性标记物(如Cd9,Stra8,Itgb1,Oct4和Thy1)和部分生长因子(如Fgf2,Csf1和Pdgfa)上调。免疫组化染色结果显示Oct4抗原表达于曲细精管基底膜的精原细胞且在精原干细胞增殖期表达显著高于分化期。
绪沦间隔24天10mg/kg白消安二次腹腔注射是建立小鼠精子再生模型的理想剂量。该模型可实现精子发生的相对同步:二次给药后3周主要为精原干细胞增殖期,4周为分化期,6~8周为精子发生恢复期。小鼠精原干细胞增殖和分化过程的调控涉及许多基因(分属不同信号通路)的差异表达,进一步研究这些基因(和通路)功能有助于揭示精原干细胞增殖和分化的调控机制。