论文部分内容阅读
茶枝柑皮是茶枝柑(Citrus reticulata‘Chachi’)的成熟果皮,果皮晒干陈化后,便成了广东道地药材——广陈皮。茶枝柑皮主要是药用(作为广陈皮)、制成调味品及凉果,除了含有挥发油、黄酮外,茶枝柑皮还含有丰富的果胶多糖,历来对茶枝柑皮未进行深加工,造成资源的浪费。本论文以茶枝柑皮为原料,利用现代分离分析手段,对茶枝柑皮果胶多糖的提取、纯化工艺、单糖组成的测定方法、化学结构及其体外抗氧化活性进行了较系统的研究,以期为茶枝柑资源的开发利用提供科学依据和利用途径。1.采用酸水提醇沉法提取茶枝柑皮粗多糖(CCP)。单因素试验确定各因素(提取溶剂pH值、料液比、提取温度和时间)对多糖得率和抗氧化能力影响的合适水平,并用正交试验进一步优化。经试验得出CCP的最佳提取工艺为:用pH4的酸水、料液比为1:30、提取温度90℃、提取时间90min,在此条件下多糖得率和抗氧化FRAP值分别为18.9%和48.9。粗提多糖膨胀力和持水力均较高,并属于高酯果胶多糖。2.将CCP通过树脂脱色和Sevag试剂去除蛋白,得到纯化的多糖CP。通过静态吸附法,考察了大孔吸附树脂、离子交换树脂对CCP溶液的脱色率,由于D-201阴离子交换树脂脱色效果优于其它树脂,故选择D-201树脂作为CCP的脱色树脂,并进一步研究了D-201树脂的最佳脱色工艺:脱色温度40℃,树脂用量8%(m/v),转速75r/min振荡2h。Sevag法除蛋白则需在反复萃取6~9次后,达到蛋白去除率为74%。3.采用1-苯基-3-甲基-5-吡唑啉酮(PMP)作为还原醛糖的标识分子,柱前衍生化高效液相色谱-紫外检测器(HPLC-UV)和普通C18柱,建立了8种常见单糖的快速分析鉴别技术,并且确定了单糖的衍生化条件及多糖CP的水解条件。CP用2 mol/L的三氟乙酸(TFA)在120℃烘箱中水解2h得到各单糖,单糖在70℃下与PMP衍生化反应40min后用1:1(v/v)氯仿涡旋萃取3次。流动相20%(v/v)乙腈-磷酸盐缓冲溶液(pH 7.1)、流速1.0 mL/min、等度洗脱即可实现单糖的良好分离。方法学考察结果表明,各单糖的相关系数、精密度、重复性、回收率均良好。4.对纯化后的茶枝柑皮多糖CP采用DEAE-Sepharose Fast Flow离子交换层析进行分离得到4个组分,分别命名为CPN、CPA-1、CPA-2、CPA-3,将CPA-1、CPA-2、CPA-3进一步用Sephadex G-100凝胶排阻层析纯化得到对应的CPA-Ⅰ、CPA-Ⅱ、CPA-Ⅲ。经TSK G-5000 PWxL、TSK G-3000 PWxL柱高效凝胶色谱分析,证实CPA-Ⅰ、CPA-Ⅱ、CPA-Ⅲ具有较高的纯度,其重均分子量分别为8.0×104 Da、2.6×105Da、2.4×105Da。红外光谱结果表明,CPN是带有结晶水的吡喃多糖,CPA-Ⅰ、CPA-Ⅱ和CPA-Ⅲ均是部分羧酸甲酯化的α-半乳糖醛酸多聚糖。NMR结果推测茶枝柑皮多糖主链是由(1→4)-α-GalpA构成,存在部分半乳糖醛酸甲酯化,半乳糖、鼠李糖、甘露糖等以α-吡喃糖形式存在于末端或侧链。单糖组成分析表明,CPN中单糖的摩尔比是Man: Rha: GalA: Glc: Gal: Xyl: Ara =0.34: 0.07: 5.30:1:4.71:0.61:14.7;CPA-Ⅰ的单糖摩尔比是Man: Rib: Rha: GalA: Glc: Gal: Ara = 0.12: 0.04: 0.74: 39.33: 1: 8.48: 24.05;CPA-Ⅱ的单糖摩尔比是Man: Rib: Rha: GalA: Glc: Gal: Ara=0.94: 0.05: 1.33: 56.65: 1: 7.04: 19.38;CPA-Ⅲ的单糖摩尔比是Man: Rha: GalA: Glc: Gal: Ara=2.02: 1.98: 122.66: 1: 8.85: 26.26。5.通过体外模拟试验,采用MTT法首先筛选了H2O2致U251细胞损伤的最佳成模浓度,是0.1875mmol/L;再研究了茶枝柑皮粗多糖(CCP)对过氧化氢损伤的U251细胞的保护作用,在试验浓度2.500-0.078mg/mL范围内呈剂量依赖关系;CCP脱蛋白后的多糖则未表现出抗氧化活性。