甜菜M14品系BvM14-glyoxalaseⅠ基因的克隆与功能分析

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甜菜M14品系是在栽培甜菜(BetavulgarisL.)染色体组上附加野生白花甜菜(B.corollifloraZoss.)第9号染色体的甜菜单体附加系。经鉴定甜菜M14品系具有野生白花甜菜的一些优良性状,如抗旱性、耐盐性、抗寒性以及无融合生殖等,课题组推测甜菜M14品系展现的优良性状可能与白花甜菜第9号染色体的导入有关,因此甜菜M14品系是挖掘和利用甜菜优质基因,促进栽培甜菜育种改良的良好材料。   前期工作基础中,课题组以栽培甜菜为对照,对甜菜M14品系花器官进行了比较蛋白质组学研究,共获得差异蛋白质点71个,乙二醛酶Ⅰ是其中之一。甜菜M14品系盐胁迫下的比较蛋白质组学研究发现,乙二醛酶Ⅰ蛋白在叶片中受盐胁迫上调表达(2倍),说明乙二醛酶Ⅰ可能参与甜菜M14品系的抗盐过程。本试验是对甜菜M14品系乙二醛酶Ⅰ基因功能的深入研究。   乙二醛酶Ⅰ与能量代谢密切相关,广泛存在于动物、植物和微生物中。在辅因子还原型谷胱甘肽(GSH)的协助下,乙二醛酶Ⅰ将丙酮醛(methylglyoxal,MG)转化为S-D-乳酰谷胱甘肽,乙二醛酶Ⅱ以其为底物,最终转化为D-乳糖,从而降低MG含量,解除MG对细胞的毒害损伤。除此之外,乙二醛酶Ⅰ还参与调控细胞的分裂和增殖、微管组装、囊泡的活化等过程,与细胞的有丝分裂过程密切相关。近年来,研究发现乙二醛酶Ⅰ广泛参与植物非生物胁迫的应答反应,同时还对病菌侵染植物组织产生应答现象,说明植物乙二醛酶Ⅰ在作物改良及植物抗逆机制研究中具有潜在的应用价值。   本试验基于课题组的前期工作基础,利用电子克隆及RACE技术获得甜菜M14品系乙二醛酶Ⅰ基因(BvM14-glyoxalaseⅠ)cDNA全长,共计1449bp,包含1065bp的最大ORF,编码354aa;序列分析显示,该蛋白质含有两个乙二醛酶结构域及多个谷胱甘肽、金属离子结合位点:半定量RT-PCR分析结果显示BvM14-glyoxalaseⅠ基因在甜菜M14品系根、茎、叶、花中广泛表达,且在花中表达量最高;该基因能够应答高盐、干旱、氧化胁迫,并在根和叶中参与不同的应答机制。   构建了BvM14-glyoxalaseⅠ基因的大肠杆菌表达体系,在0.5mmol/LIPTG、37℃的诱导条件下BvM14-glyoxalaseⅠ蛋白表达量最大,并主要以包涵体的形式存在;Western印迹结果呈阳性,说明BvM14-glyoxalaseⅠ融合蛋白在大肠杆菌BL21(DE3)中能够正确表达。以转空质粒菌株为对照,对转BvM14-glyoxalaseⅠ基因的大肠杆菌BL21(DE3)菌体在MG胁迫下的生长曲线进行了测定,结果显示转基因菌株比对照菌株提前1h进入生长期,说明BvM14-glyoxalaseⅠ基因能够缓解MG对大肠杆菌生长的抑制。   构建BvM14-glyoxalaseⅠ基因植物表达载体,并在烟草中稳定表达。通过基因组PCR及RT-PCR筛选阳性植株;酶活测定结果显示,T0代转基因植株G2和G3叶片中glyoxalaseⅠ酶活力分别是对照野生型烟草WT的2.2倍和1.5倍,说明BvM14-glyoxalaseⅠ基因在转基因烟草中成功表达。叶盘抗性试验结果显示,在不同浓度的MG、NaC1、甘露醇及H2O2胁迫下转基因烟草G2叶片的褪绿速度远远低于WT叶盘。以WT幼苗为对照,对T1代转基因烟草幼苗line2进行上述胁迫处理,结果显示line2幼苗生长状况、鲜重、根长、叶片褪绿情况均好于WT幼苗。以上结果证实甜菜M14品系BvM14-glyoxalaseⅠ基因的过量表达能够提高烟草对MG、高盐、干旱及氧化胁迫的抗性。   本试验通过对甜菜M14品系BvM14-glyoxalaseⅠ基因的深入研究,为研究glyoxalaseⅠ基因的抗性机制提供了重要资料。
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