【摘 要】
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目的观察转录因子T-bet在射频消融(RFA)激发的抗肿瘤免疫应答中的作用。方法建立C57BL/6小鼠B16黑色素瘤双侧背部移植瘤模型,当肿瘤体积达500 mm3时对右侧肿瘤进行RFA治疗,3 d后流式细胞术分析左侧肿瘤浸润淋巴细胞亚群数量以及T-bet在T细胞与自然杀伤(NK)细胞中的表达;实时荧光定量聚合酶链反应(FQ-PCR)检测细胞因子的信使核糖核苷酸(mRNA)表达水平;建立敲T-bet
【机 构】
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213003 常州,苏州大学附属第三医院肿瘤生物诊疗中心 江苏省肿瘤免疫治疗工程技术研究中心 苏州大学细胞治疗研究院,213003 常州,苏州大学附属第三医院肿瘤生物诊疗中心 江苏省肿瘤免疫治疗工程技
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目的观察转录因子T-bet在射频消融(RFA)激发的抗肿瘤免疫应答中的作用。
方法建立C57BL/6小鼠B16黑色素瘤双侧背部移植瘤模型,当肿瘤体积达500 mm3时对右侧肿瘤进行RFA治疗,3 d后流式细胞术分析左侧肿瘤浸润淋巴细胞亚群数量以及T-bet在T细胞与自然杀伤(NK)细胞中的表达;实时荧光定量聚合酶链反应(FQ-PCR)检测细胞因子的信使核糖核苷酸(mRNA)表达水平;建立敲T-bet基因(T-bet-/-)小鼠RFA治疗模型,分析左侧肿瘤浸润淋巴细胞亚群数量,记录小鼠左侧肿瘤生长曲线与小鼠生存时间。
结果RFA治疗能抑制对侧肿瘤生长,延长小鼠生存时间,两组的生存时间分别为[(29.0±1.4) d]与[(21.0±0.7) d],差异有统计学意义(P=0.000);对照组小鼠左侧肿瘤浸润CD45+、CD3+、CD4+叉状头/翅膀状螺旋转录因子(FoxP3)-、CD8+、NK(NK1.1+)细胞计数(106个/g肿瘤)分别为1.40±0.32、0.46±0.08、0.14±0.11、0.20±0.03与0.05±0.02,消融组分别6.22±0.80、2.06±0.11、0.53±0.20、0.68±0.10与0.17±0.03,差异有统计学意义(P=0.000),两组调节性T细胞(Treg:CD4+FoxP3+)计数分别0.06±0.01与0.07±0.02、差异无统计学意义(P=0.978);消融组Th1型细胞因子IFN-γ、TNF-α和IL-2的mRNA表达水平相对于对照组分别为6.50±0.51、5.02±0.48与4.12±0.31倍,差异有统计学意义(P=0.000);对照组左侧肿瘤浸润CD4+T、CD8+T、NK细胞中T-bet表达率分别为(22.30±0.60)%、(28.40±2.20)%与(9.10±0.20)%,消融组分别(42.60±3.10)%、(48.30±2.50)%与(19.10±1.30)%,差异有统计学意义(P=0.000);T-bet-/-小鼠模型中,RFA治疗组与对照组小鼠生存时间分别(21.00±1.20) d与(21.00±0.56) d,差异无统计学意义(P=0.981)。对照组左侧肿瘤CD45+、CD3+、CD4+FoxP3-、CD4+FoxP3+、CD8+与NK1.1+细胞计数(106个/g肿瘤)分别为1.46±0.59、0.43±0.04、0.20±0.03、0.09±0.01、0.15±0.03与0.04±0.02,消融组分别1.55±0.21、0.45±0.10、0.22±0.04、0.11±0.01、0.13±0.09与0.04±0.01,差异均无统计学意义(P值分别为0.454、0.982、0.800、0.987、0.462、0.278)。
结论转录因子T-bet在RFA治疗激发的Th1型抗肿瘤免疫应答中发挥重要作用。
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